Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Wirusowe śledzenie genetycznie zdefiniowanych obwodów neuronalnych

18.5K wyświetleń

DOI:

10.3791/4253

17 października 2012

W tym artykule

Podsumowanie

Opisano metodę śledzenia neuronów połączonych synaptycznie. Wykorzystujemy specyficzność TVA w komórce upstream, aby zbadać, czy interesująca nas populacja komórek otrzymuje sygnały synaptyczne od genetycznie zdefiniowanych typów komórek.

Streszczenie

Klasyczne metody badania obwodów neuronalnych charakteryzują się dość niską wydajnością. W badaniach nad obwodami coraz popularniejsze stają się wirusy transsynaptyczne, w szczególności wirus rzekomej wścieklizny (PRV) i wirus wścieklizny (RABV), a ostatnio także wirus zapalenia jamy ustnej (VSV). Te metody o wyższej wydajności wykorzystują wirusy, które przenoszą się między neuronami w kierunku anterogradowym lub retrogradowym.

Niedawno opracowano zmodyfikowany wirus RABV do monosynaptycznego śledzenia retrogradnego (Rysunek 1A). W tej metodzie gen glikoproteiny (G) zostaje usunięty z genomu wirusa i dostarczony ponownie wyłącznie do wybranych neuronów. Specyficzność infekcji osiąga się poprzez zastąpienie prawidłowej RABV-G chimeryczną białkiem G, składającym się z domeny zewnątrzkomórkowej glikoproteiny ASLV-A i domeny cytoplazmatycznej RABV-G (A/RG)1. Ta chimeryczna G specyficznie infekuje komórki wykazujące ekspresję receptora TVA1. Gen kodujący TVA może być dostarczany różnymi metodami2-8. Po infekcji neuronu wykazującego ekspresję TVA przez RABV-G, wirus RABV może przenosić się do innych, połączonych synaptycznie neuronów w kierunku retrogradnym dzięki własnej glikoproteinie G, która została dostarczona wraz z receptorem TVA. Technika ta pozwala na znakowanie stosunkowo dużej liczby wejść (5-10%)2 do określonego typu komórek, zapewniając próbkowanie wszystkich wejść do zdefiniowanego typu komórki startowej.

Niedawno zmodyfikowaliśmy tę technikę, aby wykorzystać VSV jako znacznik transsynaptyczny9. VSV oferuje kilka zalet, w tym szybkość ekspresji genów. W niniejszej pracy szczegółowo opisujemy nowy system śledzenia wirusowego z użyciem VSV, przydatny do badania mikroobwodów z zwiększoną rozdzielczością. Podczas gdy pierwotne strategie opublikowane przez Wickershama et al.4 oraz Beiera et al.9 umożliwiają znakowanie wszelkich neuronów, które rzutują na pierwotnie zainfekowane komórki wykazujące ekspresję TVA, w tym przypadku VSV został zaprojektowany tak, aby przenosić się wyłącznie do komórek wykazujących ekspresję TVA (Rycina 1B). Wirus jest najpierw pseudotypowany białkiem RABV-G, aby umożliwić infekcję neuronów znajdujących się poniżej neuronów wykazujących ekspresję TVA. Po zainfekowaniu tej pierwszej populacji komórek, uwalniany wirus może infekować wyłącznie komórki wykazujące ekspresję TVA. Ponieważ transsynaptyczne rozprzestrzenianie się wirusa jest ograniczone do komórek wykazujących ekspresję TVA, obecność lub brak połączeń z określonymi typami komórek może być badana z wysoką rozdzielczością. Schemat blokowy tych eksperymentów przedstawiono na Rycynie 2. Przedstawiamy tutaj model obwodu – obwód selektywności kierunkowej w siatkówce myszy. Badamy połączenia komórek amacrynych typu starburst (SAC) z komórkami zwojowymi siatkówki (RGC).

Protokół

1. Wytwarzanie wirusa z cDNA: Odzyskiwanie VSV z cDNA przy użyciu systemu Vaccinia-T710

  1. Na jeden dzień przed eksperymentem przenieść komórki BsrT7 do szalki 60 mm zawierającej DMEM + 10% FBS. Wysiać 2E6 komórek na szalkę. Komórki BsrT7 są pochodną komórek BHK21, czyli komórek nerki młodego chomika.
  2. Podgrzać bufor PBS z dodatkiem 1 mM magnezu i 1 mM wapnia do 37 °C.
  3. Pobrać niewielką alikwot vTF7-3, wirusa vaccinia wykazującego ekspresję polimerazy T7, i rozmrozić do temperatury pokojowej. vTF7-3 jest zakaźnym wirusem vaccinia wykazującym ekspresję polimerazy T7.11or należy stosować wyłącznie w warunkach poziomu bezp....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Wykorzystanie wirusów do badania obwodów neuronalnych jest stosunkowo wydajną metodą analizy połączonych neuronów. Jednak generowanie wirionów zarówno VSV, jak i RABV nie jest zadaniem trywialnym. Mimo przedstawionego powyżej protokołu odzyskiwania wirusa z cDNA, jest to wciąż zdarzenie o niskim prawdopodobieństwie. Poziomy każdego z plazmidów N, P i L muszą być precyzyjnie dostosowane, a w celu zapewnienia odzyskania wirusa konieczne jest przeprowadzenie wielu prób i powtórzeń. Formowanie cząsteczki rybonukleoproteinowe.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie zgłoszono żadnych konfliktów interesów.

Podziękowania

Chcielibyśmy podziękować Seanowi Whelanowi za pomoc w odzyskiwaniu rekombinowanych wariantów VSV, a Didem Goz i Ryanowi Chrenekowi za pomoc techniczną. Praca ta była wspierana przez HHMI (CLC) oraz grant nr #NS068012-01 (KTB).

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Hodowla tkanek
komórki nerki chomika (BSRT7)dostępne na zapytanie
vaccinia (vTF7-3)dostępne na zapytanie
plazmidy pN, pP, pldostępne na zapytanie
chlorek wapniaSigmaC1016
chlorek magnezuSigmaM8266
komórki HEK 293TOpen BiosystemsHCL4517
60 mm szalka hodowlana traktowana TCCorning430166
75 cm2 prostokątna kolba do hodowli komórkowej z ukośnym szyjką i nakrętką z filtremCorning430641
Pożywka : DMEM (Dulbecco's Modified Eagle Medium)Invitrogen12491-015
1 M HEPES pH 7.4Gibo15630-080
FBS: płodowa surowica bydlęcaGibco10437-028
PKSInvitrogen15140-163
odczynnik do transfekcji Lipofectamine 2,000Invitrogen11668-019
strzykawka: strzykawka 5 ml Luer-LockSigmaZ248010-1PAK
filtry strzykawkoweNalgene190-2520
PEI: wysokopotencjalny liniowy PEIPolysciences23966
Wirowanie wirusów
system filtracji próżniowej na górze probówki Corning 150 ml, pory 0,45 μmCorning430314
cienkościenne, ultra-przejrzyste probówki do ultrawirowania 38,5 ml, 25 x 89 mmBeckman-Coulter344058
ultrawirowarkaBeckman-Coulteroptima XL-80K
rotor do ultrawirowarki SW28Beckman-Coulter342207
Iniekcje u myszy
kapilarne mikropipetyDrummond5-000-2005
stereotaksNarishigeSR-5M
mikromanipulatorNarishigeSM-15
injektor UmpWorld Precision InstrumentsSys-Micro4
czterokanałowy mikrokontrolerWorld Precision InstrumentsUMP3
silnik warsztatowy M.TXB z pokrętłem sterującym C.EMX-1, 115 VForedomM.TXB-EM
szybkozmienny uchwyt H.10ForedomH.10
wiertło stopniowe, 0,5 mmForedomA-58005P
uchwyt mikr–elektrodyWorld Precision InstrumentsMEH2S
ketaminaHenry Schein995-2949
ksylazynaHenry Schein4015809TV
buprenorfinaHenry Schein1118217
strzykawka 1 mlBecton-Dickinson309628
igła do iniekcji G 30Becton-Dickinson305106
ochronna maść okulistycznaDoctors Foster and Smith9N-014748
etanolSigma493511
jodSigmaPVP1
Narzędzia chirurgiczne i do sekcji
nożyczkiFine Science Tools91402-12
pinceta standardowaFine Science Tools11000-12
pinceta precyzyjnaFine Science Tools11255-20
sprężynowe nożyczki VannasaFine Science Tools15000-00
rękojeść skalpelaFine Science Tools10003-12
ostrza skalpelaFine Science Tools10015-00
szwyRobbins Instruments20.SK640
Sekcja i barwienie przeciwciałami
paraformaldehydSigmaP6148
bufor fosforanowy (PBS)SigmaP4417
Triton X-100SigmaT9284
surowica osłaJackson Immunoresearch017-000-121
Przeciwciała
przeciwciałamilliporeAB144P
anty-gfpAbcamab13970
przeciwciała osie anty-kurczak Dylight 488Jackson immunoresearch703-545-155
przeciwciała osie anty-kurczak Alexa Fluor 647Jackson immunoresearch705-605-147
DAPIInvitrogenD1306
Montowanie tkanek
szkiełka mikroskopowe Superfrost plusFisher12-550-100
szkiełka zakrywkowe 22 x 22, grubość 0Electron Microscopy Sciences72198-10
elastomer silikonowyRogers CorpHT-6220
przezroczysty lakier do paznokciElectron Microscopy Sciences72180
odczynnik antyblaknący Prolong GoldInvitrogenP36930

Bibliografia

  1. Wickersham, I. R. Monosynaptic restriction of transsynaptic tracing from single, genetically targeted neurons. Neuron. 53, 639-647 (2007).
  2. Marshel, J. H., Mori, T., Nielsen, K. J., Callaway, E. M. Targeting single neuronal networks for gene expression and ....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Wirus transsynaptycznypseudotypowanie VSVreceptor TVAkom rki zwojowe siatk wkigwiazdkowate kom rki amacrynowemikroskopia fluorescencyjnawstrzykni cie stereotaktyczneultrawirowanieledzenie monosynaptyczne