Mycobacterium tuberculosis jest główną przyczyną śmiertelności ludzi w skali globalnej. Pojawienie się szczepów wielolekoopornych (MDR) oraz ekstremalnie lekoopornych (XDR) grozi zahamowaniem obecnych wysiłków w zakresie kontroli tej choroby. W związku z tym istnieje pilna potrzeba opracowania leków i szczepionek, które byłyby bardziej skuteczne niż te obecnie dostępne. Genom M. tuberculosis jest znany od ponad 10 lat, jednak wciąż istnieją istotne luki w naszej wiedzy na temat funkcji i niezbędności genów. W wielu badaniach wykorzystano analizę ekspresji genów na poziomie transkrypcyjnym i proteomicznym, aby określić wpływ leków, utleniaczy i warunków wzrostu na globalne wzorce ekspresji genów. Ostatecznie końcowa odpowiedź na te zmiany odzwierciedlona jest w składzie metabolicznym bakterii, obejmującym kilka tysięcy związków o niskiej masie cząsteczkowej. Porównanie profili metabolicznych szczepów typu dzikiego i mutantów, nieleczonych lub leczonych konkretnym lekiem, może skutecznie umożliwić identyfikację celu i doprowadzić do opracowania nowych inhibitorów o działaniu przeciwgruźliczym. Podobnie można oceniać wpływ dwóch lub więcej warunków na metabolom. Magnetyczny rezonans jądrowy (NMR) jest potężną technologią wykorzystywaną do identyfikacji i ilościowego określania produktów pośrednich metabolizmu. W niniejszym protokole opisano procedury przygotowania ekstraktów komórkowych M. tuberculosis do analizy metabolomicznej metodą NMR. Hodowle komórkowe są prowadzone w odpowiednich warunkach i wymagają izolacji na poziomie bezpieczeństwa biologicznego 3 (Biosafety Level 3),1 zbierane, a następnie poddawane lizie mechanicznej w niskich temperaturach w celu maksymalnego zachowania metabolitów. Lizaty komórkowe są odzyskiwane, filtrowane w celu sterylizacji i przechowywane w ultra-niskich temperaturach. Alikwoty z tych ekstraktów komórkowych są wysiewane na agar Middlebrooka 7H9 w celu oznaczenia jednostek tworzących kolonie, aby zweryfikować brak żywych komórek. Po dwóch miesiącach inkubacji w 37 °C, jeśli nie zaobserwowano żywych kolonii, próbki są wywożone z zaplecza izolacyjnego do dalszego przetwarzania. Ekstrakty są liofilizowane, resuspenderowane w buforze deuterowanym i wstrzykiwane do urządzenia NMR, co pozwala na zarejestrowanie danych spektroskopowych, które następnie poddawane są analizie statystycznej. Opisane procedury mogą być stosowane zarówno dla jednowymiarowych (1D) analiz 1H NMR, jak i dwuwymiarowych (2D) analiz 1H-13C NMR. Metodyka ta zapewnia bardziej niezawodną identyfikację metabolitów o niskiej masie cząsteczkowej oraz bardziej wiarygodne i czułe analizy ilościowe składu metabolicznego ekstraktów komórkowych niż metody chromatograficzne. Wariacje opisanej procedury następujące po etapie lizy komórek mogą zostać również dostosowane do równoległej analizy proteomicznej.