Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Ilościowa analiza proteomów chromatyny w chorobach

12.9K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/4294

⸱

28 grudnia 2012

 ,  ,  ,  ,  , 

W tym artykule

Podsumowanie

Postępy w spektrometrii mas umożliwiły wysokoprzepustową analizę ekspresji i modyfikacji białek w wielu tkankach. W połączeniu z frakcjonowaniem subkomórkowym i modelami chorób, ilościowa spektrometria mas oraz bioinformatyka mogą ujawnić nowe właściwości systemów biologicznych. Metoda opisana w niniejszym opracowaniu analizuje białka związane z chromatyną w kontekście chorób serca i jest łatwo stosowalna w innych modelach in vivo chorób ludzkich.

Streszczenie

W jądrze komórkowym znajdują się proteomy, których funkcje są najściślej powiązane z regulacją genów. Jądra kardiomiocytów dorosłych ssaków są wyjątkowe ze względu na wysoki odsetek komórek dwuukładowych,1 przeważająco heterochromatyczny stan DNA oraz niedzielący się charakter kardiomiocytów, co sprawia, że dojrzałe jądra znajdują się w permanentnym stanie interfazy.2 Regulacja transkrypcyjna podczas rozwoju i w przebiegu chorób była w tym organie dobrze zbadana,3-5 jednak pozostaje stosunkowo nieodkryta rola białek jądrowych odpowiedzialnych za pakowanie i ekspresję DNA oraz sposób, w jaki białka te kontrolują zmiany w programach transkrypcyjnych występujące podczas choroby.6 W krajach rozwiniętych choroby serca są główną przyczyną śmiertelności zarówno u mężczyzn, jak i u kobiet.7 Zrozumienie, w jaki sposób białka jądrowe współpracują w celu regulowania progresji tych schorzeń, jest kluczowe dla rozwoju obecnych opcji terapeutycznych.

Spektrometria mas jest idealnym narzędziem do odpowiedzi na te pytania, ponieważ umożliwia bezstronną adnotację proteomu jądrowego oraz kwantyfikację względną zmian w obfitości tych białek w przebiegu choroby. Choć przeprowadzono kilka badań proteomicznych kompleksów białek jądrowych ssaków,8-13 do niedawna14 istniało tylko jedno badanie analizujące proteom jądra komórek serca, które obejmowało ono całe jądro, zamiast badać proteom na poziomie podprzedziałów jądrowych.15 W dużej mierze ten brak prac wynika z trudności w izolacji jąder komórek serca. Jądra te znajdują się w obrębie sztywnego i gęstego aparatu aktynowo-miozynowego, z którym są połączone za pomocą licznych wypustek siateczki śródplazmatycznej, do tego stopnia, że skurcz miocytów zmienia ich ogólny kształt.16 Dodatkowo kardiomiocyty składają się w 40% objętościowo z mitochondriów,17 co wymaga wzbogacenia frakcji jąder w celu oddzielenia ich od pozostałych organelli. W niniejszej pracy opisujemy protokół wzbogacania jąder komórek serca i ich dalszego frakcjonowania na biologicznie istotne przedziały. Ponadto szczegółowo omawiamy metody bezetykietowej ilościowej analizy spektrometrycznej tych frakcji – techniki te nadają się do eksperymentów in vivo w różnych modelach zwierzęcych i układach organów, w których znakowanie metaboliczne nie jest możliwe.

Protokół

Przebieg eksperymentu składa się z siedmiu głównych etapów (Rysunek 1). Podczas wszelkich prac z próbkami, które będą analizowane za pomocą spektrometru mas, osoba przeprowadzająca badanie powinna nosić fartuch laboratoryjny, rękawiczki oraz siatkę na włosy, dbając o uniknięcie zanieczyszczeń kurzem i złuszczonym naskórkiem (keratyną).

1. Homogenizacja serca i izolacja jąder

Serca myszy poddaje się homogenizacji, a następnie izoluje się osad nienaruszonych jąder komórkowych (Rycina 2).

  1. Uśmiercić dorosłą mysz, wyciąć serce, wypłukać w lodowatym PBS i homogenizować na l....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Rysunek 4 podkreśla użyteczność tej formy kwantyfikacji względnej. Na lewym panelu przedstawiono poszczególne monizotopowe piki peptydowe (nałożone z różnych myszy), które zostały przypisane do białka HMGB1 (zidentyfikowanego poprzez przeszukiwanie bazy danych). Każdy pik, będący w istocie chromatogramem jonów wyekstrahowanych dla danego peptydu, pochodzi z innej myszy. Grupy reprezentują trzy różne stany fizjologiczne: podstawowy, przerost serca oraz niewydolność serca, przy trzech powtórzeniach biologi.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Wcześniej opisano dwie główne metody izolacji jąder komórkowych:27 pierwszą jest technika Behrensa, polegająca na homogenizacji liofilizowanej tkanki w rozpuszczalniku nie wodnym, a drugą, której modyfikację stosujemy w niniejszej pracy, jest homogenizacja tkanki w wodnym roztworze sacharozy/soli, a następnie centryfugacja różnicowa lub w gradiencie gęstości.

Subfrakcjonowanie jąder komórkowych poprzez ekstrakcję kwasową z próbek tkanek jest istotnym narzędziem badania chromatyny, s.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie zadeklarowano żadnych konfliktów interesów.

Podziękowania

Laboratorium Vondriski jest wspierane przez granty z National Heart, Lung and Blood Institute NIH oraz Laubisch Endowment na UCLA. EM jest laureatem stypendium Jennifer S. Buchwald Graduate Fellowship in Physiology na UCLA; HC jest laureatem stypendium American Heart Association Pre-doctoral Fellowship; MP jest laureatem stypendium NIH Ruth Kirschstein Post-doctoral Fellowship; a SF jest laureatem nagrody NIH K99 Award.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Pożywka Dulbecco Modified Eagle MediumInvitrogen11965
Pelet proteazyRoche04 693 159 001
Sito 100 μmBD Falcon352360
Ultramikrotom UltracutReichert
transmisyjny mikroskop elektronowy 100CX
JEOL USA, Inc.
OrioleBioRad161-0496
Przeciwciało przeciwko histonie H2ASanta Cruzsc-8648
Przeciwciało przeciwko nukleoporynie p62BD Biosciences610498
Przeciwciało przeciwko transporterowi nukleotydów adeninowychSanta Cruzsc-9299
Przeciwciało przeciwko BiPSanta Cruzsc-1050
Przeciwciało przeciwko tubulinieSigmaT1568
Przeciwciało przeciwko histonie H3Abcamab1791
Przeciwciało przeciwko fibrylarynieCell SignalingC12C3
Przeciwciało przeciwko SNRP70Abcamab51266
Przeciwciało przeciwko E2F-1Thermo FisherMS-879
Przeciwciało przeciwko białku retinoblastomaBD Biosciences554136
Przeciwciało przeciwko czynnikowi indukowanemu hipoksją 1 (HIF-1)Novus BiologicalsNB100-469
Test białka BCAThermo Scientific23227
Kolumna do chromatografii w fazie odwróconejNew ObjectivePFC7515-B14-10
Przeglądarka BioWorksThermo Scientific

Bibliografia

  1. Li, F., Wang, X., Capasso, J. M., Gerdes, A. M. Rapid transition of cardiac myocytes from hyperplasia to hypertrophy during postnatal development. J Mol Cell Cardiol. 28, 1737-1746 (1996).
  2. Rumyantsev, P. P.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Analiza proteomu chromatynywzbogacanie frakcji jądrowej sercasubfrakcjonowanie jądrowebezetykietowa spektrometria masekstrakcja histonówproteomika ilościowaporównanie stanów chorobowychprofilowanie proteomu jądrowegobiałka wiążące chromatynęjądra komórek serca myszy