Nowy gatunek komórkowego białka prionowego (PrPC) został niedawno zidentyfikowany w niezakażonych ludzkich mózgach przy użyciu opisanych tutaj metod. Metody te mogą być wykorzystane do izolacji różnych gatunków PrP, a niektóre z nich są również przydatne w izolacji innych agregatów białek o błędnej strukturze z ludzkich mózgów.
Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.
Artykuł metodologiczny
Izolacja rozpuszczalnych i nierozpuszczalnych oligomerów PrP w prawidłowym ludzkim mózgu
W tym artykule
Podsumowanie
Streszczenie
Kluczowe zdarzenie w patogenezie chorób prionowych polega na konwersji kodowanego przez gospodarza komórkowego białka prionowego PrPC w jego patogenną izoformę PrPSc 1. PrPC jest rozpuszczalne w detergentach i wrażliwe na trawienie proteinazą K (PK), podczas gdy PrPSc tworzy nierozpuszczalne w detergentach agregaty i jest częściowo oporne na PK2-6. Wiadomo, że konwersja PrPC do PrPSc wiąże się z przejściem konformacyjnym struktur białka z helis α w harmonijki β. Jednak ścieżka in vivo pozostaje wciąż słabo poznana. Próba zidentyfikowania w nieinfected mózgu endogennego PrPSc, pośredniego PrP* lub „cichego prionu”, nie zakończyła się jeszcze sukcesem7.
Wykorzystując kombinację podejść biofizycznych i biochemicznych, zidentyfikowaliśmy nierozpuszczalne agregaty PrPC (oznaczone jako iPrPC) w niezinfekowanych mózgach ssaków oraz w hodowlanych komórkach neuronalnych8, 9. W niniejszym materiale opisujemy szczegółowe procedury tych metod, w tym ultrawirowanie w buforze z detergentem, sedymentację w gradientowym stopniu stężeń sacharozy, chromatografię wykluczania cząsteczkowego, wzbogacanie iPrP za pomocą białka genu 5 (g5p), które specyficznie wiąże się ze strukturalnie zmienionymi formami PrP10, oraz traktowanie PK. Połączenie tych podejść pozwala wyizolować z prawidłowego ludzkiego mózgu nie tylko nierozpuszczalne agregaty PrPSc i PrPC, ale również rozpuszczalne oligomery PrPC. Ponieważ protokoły opisane w niniejszym opracowaniu były stosowane do izolacji zarówno PrPSc z zakażonych mózgów, jak i iPrPC z niezinfekowanych mózgów, dają nam one możliwość porównania różnic w cechach fizykochemicznych, neurotoksyczności i zakaźności między tymi dwiema izoformami. Takie badanie znacząco poszerzy naszą wiedzę na temat zakaźnych patogenów białkowych. Fizjologia i patofizjologia iPrPC nie są obecnie jasne. Co istotne, w nowo zidentyfikowanej ludzkiej chorobie prionowej, określanej jako zmiennie wrażliwa na proteazy prionopatia, odkryliśmy nowy PrPSc, który wykazuje podobne zachowanie immunoreaktywne i fragmentację co iPrPC 11, 12. Ponadto niedawno wykazaliśmy, że iPrPC jest głównym gatunkiem oddziałującym z białkiem amyloid-β w chorobie Alzheimera13. W tym samym badaniu metody te zostały wykorzystane do izolacji agregatów i oligomerów Abeta w chorobie Alzheimera13, co sugeruje możliwość ich zastosowania w przypadku agregatów białek nieprionowych zaangażowanych w inne zaburzenia neurodegeneracyjne.
Protokół
1. Przygotowanie homogenatu mózgu oraz frakcji rozpuszczalnych w detergencie (S2) i nierozpuszczalnych (P2)
- Odważ 100 mg zamrożonej tkanki mózgu ludzkiego i dodaj 100 μl buforu do lizy (10 mM Tris, 150 mM NaCl, 0,5% Nonidet P-40 (NP-40), 0,5% EDTA, pH 7,4).
- Homogenizuj próbkę na lodzie za pomocą tłuczka napędzanego silnikiem akumulatorowym, zamroź w suchem lodzie przez 5 min, a następnie homogenizuj ponownie, najpierw ręcznie, a potem za pomocą silnika, i dodaj 300 μl lub 800 μl buforu do lizy (co odpowiada odpowiednio 20% lub 10% całkowitego homogenatu mózgu).
- Wirowkuj 20% lub 10% całkowitego homogenatu mózgu w wirówce stołowej z prędkością 1 000 x g przez 10 min w temperaturze 4 °C, aby zebrać supernatant (S1).
- Przeprowadź ultrawirowanie 10% frakcji S1 przy 35 000 rpm (100 000 x g) w rotorze SW55 (Beckman Coulter, Fullerton, CA) przez 1 h w temperaturze 4 °C. Przenieś supernatanty (S2) zawierające frakcję rozpuszczalną w detergentach do czystej probówki. Przesuspenduj osady zawierające frakcję nierozpuszczalną w detergentach (P2) w 100 μl lub 200 μl buforu do lizy, aby uzyskać preparat stężony 10- lub 5-krotnie.
- W celu trawienia PK inkubuj próbki z takimi samymi ilościami PK w stężeniu 50 μg/ml w temperaturze 37 °C przez 1 h dla obu frakcji, S2 i P2. Aby przerwać trawienie PK, dodaj fenylometylosulfonian fluorowy do stężenia końcowego 5 mM oraz równą objętość buforu do próbek SDS (3% SDS, 2 mM EDTA, 4% β-merkaptoetanol, 10% glicerol, 50 mM Tris, pH 6,8). Gotuj próbki przez 10 min, a następnie chłodź w temperaturze pokojowej przez 5 min. Próbki są gotowe do analizy Western blotting.
2. Sedymentacja prędkościowa w gradientach skokowych sacharozy
- Inkubować 450 μl 20% S1 z równą objętością 2% sarkosylu w H2O przez 30 min na lodzie.
- Do probówki Beckman o maksymalnej pojemności 5 ml dodać po 0,5 ml sacharozy o stężeniach 60%, 30%, 25%, 20%, 15% i 10%.
- Nanieść 0,4 ml S1 na górę skokowego gradientu sacharozy 10-60%.
- Wirować przy 48 000 obr./min (200 000 x g, rotor SW55) przez 1 h w temperaturze 4 °C.
- Zbierać frakcje o objętości 283 μl każda, zaczynając od góry probówki, aby uzyskać łącznie 12 frakcji.
- Przenieść 20 μl każdej frakcji do nowej probówki Eppendorf, dodać 20 μl buforu do próbek i gotować przez 10 min.
- Schładzać próbki przez 4 min w dygestorium, wirować przy 1 000 x g przez 1 min, a następnie wymieszać w wirówce typu vortex. Nanieść próbki na gotowy żel.
3. Chromatografia żelowa (wykluczania rozmiarów)
- Do wyznaczenia stanu oligomerycznego cząsteczek PrP należy użyć kulek Superdex 200 HR (Pharmacia, Uppsala, Szwecja) w kolumnie o wymiarach 1 x 30 cm.
- Siedem markerów masy cząsteczkowej (Sigma, St. Louis, MI), w tym błękitny dekstran (2,000 kDa), tyreoglobulina (669 kDa), apoferrytyna (443 kDa), β-amylaza (200 kDa), dehydrogenaza alkoholowa (150 kDa), albuminy (66 kDa) oraz anhidraza węglanowa (29 kDa), jest nakładana niezależnie w stężeniach zalecanych przez firmę Sigma w objętościach próbek 200 μl.
- Objętość elucji błękitnego dekstranu służy do wyznaczenia objętości martwej (V0 = 8.45 ml), a całkowita objętość (Vt = 24 ml) jest podana w instrukcji produktu. Objętości elucji pików (Ve) oblicza się na podstawie chromatogramu i retencji frakcyjnej. Współczynnik podziału Kav (definiujący zachowanie próbki) oblicza się według równania: Kav = (Ve - V0)/(Vt - V0). Krzywą kalibracyjną wyznacza się, nanosząc Kav standardów białkowych względem log MW standardów8.
- Masę cząsteczkową (MW) różnych form PrP odzyskanych w poszczególnych frakcjach FPLC ocenia się zgodnie z krzywą kalibracyjną wygenerowaną za pomocą filtracji żelowej różnych standardów.
- W każdym przebiegu do kolumny należy wstrzyknąć 200 μl S1 w buforze lizującym zawierającym 1% sarkosylu.
- Chromatografię przeprowadza się w systemie FPLC (GE Healthcare) przy szybkości przepływu 0,25 ml/min, a frakcje o objętości 0,25 ml każda zbiera się za pomocą kolektora frakcji (Amersham Biosciences, RediFrac).
- Każdą frakcję o objętości 0,125 ml inkubuje się z 0,5 ml schłodzonego wcześniej metanolu w temperaturze -20 °C przez 2 h.
- Próbki wiruje się w mikrocentry fudze laboratoryjnej przy 13,000 x g przez 30 min w temperaturze 4 °C. Następnie odrzuca się nadsącz, a osad resuspenduje w 20 μl buforu do próbek SDS, jak wspomniano powyżej, gotuje przez 10 min, chłodzi do temperatury pokojowej i nakłada na gotowy żel.
4. Wychwytywanie PrP przez g5p
- Cząsteczkę g5p (100 μg) (uprzejmie udostępnioną przez drów Geoffa Kneale'a i Johna McGeehana z University of Portsmouth, UK) konjuguje się z 7 x 108 magnetycznymi kulkami aktywowanymi tosylanem, inkubując 100 μg g5p oraz 350 μl kulek g5p w 1 ml soli fizjologicznej buforowanej fosforanowo (PBS) w temperaturze 37 °C przez 20 h. Kulki g5p przyciąga się do ścianek probówek Eppendorf za pomocą zewnętrznego pola magnetycznego, a następnie usuwa cały roztwór. Kulki przemywa się trzykrotnie 1 ml PBS zawierającego 0,1% albuminy surowicy bydlęcej (BSA).
- Kulek skoniugowanych z g5p inkubuje się w 1 ml 0,2 M Tris-HCl, pH 7,4 zawierającego 0,1% BSA w temperaturze 37 °C przez 5 h w celu zablokowania niespecyficznego wiązania, a następnie przemywa się kulki trzykrotnie 1 ml PBS zawierającego 0,1% BSA, zgodnie z opisaną wcześniej procedurą. Roztwór usuwa się i dodaje 1 ml PBS do kulek. Przygotowane kulki g5p są stabilne przez co najmniej 3 miesiące w temperaturze 4 °C.
- Wychwytywanie PrP przez g5p przeprowadza się poprzez inkubację 100 μl frakcji S1 lub P2 z 60 μl kulek skoniugowanych z g5p (10 μg białka/6 X 107 kulek) w 1 ml buforu wiążącego (3% Tween-20, 3% NP-40 w PBS, pH 7,5).
- Po inkubacji przy stałej rotacji przez 3 h w temperaturze pokojowej, kulki g5p zawierające PrP są przyciągane do ścianek probówek Eppendorf za pomocą zewnętrznego pola magnetycznego, co umożliwia łatwe usunięcie wszystkich niewiązących się cząsteczek z roztworu.
- Po trzykrotnym przemyciu w buforze piorącym (2% Tween-20 i 2% NP-40 w PBS, pH 7,5), kulki g5p są zbierane i podgrzewane do 95 °C przez 5 min w buforze do próbek SDS (3% SDS, 2 mM EDTA, 10% glicerolu, 50 mM Tris-HCl, pH 6,8).
- Po schłodzeniu próbek przez 5 min w temperaturze pokojowej, próbki wiruje się przy 1 000 x g przez 5 min w temperaturze pokojowej. Nadlodze są gotowe do analizy Western blotting.
5. Western blotting
- Próbki zagotowane w buforze do próbek SDS nanosi się na 15% gotowe żele Tris-HCl Criterion (Bio-Rad) przy napięciu 150 V przez około 80 min.
- Białka z żeli przenosi się na membranę PVDF przez 2 h przy 70V.
- Po zablokowaniu membran w 5% roztworze mleka w soli buforowanej Trisem zawierającej 0,01% Tween-20 (TBS-T), membrany inkubuje się przez 2 h w temperaturze pokojowej z pierwotnym przeciwciałem monoklonalnym lub poliklonalnym 3F4 (1:40 000), 1E4 (1:1 000), anty-N8 (1:6 000) lub anty-C8 (1:6 000) w celu detekcji cząsteczki PrP.
- Po inkubacji z przeciwciałem wtórnym: owczym anty-mysim IgG sprzężonym z HRP w rozcieńczeniu 1:3000 lub oslim anty-kroliczym IgG w rozcieńczeniu 1:3 000, prążki PrP wizualizuje się na filmie Kodak przy użyciu zestawu ECL Plus, zgodnie z protokołem producenta.
6. Reprezentatywne wyniki
W porównaniu z próbkami sporadycznego CJD, w frakcji P2 w normalnych mózgach wykryto niewielką ilość iPrPC, choć większość PrPC odzyskano we frakcji S2 (Rysunek 1). Jak wskazano wcześniej8, iPrP stanowi około 5-25% całkowitego PrP, w tym form pełnowymiarowych i skróconych z N-końca.
Analizy z wykorzystaniem sedymentacji w gradientach skokowych sacharozy wykazały, że choć większość PrPC z mózgów osób bez CJD odzyskano w górnych frakcjach 1-3, niewielkie ilości PrP wykryto również w dolnych frakcjach 9-11, które zazwyczaj zawierają duże agregaty8 (Rysunek 2).
Za pomocą filtracji żelowej w mózgu z chorobą Creutzfelda-Jakoba wyizolowano różne gatunki PrPSc, obejmujące monomery, małe oligomery oraz większe agregaty (Rysunek 3A). Jednakże w frakcjach nierozpuszczalnych prawidłowych mózgów wykryto również niewielką ilość większych agregatów o masie cząsteczkowej przekraczającej 2 000 kDa (Rysunek 3C). Co więcej, dimery i tetramery PrPC wykryto nie tylko we frakcjach nierozpuszczalnych, ale również we frakcjach rozpuszczalnych (Rysunek 3B i 3C).
Po traktowaniu PK i PNGazą, PrP wychwycone przez g5p wykryto za pomocą przeciwciała 1E4 przeciwko PrP97-105 8. Wykryto trzy odporne na PK fragmenty rdzeniowe nazwane PrP*20, PrP*19 i PrP*7, które migrowały odpowiednio na poziomie ~20 kDa, ~19 kDa i ~7 kDa (Rysunek 4, panel lewy). Jednak nie wykryto żadnego PrP, gdy przeciwciało 1E4 inkubowano wstępnie z syntetycznym peptydem o sekwencji identycznej z epitopem 1E4 (Rysunek 4, panel środkowy), co wskazuje, że prążki wykryte przez 1E4 są fragmentami PrP. Ponadto przeciwciało anty-C ujawniło dwa różne fragmenty PrP migrujące na poziomie ~18 kDa (PrP*18) i ~12-13 kDa (PrP-CTF12/13), oprócz PrP*20 (Rysunek 4, panel prawy).
Rysunek 1. Detekcja iPrPC i iPrPSc. Po traktowaniu PNGazą F w ilości 1/10 całkowitej objętości reakcji w temperaturze 37 °C przez 1 h w celu usunięcia glikanów z białka, pełnowymiarowe lub ucięte z końca N-końcowego formy PrP w frakcjach rozpuszczalnych i nierozpuszczalnych (S2 i P2) izolowanych przez ultrawirowanie w próbkach mózgu z grupy kontrolnej (CTL) oraz z przypadków sporadycznego CJD (sCJD) wykryto za pomocą przeciwciała 3F4 przeciwko PrP106-112 (lewy panel), przeciwciała anti-N przeciwko PrP23-40 (środkowy panel) oraz przeciwciała anti-C przeciwko PrP220-231 (prawy panel). W próbkach CTL niewielka ilość PrP jest wykrywana w P2, podczas gdy duża ilość występuje w S2. W przeciwieństwie do tego, w próbkach sCJD w P2 wykryto więcej PrP niż w S2.
Rycina 2. Sedymentacja PrP w skokowych gradientach sacharozy. PrP w poszczególnych frakcjach od 1 do 11 z próbki mózgu S1 (bez CJD) wykryto metodą Western blotting z użyciem przeciwciała 3F4. Choć większość PrPC wykryto w górnych frakcjach 1-3, niewielkie ilości PrP zaobserwowano również w dolnych frakcjach 9-11. Ponadto wzór prążkowy PrP z góry i dołu różni się od siebie: PrP odzyskano w górnych frakcjach z dominującym górnym prążkiem, natomiast PrP odzyskano w dolnych frakcjach z dominującym dolnym prążkiem. Jako kontrola, po prawej stronie blotu, naniesiono PrPSc traktowane PK.
Rysunek 3. Detekcja rozpuszczalnych i nierozpuszczalnych oligomerów PrPC. Rozpuszczalne i nierozpuszczalne PrPC z normalnych ludzkich mózgów zostały rozdzielone za pomocą ultrawirowania, a następnie poddane odpowiednio filtracji żelowej. Wielkości cząsteczkowe poszczególnych frakcji zmierzono poprzez przeprowadzenie analizy grupy markerów masy cząsteczkowej. (A) Formy PrPSc z próbek mózgu sCJD. Wykryto dwie populacje form PrP: frakcje filtracji żelowej 49-65 zawierają monomery i małe oligomery, natomiast frakcje 27-33 zawierają duże agregaty. Wykryto formy PrPC z frakcji rozpuszczalnej (S2) (B) i frakcji nierozpuszczalnej (P2) (C) z normalnych kontroli. PrP wykazano przy użyciu przeciwciała 3F4. Dimery (frakcja 55) i tetramery (frakcja 51) PrP wykryto nie tylko w P2, ale także w S2 próbek normalnego mózgu (B i C). Duże agregaty wykryto wyłącznie w P2 próbek normalnych (C).
Rysunek 4. Detekcja różnych fragmentów iPrP opornych na działanie PK w preparatach wzbogaconych o g5p z normalnych ludzkich mózgów. Próbki wzbogacone o g5p poddano działaniu PK i PNGase F przed przeprowadzeniem analizy Western blot z użyciem przeciwciał 1E4 (lewy panel), 1E4 preinkubowanych z syntetycznym peptydem o sekwencji identycznej z epitopem 1E4 (środkowy panel) oraz przeciwciał anti-C (prawy panel). Przeciwciało 1E4 wykryło trzy oporne na PK fragmenty PrP nazwane PrP*20, PrP*19 oraz PrP*7 (lewy panel). Po zablokowaniu 1E4 peptydem nie wykryto żadnych PrPres (środkowy panel), co wskazuje, że prążki wykryte za pomocą 1E4 są fragmentami PrP. Przeciwciało anti-C ujawniło dwa dodatkowe oporne na PK fragmenty PrP nazwane PrP*18 oraz PrP-CTF12/13, oprócz PrP*20.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Dyskusja
Opisana tutaj kombinacja podejść pozwala na wyizolowanie konsekwentnie nierozpuszczalnego białka PrPC agregaty i rozpuszczalne PrPC oligomery z normalnego ludzkiego mózgu. Ultracentryfugacja przy 100 000 x g przez jedną godzinę to klasyczna metoda, która była szeroko stosowana do oddzielania nierozpuszczalnego PrPSc z rozpuszczalnego PrPC 14Mimo że metoda ta jest wydajna, jedną z kwestii wymagających ostrożności jest unikanie kontaminacji podczas pobierania supernatantu (S2) po...
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Oświadczenia
Nie zadeklarowano konfliktów interesów.
Podziękowania
The Autorzy są wdzięczni Human Brain and Spinal Fluid Resource Center (Los Angeles, CA) za udostępnienie prawidłowych próbek mózgu. Badanie zostało sfinansowane przez National Institutes of Health (NIH) R01NS062787, CJD Foundation, Alliance BioSecure, a także University Center on Aging and Health przy wsparciu McGregor Foundation oraz President's Discretionary Fund (Case Western Reserve University).
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Materiały
| Nazwa | Firma | Numer katalogowy | Komentarze |
|---|---|---|---|
| Fluorek fenylometylosulfonylowy | Sigma-Aldrich | P7626 | 72 mM w 2-propanolu |
| Proteinaza K | Sigma-Aldrich | P2308 | 2 mg/ml w H2O |
| PNGaza F | New England Biolabs | MWGF200 | |
| Ultracentryfuga LE-80K, rotor SW55 | Beckman Coulter | Nr kat. 365668, 356860 | |
| Kuleczki Superdex 200 HR | GE Healthcare | 17-1088-01 | |
| System AKTA FPLC | GE Healthcare | 18-1900-26 | |
| Markery masy cząsteczkowej | Sigma-Aldrich | MWGF200 | Różne |
| Magnetyczne kuleczki Dynabeads M-280 | Invitrogen | 143-01 | |
| Przeciwciało 3F4 | Covance | SIG-39600 | |
| Przeciwciało 1E4 | Cell Sciences | M1840 | |
| Gotowe żele odlewane 15% Tris-HCl | Bio-Rad | 345-0020 |
Bibliografia
- Prusiner, S. B. Prions. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 95, 13363-13383 (1998).
- Oesch, B., Westaway, D., Wälchli, M., McKinley, M. P., Kent, S. B. H., Aebersold, R., Barry, R. A., Tempst, P., Teplow, D. B., Hood, L. E., Prusiner, S. B., Weissmann, C. A cellular gene encodes scrapie PrP 27-30 protein. Cell. 40, 735-746 (1985).
- Bolton, D. C., McKinley, M. P., Prusiner, S. B. Identification of a protein that purifies with the scrapie prion. Science. 218, 1309-1311 (1982).
- Prusiner, S. B., McKinley, M. P., Bowman, K. A., Bolton, D. C., Bendheim, P. E., Groth, D. F., Glenner, G. G. Scrapie prions aggregate to form amyloid-like birefringent rods. Cell. 35, 349-358 (1983).
- Hope, J., Morton, L. J., Farquhar, C. F., Multhaup, G., Beyreuther, K., Kimberlin, R. H. The major polypeptide of scrapie-associated fibrils (SAF) has the same size, charge distribution and N-terminal protein sequence as predicted for the normal brain protein (PrP). EMBO J. 5, 2591-2597 (1986).
- Prusiner, S. B., Groth, D. F., Bolton, D. C., Kent, S. B., Hood, L. E. Purification and structural studies of a major scrapie prion protein. Cell. 38, 127-134 (1984).
- Hall, D., Edskes, H. Silent prions lying in wait: a two-hit model of prion/amyloid formation and infection. J. Mol. Biol. 336, 775-786 (2004).
- Yuan, J., Xiao, X., McGeehan, J., Dong, Z., Cali, I., Fujioka, H., Kong, Q., Kneale, G., Gambetti, P., Zou, W. Q. Insoluble aggregates and protease-resistant conformers of prion protein in uninfected human brains. J. Biol. Chem. 281, 34848-34858 (2006).
- Yuan, J., Dong, Z., Guo, J. P., McGeehan, J., Xiao, X., Wang, J., Cali, I., McGeer, P. L., Cashman, N. R., Bessen, R., Surewicz, W. K., Kneale, G., Petersen, R. B., Gambetti, P., Zou, W. Q. Accessibility of a critical prion protein region involved in strain recognition and its implications for the early detection of prions. Cell. Mol. Life Sci. 65, 631-643 (2008).
- Zou, W. Q., Zheng, J., Gray, D. M., Gambetti, P., Chen, S. G. Antibody to DNA detects scrapie but not normal prion protein. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 101, 1380-1385 (2004).
- Gambetti, P., Dong, Z., Yuan, J., Xiao, X., Zheng, M., Alshekhlee, A., Castellani, R., Cohen, M., Barria, M. A., Gonzalez-Romero, D., Belay, E. D., Schonberger, L. B., Marder, K., Harris, C. A novel human disease with abnormal prion protein sensitive to protease. Ann. Neurol. 63, 697-708 (2008).
- Zou, W. Q., Puoti, G., Xiao, X., Yuan, J., Qing, L., Cali, I., Shimoji, M., Langeveld, J. P., Castellani, R., Notari, S., Crain, B., Schmidt, R. E., Geschwind, M. Variably protease-sensitive prionopathy: A new sporadic disease of the prion protein. Ann. Neurol. 68, 162-172 (2010).
- Zou, W. Q., Xiao, X., Yuan, J., Puoti, G., Fujioka, H., Wang, X., Richardson, S., Zhou, X., Zou, R., Li, S., Zhu, X. Amyloid-beta42 interacts mainly with insoluble prion protein in the Alzheimer brain. J. Biol. Chem. 286, 15095-15105 (2011).
- Zou, W. Q., Colucci, M., Gambetti, P., Chen, S. G. Characterization of prion proteins. Methods in Molecular Biology-Neurogenetics: Methods and Protocols. Potter, N. T. , Humana Press Inc. Totowa. 305-314 (2002).
- Tzaban, S., Friedlander, G., Schonberger, O., Horonchik, L., Yedidia, Y., Shaked, G., Gabizon, R., Taraboulos, A. Protease-sensitive scrapie prion protein in aggregates of heterogeneous sizes. Biochemistry. 41, 12868-12875 (2002).
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Przedruki i uprawnienia
