Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Pomiar chemotaksji komórkowej za pomocą systemu ECIS/Taxis

14.6K wyświetleń

DOI:

10.3791/3840

1 kwietnia 2012

W tym artykule

Podsumowanie

System ECIS/Taxis to zautomatyzowany test w czasie rzeczywistym, który służy do pomiaru chemotaksji komórkowej. W tym teście komórki przemieszczają się pod warstwą agarozy, aby dotrzeć do elektrody docelowej. Ruch komórkowy jest mierzony poprzez pojawienie się oporu dla prądu AC 0.

Streszczenie

Ruch komórek w odpowiedzi na bodźce zewnętrzne jest fundamentalny dla wielu procesów komórkowych, w tym dla gojenia ran, stanu zapalnego oraz odpowiedzi na infekcję. Powszechną metodą pomiaru chemotaksji jest test z wykorzystaniem komory Boydena, w której komórki i chemoatraktant są oddzielone porowatą membraną. W miarę jak komórki migrują przez membranę w kierunku chemoatraktanta, przywierają one do jej dolnej strony lub opadają do znajdującego się poniżej medium, a następnie zostają zabarwione i przeliczone wizualnie 1. W tej metodzie komórki są wystawione na działanie gwałtownego i przejściowego gradientu chemoatraktanta, co uważa się za słabe odwzorowanie gradientów występujących w tkankach 2.

Inny system analizy, test chemotaksji pod agarozą, 3, 4 mierzy ruch komórek po stałym podłożu w cienkim filmie wodnym, który tworzy się pod warstwą agarozy. Gradient powstający w agarozie jest łagodny i uważa się go za odpowiednią reprezentację gradientów występujących naturalnie. Chemotaksję można ocenić poprzez obrazowanie mikroskopowe przebytej odległości. Zarówno test z komorą Boydena, jak i test pod agarozą są zazwyczaj konfigurowane jako analizy punktu końcowego.

Zautomatyzowany system ECIS/Taxis łączy podejście z zastosowaniem warstwy agarozy z elektrycznym pomiarem impedancji między komórkami a podłożem (ECIS) 5, 6. W tym teście elektrody docelowe znajdują się w każdej z 8 komór. Duża elektroda pomocnicza przebiega przez każdą z 8 komór (Ryc. 2). Każda komora jest wypełniona agarozą, a w niej, po obu stronach elektrody docelowej, wycięto dwa małe otwory. Jeden otwór wypełnia się badaną populacją komórek, natomiast w drugim umieszcza się źródła dyfundującego chemoatraktanta (Ryc. 3). Prąd przepływający przez system pozwala określić zmianę rezystancji, która następuje w momencie, gdy komórki przechodzą nad elektrodą docelową. Komórki znajdujące się na elektrodzie docelowej zwiększają rezystancję systemu 6. Ponadto gwałtowne wahania rezystancji odzwierciedlają zmiany w oddziaływaniach komórek z powierzchnią elektrody i wskazują na zachodzące zmiany kształtu komórek. System ECIS/Taxis umożliwia pomiar ruchu populacji komórek w czasie rzeczywistym przez dłuższe okresy, a jednocześnie jest na tyle czuły, że pozwala wykryć dotarcie pojedynczej komórki do elektrody docelowej.

Dictyostelium discoidium wykazuje zdolność do migracji w obecności gradientu folianów 7, 8, a jego odpowiedź chemotaktyczną można precyzyjnie zmierzyć za pomocą ECIS/Taxis 9. Za pomocą ECIS/Taxis mierzono również chemotaksję leukocytów w odpowiedzi na SDF1α oraz na antagonisty chemotaksji 10, 11. Przykład odpowiedzi leukocytów na SDF1α przedstawiono na Rysunku 1.

Protokół

1. Przygotowanie elektrod ECIS/Taxis

  1. Złotą powierzchnię matrycy elektrod ECIS/taxis (składającej się z 8 komór na slajd) stabilizuje się wstępnie poprzez inkubację ze sterylną 10 mM cysteiną w wodzie dejonizowanej (dH2O) przez 15 min w temperaturze pokojowej w warunkach sterylnych.
  2. Odsysa się roztwór cysteiny z każdej komory elektrod i płucze ją 3 razy sterylną dH2

Wykres znormalizowanej rezystancji w funkcji czasu; przedstawia wpływ RPMI 1640 i SDF1a na zachowanie komórek.

Schemat chipa mikroprzepływowego; kanały, wloty do analiz lab-on-chip, sortowania komórek lub diagnostyki.

Schemat chemotaksji z migracją komórek, szerokość 2mm, studzienki z chemoatraktantem i komórkami, elektroda docelowa.

Proces wiercenia w celu umieszczenia elektrody docelowej; schemat pokazuje odstęp 4,08mm dla konfiguracji elektrod.

Schemat konstrukcji elektrody z elektrodą docelową, złote punkty do analizy przewodnictwa elektrycznego.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Nowatorskie cechy testu ECIS/Taxis obejmują możliwość zautomatyzowanego gromadzenia danych w czasie rzeczywistym podczas reakcji komórek na chemoatraktant. Chociaż najpowszechniejszym zastosowaniem tej technologii jest pomiar odpowiedzi komórkowych na pojedyncze gradienty chemotaktyczne lub gradienty składające się z mieszanin agonistów i antagonistów chemotaksji, podejście ECIS/Taxis dopuszcza również modyfikacje tych konfiguracji, które mogą być bardzo pomocne w ocenie responsywności komórkowej. Istnieją przekonujące d...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

David A Knecht i Michael A Lynes posiadają wydany patent na technologię ECIS/Taxis, która została licencjonowana przez University of Connecticut firmie Applied Biophysics, Inc.

Podziękowania

Praca ta była wspierana przez granty z National Institutes of Health (ES07408 i EB00208).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
ECIS ZθApplied Biophysicswww.biophysics.com/prodducts_Ecisz0.php
Macierz elektrod ECISApplied Biophysics8W Chemotaxiswww.biophysics.com/cultureware.php
Agaroza Seakem GTGBioWhittaker50070
RPMI1640Cellgro10-040
Płodowa surowica bydlęca HyCloneThermo Fisher Scientific, Inc.SH300703
Penicylina/StreptomycynaMP Biomedicals1670049Penicylina 5,000 IU/ml; Streptomycyna 5 mg/ml
Bufor HEPESMP Biomedicals1688449roztwór 1M, stopień do hodowli komórkowych
Kanula ze stali nierdzewnej 14 Gauge (2) 4 caleGeneral Supply5-8365-1tępy koniec

Bibliografia

  1. Boyden, S. The chemotactic effect of mixtures of antibody and antigen on polymorphonuclear leucocytes. J. Exp. Med. 115, 453-466 (1962).
  2. Lauffenburger, D. A., Tranquillo, R. T., Zigmond, S. H. Concentration gradients of chemotactic factors in chemotaxis assays. Methods Enzymol. 162, 85-101 (1988).
  3. Nelson, R. D., Quie, P. G., Simmons, R. L. Chemotaxis under agarose: a new and simple method for measuring chemotaxis and spontaneous migration of human polymorphonuclear leukocytes and monocytes. J. Immunol. 115, 1650-1650 (1975).
  4. Newton-Nash, D. K., Tonellato, P., Swiersz, M., Abramoff, P. Assessment of chemokinetic behavior of inflammatory lung macrophages in a linear under-agarose assay. J. Leukoc. Biol. 48, 297-305 (1990).
  5. Giaever, I., Keese, C. R. Monitoring fibroblast behavior in tissue culture with an applied electric field. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 81, 3761-374 (1984).
  6. Keese, C. G. I. A Whole Cell Biosensor bsed on Cell-Substrate Interactions. IEEE Engineering in Medicine and Biology Society. 12, 500-501 (1990).
  7. Laevsky, G., Knecht, D. A. Cross-linking of actin filaments by myosin II is a major contributor to cortical integrity and cell motility in restrictive environments. J. Cell. Sci. 116, 3761-3770 (2003).
  8. Condeelis, J., Bresnick, A., Demma, M., Dharmawardhane, S., Eddy, R., Hall, A. L., Sauterer, R., Warren, V. Mechanisms of amoeboid chemotaxis: an evaluation of the cortical expansion. 11, 5-6 (1990).
  9. Hadjout, N., Laevsky, G., Knecht, D. A., Lynes, M. A. Automated real-time measurement of chemotactic cell motility. Biotechniques. 31, 1130-1138 (2001).
  10. Hadjout, N., Yin, X., Knecht, D. A., Lynes, M. A. Automated real-time measurements of leukocyte chemotaxis. J. Immunol. Methods. 320, 70-80 (2007).
  11. Yin, X., Knecht, D. A., Lynes, M. A. Metallothionein mediates leukocyte chemotaxis. BMC Immunol. 6, 21-21 (2005).
  12. Lundien, M. C., Mohammed, K. A., Nasreen, N., Tepper, R. S., Hardwick, J. A., Sanders, K. L., Van Horn, R. D., Antony, V. B. Induction of MCP-1 expression in airway epithelial cells: role of CCR2 receptor in airway epithelial injury. J. Clin. Immunol. 22, 144-152 (2002).
  13. Zudaire, E., Cuesta, N., Murty, V. The aryl hydrocarbon receptor repressor is a putative tumor suppressor gene in multiple human cancers. J. Clin. Invest. 118, 640-650 (2008).
  14. Opp, D., Wafula, B., Lim, J., Huang, E., Lo, J. C., Lo, C. M. Use of electric cell-substrate impedance sensing to assess in vitro cytotoxicity. Biosens. Bioelectron. 24, 2625-269 (2009).
  15. Foxman, E. F., Kunkel, E. J., Butcher, E. C. Integrating conflicting chemotactic signals. The role of memory in leukocyte navigation. J. Cell. Biol. 147, 577-588 (1999).
  16. Heit, B., Tavener, S., Raharjo, E., Kubes, P. An intracellular signaling hierarchy determines direction of migration in opposing chemotactic gradients. J. Cell. Biol. 159, 91-102 (1999).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

System ECIS/Taxiselektryczne pomiary impedancji między komórką a podłożemtest pod agarozypomiar chemotaksji w czasie rzeczywistymgradient chemoatraktantaelektroda docelowafluktuacja rezystancjidetekcja mikroprzejśćlimfocyty T JCAT