-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Progresywny stosunek reagowania na smaczne pokarmy o wysokiej zawartości tłuszczu i cukru u myszy

Research Article

Progresywny stosunek reagowania na smaczne pokarmy o wysokiej zawartości tłuszczu i cukru u myszy

DOI: 10.3791/3754

May 3, 2012

Sandeep Sharma1, Cecile Hryhorczuk1, Stephanie Fulton1

1CRCHUM and the Montreal Diabetes Research Center,University of Montreal

Cite Watch Download PDF Download Material list
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

In This Article

Summary Abstract Introduction Protocol Representative Results Discussion Disclosures Acknowledgements Materials References Reprints and Permissions

Erratum Notice

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Retraction Notice

The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice

Summary

Niniejszy raport szczegółowo opisuje protokół zastosowany do pomiaru nagradzających efektów wysokotłuszczowego jedzenia u myszy za pomocą zadania warunkowania instrumentalnego opartego na progresywnym stosunku.

Abstract

Pokarmy bogate w tłuszcz i cukier znacząco przyczyniają się do przejadania się i eskalacji otyłości. Spożywanie smacznych pokarmów może wywołać satysfakcjonujący efekt, który wzmacnia skojarzenia między działaniem a wynikiem i wzmacnia przyszłe zachowania ukierunkowane na uzyskanie tych pokarmów. Coraz więcej dowodów na to, że satysfakcjonujące efekty pokarmów o dużej gęstości energetycznej odgrywają głęboką rolę w przejadaniu się i rozwoju otyłości, zwiększyło zainteresowanie badaniem genów, molekuł i obwodów neuronalnych, które modulują nagrodę w jedzeniu1,2. Nagradzający wpływ różnych bodźców można badać, mierząc gotowość do pracy w celu ich uzyskania, na przykład w zadaniach warunkowania instrumentalnego3. Instrumentalne modele nagrody w postaci jedzenia mierzą nabyte i dobrowolne reakcje behawioralne, które są ukierunkowane na zdobywanie pokarmu. Powszechnie stosowaną miarą siły nagrody jest procedura operacyjna znana jako harmonogram wzmocnienia według progresywnego współczynnika (PR). 4,5 W zadaniu PR badany musi udzielać coraz większej liczby odpowiedzi instrumentalnych dla każdej kolejnej nagrody. Pionierskie badanie Hodosa (1961) wykazało, że liczba odpowiedzi udzielonych w celu uzyskania ostatniej nagrody, określana jako punkt graniczny, służy jako wskaźnik siłynagrody4. Podczas gdy procedury instrumentalne, które same w sobie mierzą zmiany w odsetku odpowiedzi, nie mogą oddzielić zmian w sile nagrody od zmian w zdolności do działania, punkt graniczny uzyskany z harmonogramu PR jest dobrze zweryfikowaną miarą nagradzających efektów jedzenia. Zadanie PR było szeroko stosowane do oceny nagradzającego wpływu narkotyków i pożywienia na szczury (np. 6-8), ale w mniejszym stopniu u myszy9. Zwiększone wykorzystanie genetycznie modyfikowanych myszy i modeli myszy otyłych wywołanych dietą zwiększyło zapotrzebowanie na behawioralne miary nagrody w postaci jedzenia u myszy. W niniejszym artykule szczegółowo opisujemy materiały i procedury stosowane do szkolenia myszy do reagowania (naciśnięcie dźwigniowe) na granulki pokarmowe o wysokiej zawartości tłuszczu i cukru zgodnie z harmonogramem PR wzmacniania. Pokazujemy, że progi odpowiedzi punktu przerwania zwiększają się po ostrym niedoborze pokarmu i zmniejszają się po obwodowym podawaniu hormonu anorektycznego leptyny, a tym samym potwierdzają zastosowanie tego paradygmatu działania pokarmowego u myszy.

Protocol

*Najważniejsze kroki.

1. Sprzęt i oprogramowanie

  1. Szkolenie i testowanie odbywa się w komorach obsługi myszy wyposażonych w dwie ultralekkie, wysuwane dźwignie1 umieszczone po obu stronach pojemnika na żywność (patrz tabela 1). Nad każdą dźwignią znajduje się lampka bodźcowa, a w górnej części klatki znajduje się światło domowe. Dozownik pelletu znajduje się na zewnątrz komory. Każda komora umieszczona jest w kabinie wyciszającej z wentylatorem. Komory są podłączone do komputera PC z oprogramowaniem MedPC IV za pośrednictwem szafy interfejsu "Smart Control".

Uwaga: Gdy ultralekkie dźwignie nie są dostępne, zaleca się użycie szturchnięcia nosa jako odpowiedzi instrumentalnej w badaniach na myszach. Jednak przy obu dostępnych opcjach sugerujemy wybór ultralekkich dźwigni jako bardziej wiarygodnej miary motywacji, biorąc pod uwagę, że reakcje szturchania nosem mogą być wywołane przez eksploracyjne wąchanie.

  1. Programy MedPC używane do uruchamiania zadań operantowych są napisane w kodzie notacji Medstate, którego użytkownik może się nauczyć za pomocą dostarczonej instrukcji programowania. Programowanie zapewnia użytkownikowi elastyczność w zakresie modyfikowania istniejących kodów lub generowania unikalnych parametrów eksperymentalnych. Niektóre kody można uzyskać bezpłatnie z Med Associates "Medstate Notation Repository" http://www.mednr.com. Dodatkowe kody można zakupić w Med Associates.

2. Aklimatyzacja myszy i ograniczenie jedzenia

  1. Po przybyciu myszy są trzymane w grupach przez co najmniej 10 dni, aby zaaklimatyzować się do odwróconego 12-godzinnego cyklu światła/ciemności i mają zapewniony dostęp ad libitum do standardowej karmy i wody. W naszym przypadku używamy dorosłych myszy C57BL/6 zakupionych od Charles River (St. Constant, QC). Wszystkie manipulacje i eksperymenty behawioralne na myszach są wykonywane podczas ciemnego cyklu. Wszystkie procedury związane z wykorzystaniem zwierząt zostały zatwierdzone przez Komisję ds. Opieki nad Zwierzętami CRCHUM.
  2. Myszy są następnie trzymane w osobnych pomieszczeniach, a ich pożywienie jest ograniczane (70% ich dziennego spożycia pokarmu), dopóki nie osiągną 90-95% masy ciała podczas swobodnego karmienia, aby ułatwić nabycie reakcji na naciśnięcie dźwigni. Myszy otrzymały swój dzienny limit pożywienia w klatce domowej po zakończeniu sesji. Po osiągnięciu 5-10% utraty wagi, dzienny przydział pokarmu jest dostosowywany tak, aby ustabilizować dolną masę ciała na pozostałą część okresu treningowego. Gdy myszy osiągną kryteria absorpcji (patrz poniżej), są ponownie umieszczane w harmonogramie karmienia ad libitum. Myszy odzyskują utraconą masę ciała w ciągu około 3-4 dni.
  3. Myszy są obsługiwane w pomieszczeniu testowym przez 3 kolejne dni przed pierwszą sesją treningową. Dzień przed rozpoczęciem treningu 10-15 granulek o wysokiej zawartości tłuszczu i cukru (HFHS) umieszcza się w klatce domowej, aby zapobiec potencjalnemu wpływowi neofobii pokarmowej na wydajność operacyjną. Używamy 20 mg HFHS, bezpyłowych, precyzyjnych granulek spożywczych (dostępne również 14 mg) zawierających 48,9% Kcal w postaci tłuszczu (Bio Serv, Frenchtown, NJ).

3. Trening operacyjny

  1. Myszy są początkowo szkolone do naciskania dźwigni zgodnie ze schematem wzmacniania o stałym stosunku (FR)-1, przy czym pojedyncze naciśnięcie dźwigni powoduje dostarczenie granulki żywności do pojemnika. Tylko jedna dźwignia jest oznaczona jako "aktywna" (wyzwalająca dostarczanie nagrody w postaci jedzenia), a przydział prawej i lewej dźwigni jest równoważony między myszami. Ważne jest, aby dodać co najmniej 5-sekundowy limit czasu (TO) do harmonogramu FR1 (FR1/TO-5), podczas którego dodatkowe naciśnięcie dźwigni nie powoduje dostarczenia granulki żywności. Ten okres TO daje myszom czas na spożycie granulki pokarmu, jednak dłuższe przerwy mogą być stosowane, jeśli eksperymentator uważa, że jest to konieczne dla ich modelu mysiego. Każda sesja treningowa FR trwa 1 godzinę lub po dostarczeniu 50 granulek.
  2. *Kryteria pozyskiwania: Kryteria stosowane do określenia nabycia odpowiedzi na działanie w oparciu o żywność obejmują: (1) minimalną liczbę aktywnych odpowiedzi i zdobytych nagród; (2) miara dyskryminacji między aktywnymi i nieaktywnymi dźwigniami oraz (3) stabilność wyników między sesjami. Myszy wykazujące dyskryminację ≥3:1 dla aktywnej i nieaktywnej dźwigni i uzyskujące ≥ 20 nagród na sesję w ciągu trzech kolejnych sesji są uważane za spełniające kryterium akwizycji10. Zaobserwowaliśmy, że większość (~75%) myszy C57BL6 wymaga około 7-10 dni treningu, aby spełnić kryteria akwizycji. Myszy, które do tego czasu nie osiągną kryteriów nabycia, przechodzą dalsze szkolenie przez dodatkowe 5-7 dni. Wykluczamy myszy z testów (~5% przypadków), gdy nie ma postępów do dodatkowego 5. dnia treningowego. Ważne jest, aby pamiętać, że upośledzone nabywanie substancji może być wynikiem pewnych interwencji farmakologicznych i genetycznych i dlatego powinno być udokumentowane.
  3. Po trzech kolejnych sesjach uzyskiwania ≥ 20 granulek, harmonogram zostaje zwiększony do FR5/TO-5 sekund, w których 5 aktywnych naciśnięć dźwigni uruchamia dostarczanie granulek żywności. Szkolenie na grafiku FR5 trwa trzy dni.
  4. *Myszy są następnie szkolone w harmonogramie wzmacniania według progresywnego współczynnika (PR). Harmonogram współczynnika odpowiedzi podczas testów PR można obliczyć zgodnie z Richardsonem i Robertsem (1996)11 przy użyciu następującego wzoru (zaokrąglonego do najbliższej liczby całkowitej):
    = [5e (R*0,2)] - 5
    gdzie R jest równe liczbie już zdobytych nagród w postaci żywności plus 1 (tj. następny wzmacniacz). Tak więc liczba odpowiedzi wymaganych do zdobycia nagrody w postaci jedzenia jest zgodna z kolejnością: 1, 2, 4, 6, 9, 12, 15, 20, 25, 32, 40, 50, 62, 77, 95 i tak dalej. Ostatnim ukończonym współczynnikiem jest punkt przerwania.
  5. Sesja PR trwa maksymalnie 1 godzinę. Nienaciśnięcie dźwigni w dowolnym okresie 10 minut skutkuje zakończeniem sesji. Wydajność w harmonogramie PR wzmocnienia jest uważana za stabilną, gdy liczba nagród zdobytych w 1-godzinnej sesji odchyla się o ≤10% przez co najmniej 3 kolejne dni.

4. Testowanie i walidacja progresywnych proporcji

  1. Aby zweryfikować reagowanie operacyjne utrzymywane przez żywność w zadaniu PR, można ocenić punkt przerwania reagowania po manipulacjach, o których wiadomo, że modulują nagrodę za jedzenie. Stosunkowo łatwym do przeprowadzenia testem jest deprywacja pokarmowa, która zwiększy stan motywacyjny myszy do jedzenia, a tym samym zwiększy punkty graniczne. Myszy muszą najpierw zostać przetestowane w zadaniu PR w okresie karmienia ad libitum, aż do osiągnięcia stabilnej, wyjściowej wydajności. Dzień po ostatnim dniu "bazowym" pokarm jest usuwany z klatki domowej, a myszy są następnie testowane w zadaniu PR 24 godziny po rozpoczęciu postu.
  2. Zbadaliśmy również, czy obwodowe podawanie hormonu anorektycznego leptyny miałoby odwrotny wpływ na progi punktu granicznego. Leptyna (A.F. Parlow, National Hormone and Peptide Program, NIDDK) została rozpuszczona w sterylnym PBS. Badanie PR przeprowadzono po wstrzyknięciu IP PBS jednego dnia, a następnie po wstrzyknięciu leptyny (5 mg/kg) następnego dnia. Leptyna została wstrzyknięta na godzinę przed badaniem PR. Punkty przerwania porównano za pomocą sparowanego testu t (GraphPad Prism).

5. Reprezentatywne wyniki

Podczas testowania zdolności osób pozbawionych jedzenia do modulowania punktów granicznych reagujących na harmonogram PR wzmocnienia, spodziewamy się znacznego zwiększenia punktów przerwania, jak pokazano na rysunku 1. W tym eksperymencie 24-godzinny okres deprywacji żywności spowodował ~3,6-krotny wzrost punktów granicznych w porównaniu z tymi uzyskanymi w stanie wyjściowym swobodnego żywienia, co sugeruje, że deprywacja żywności zwiększa satysfakcjonujące efekty jedzenia. W przeciwieństwie do tego, obwodowe podanie hormonu anorektycznego leptyny (5 mg/kg, IP) na godzinę przed badaniem powinno zmniejszyć punkt graniczny odpowiedzi, jak pokazano na rycinie 2.

Rysunek 1
Rysunek 1. Post zwiększa satysfakcjonujące efekty jedzenia. 24-godzinny post istotnie zwiększył punkty przerwania w harmonogramie przyrostowego współczynnika (PR) wzmocnienia u myszy (n = 4). Średnia±SEM; *P<.05.

Rysunek 2
Rysunek 2. Leptyna zmniejsza nagrodę w postaci pożywienia u myszy. Podawanie leptyny obwodowej (5 mg/kg) obniżało progi granicznej odpowiedzi PR u myszy (n=4). Średnia±SEM; *P<0,05.

Discussion

Produkcja i bezpłatny dostęp do tego artykułu wideo są sponsorowane przez Med Associates, Inc.

Disclosures

Niniejszy raport szczegółowo opisuje protokół zastosowany do pomiaru nagradzających efektów wysokotłuszczowego jedzenia u myszy za pomocą zadania warunkowania instrumentalnego opartego na progresywnym stosunku.

Acknowledgements

Ten projekt był wspierany przez granty z Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (355881) oraz Canadian Foundation for Innovation.

Materials

Komory Med Associates, Inc.
operacyjne myszyENV-009AMed Associates Inc.
PO Box 319
St. Albans, Vermont 05478,
USA
Telefon: (802) 527-2343
8 wejść/16 wejść Smart Control Connection Panel Med Associates, Inc.SG-716B
Ultralekka chowana dźwignia myszy Med Associates, Inc.ENV-312
Dozownik granulek Med Associates, Inc.ENV-203
House Light Med Associates, Inc.ENV-215
Stimulus Light Med Associates, Inc.ENV-221
Bezpyłowy precyzyjny granulat o wysokiej zawartości tłuszczu i cukru 20 mgBio-ServF-06649Bio-Serv
One 8th Street, Suite 1
Frenchtown, NJ 08825, USA
Telefon: (800)-996-9908
Tabela 1. Specjalistyczne wyposażenie i materiał

References

  1. Fulton, S. Appetite and reward. Front. Neuroendocrinol. 31, 85-103 (2010).
  2. Zheng, H., Lenard, N. R., Shin, A. C., Berthoud, H. R. Appetite control and energy balance regulation in the modern world: reward-driven brain overrides repletion signals. International journal of Obesity. 33, S8-S13 (2009).
  3. Skinner, B. F. . The Behavior of Organisms: An Experimental Analysis. , (1938).
  4. Hodos, W. Progressive ratio as a measure of reward strength. Science. 134, 943-944 (1961).
  5. Hodos, W., Kalman, G. Effects of increment size and reinforcer volume on progressive ratio performance. J. Exp. Anal. Behav. 6, 387-392 (1963).
  6. Stafford, D., LeSage, M. G., Glowa, J. R. Progressive-ratio schedules of drug delivery in the analysis of drug self-administration: a review. Psychopharmacology. , 139-169 (1998).
  7. Glass, M. J., O'Hare, E., Cleary, J. P., Billington, C. J., Levine, A. S. The effect of naloxone on food-motivated behavior in the obese Zucker rat. Psychopharmacology (Berl). 141, 378-384 (1999).
  8. Brennan, K., Roberts, D. C., Anisman, H., Merali, Z. Individual differences in sucrose consumption in the rat: motivational and neurochemical correlates of hedonia. Psychopharmacology (Berl). 157, 269-276 (2001).
  9. Vaughan, C., Moore, M., Haskell-Luevano, C., Rowland, N. E. Food motivated behavior of melanocortin-4 receptor knockout mice under a progressive ratio schedule. Peptides. 27, 2829-2835 (2006).
  10. Haluk, D. M., Wickman, K. Evaluation of study design variables and their impact on food-maintained operant responding in mice. Behav. Brain Res. 207, 394-401 (2010).
  11. Richardson, N. R., Roberts, D. C. Progressive ratio schedules in drug self-administration studies in rats: a method to evaluate reinforcing efficacy. J. Neurosci. Methods. 66, 1-11 (1996).
  12. Jewett, D. C., Cleary, J., Levine, A. S., Schaal, D. W., Thompson, T. Effects of neuropeptide Y, insulin, 2-deoxyglucose, and food deprivation on food-motivated behavior. Psychopharmacology (Berl). 120, 267-271 (1995).
  13. Fulton, S., Woodside, B., Shizgal, P. Modulation of brain reward circuitry by leptin. Science. 287, 125-128 (2000).
  14. Figlewicz, D. P., Bennett, J. L., Naleid, A. M., Davis, C., Grimm, J. W. Intraventricular insulin and leptin decrease sucrose self-administration in rats. Physiol. Behav. 89, 611-616 (2006).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request Permission

Play Video

Progresywny stosunek reagowania na smaczne pokarmy o wysokiej zawartości tłuszczu i cukru u myszy
JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code