Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Zewnątrzkomórkowa identyfikacja neuronów ruchowych w puli motorycznej mięśni u Aplysia californica

11.6K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/50189

⸱

25 marca 2013

 ,  , 

W tym artykule

Podsumowanie

U zwierząt z dużymi zidentyfikowanymi neuronami (np.), analiza puli motorycznej odbywa się za pomocą technik wewnątrzkomórkowych1,2,3,4. Niedawno opracowaliśmy technikę zewnątrzkomórkowej stymulacji i zapisu pojedynczych neuronów w Aplysia californica5. Opisujemy teraz protokół wykorzystania tej techniki do unikalnej identyfikacji i scharakteryzowania neuronów ruchowych w puli motorycznej.

Streszczenie

U zwierząt z dużymi zidentyfikowanymi neuronami (np.), analiza puli motorycznej odbywa się za pomocą technik wewnątrzkomórkowych1,2,3,4. Niedawno opracowaliśmy technikę zewnątrzkomórkowej stymulacji i zapisu pojedynczych neuronów w Aplysia californica5. Opisujemy teraz protokół wykorzystania tej techniki do unikalnej identyfikacji i scharakteryzowania neuronów ruchowych w puli motorycznej.

Ta technika zewnątrzkomórkowa ma zalety. Po pierwsze, elektrody zewnątrzkomórkowe mogą stymulować i rejestrować neurony przez osłonkę5, więc nie trzeba jej usuwać. W ten sposób neurony będą zdrowsze w eksperymentach zewnątrzkomórkowych niż w wewnątrzkomórkowych. Po drugie, jeśli zwoje są obracane przez odpowiednie przypięcie osłonki, elektrody zewnątrzkomórkowe mogą uzyskać dostęp do neuronów po obu stronach zwoju, co ułatwia i usprawnia identyfikację wielu neuronów w tym samym preparacie. Po trzecie, elektrody zewnątrzkomórkowe nie muszą przenikać do komórek, a zatem mogą być łatwo przenoszone tam iz powrotem między neuronami, powodując mniejsze ich uszkodzenia. Jest to szczególnie przydatne, gdy próbuje się nagrać wiele neuronów podczas powtarzających się wzorców motorycznych, które mogą utrzymywać się tylko przez kilka minut. Po czwarte, elektrody zewnątrzkomórkowe są bardziej elastyczne niż wewnątrzkomórkowe podczas ruchów mięśni. Elektrody wewnątrzkomórkowe mogą wyciągać i uszkadzać neurony podczas skurczów mięśni. W przeciwieństwie do tego, ponieważ elektrody zewnątrzkomórkowe są delikatnie dociskane do osłonki nad neuronami, zwykle pozostają nad tym samym neuronem podczas skurczów mięśni, a zatem mogą być stosowane w bardziej nienaruszonych preparatach.

Aby jednoznacznie zidentyfikować neurony ruchowe dla puli motorycznej (w szczególności mięśnia I1/I3 w Aplysia) za pomocą elektrod zewnątrzkomórkowych, można użyć cech, które nie wymagają pomiarów wewnątrzkomórkowych jako kryteriów: wielkości i lokalizacji somy, projekcji aksonalnej i unerwienia mięśni4,6,7. Dla konkretnej puli motorycznej użytej do zilustrowania techniki, zarejestrowaliśmy nerwy policzkowe 2 i 3, aby zmierzyć projekcje aksonalne i zmierzyliśmy siły skurczu mięśnia I1 / I3, aby określić wzór unerwienia mięśni dla poszczególnych neuronów ruchowych.

Pokazujemy cały proces najpierw identyfikacji neuronów ruchowych za pomocą unerwienia mięśniowego, a następnie charakteryzowania ich czasu podczas wzorców motorycznych, tworząc uproszczoną metodę diagnostyczną do szybkiej identyfikacji. Uproszczona i szybsza metoda diagnostyczna jest lepsza w przypadku bardziej nienaruszonych preparatów, np. w zawieszonym preparacie masy policzkowej8 lub in vivo9. Proces ten może być również stosowany w innych basenach motorowych10,11,12 w Aplysia lub w innych systemach zwierzęcych2,3,13,14.

Protokół

1. Przygotowanie potrawy do nagrywania

  1. Podczas eksperymentów z przetwornikiem siły, zwoje policzkowe, zwój mózgowy i masa policzkowa są umieszczane w okrągłej naczyniu z Pyrexu, która jest wyspecjalizowana do badań siły.
  2. Aby wywołać wzorce podobne do spożycia w eksperymentach, musimy zastosować niehydrolizowalny agonista cholinergiczny karbachol do zwoju mózgowego15. Aby uniknąć bezpośredniego kontaktu karbacholu ze zwojami policzkowymi i masą policzkową, potrzebne są oddzielne komory do odizolowania zwoju mózgowego od zwojów policzkowych i masy policzkowej (ryc. 1).
  3. Ponieważ masa policzkowa jest znacznie gru....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Rysunki 4 i 5 przedstawiają typowe wyniki wykorzystywane do identyfikacji dwóch neuronów ruchowych I1/I3. Rysunek 4 pokazuje rejestracje z somy dużego neuronu ruchowego B3 podczas wzorców przypominających egestję i ingestję (Rysunki 4C, 4D). Jedno-do-jednej odpowiadające impulsy w kanale somy i w ipsilateralnym kanale BN2 (Rysunek 4E) wykazują, że specyficzność rejestracji z somy B3 została zachowana podczas wzorców. B3 wyładowuje w środ.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

U zwierząt z dużymi zidentyfikowanymi neuronami, takich jak (na przykład Lymnaea, Helix i Aplysia), analiza puli motorycznej jest zwykle wykonywana przy użyciu zapisu wewnątrzkomórkowego1,2,3,4. W tym protokole opisujemy proces jednoznacznej identyfikacji neuronów ruchowych dla puli motorycznej przy użyciu techniki zewnątrzkomórkowej. Jako ilustrację tego procesu posłużyliśmy się pomiarami siły. Można również użyć EMG do pomiaru unerwienia mięśni. Krótko mówiąc, aby to zrobić, protok.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie mamy nic do ujawnienia.

Podziękowania

To badanie było wspierane przez NS047073 grantów NIH i granty NSF DMS1010434.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Chlorek soduFisher ScientificS671Biologiczny, certyfikowany
chlorek potasuFisher ScientificP217Certyfikowany ACS
Sześciowodny chlorek magnezuAcros Organics1975399%
siedmiowodny siarczan magnezuFisher ScientificM63Certyfikowany ACS
Dwuwodnychlorek wapniaFisher ScientifcC79Certyfikowany ACS
Glukoza (dekstroza)Sigma-AldrichG7528
Bufor BioXtra MOPSAcros Organics1726399%
CarbacholAcros Organics1082499%
Wodorotlenek soduFisher ScientificSS255Certyfikowany
kwas solnyFisher ScientificSA49Certyfikowany
jednolufowy ściągacz dojednolufowych A-M Systems6150
Flaming-Brown model P-80/PCSutter InstrumentsZastosowany filament: FT345B
Drut ze stali nierdzewnej pokryty emaliąCalifornia Fine Wire0,001D, powłoka h
Klej do silikonu domowego II GE
Duro Quick-Gel superglue Henkel Corp.
Wzmacniacz A-M Systems model 1700 SystemyUstawienia filtra: 10-500 Hz dla nerwu/mięśnia I2; 300-500 Hz dla wszystkich pozostałych nerwów
Wielokanałowy stymulator PulsemasterWorld Precision InstrumentsA300
World Precision InstrumentsA360
AxoGraph XOprogramowanie naukoweAxoGraph dla nagrania
Złote piny złączaBulginSA3148/1
Złote gniazda złączyBulginSA3149/1
Sylgard 184 Elastomer silikonowyDow Corning
100 x 15 mm Naczynie krystalizującePyrex
Smar wysokopróżniowyDow Corning
Końcówki do pipetFisher Scientific21-375D
Szpilki MinutienNarzędzia do nauki26002-10
ModelinaSargent Art22-4400
Pompa powietrza WhisperTetra77849
Rurki akwarioweEheim778312/16 mm
Elite AirstoneHagenA962
Vannas Nożyczki sprężynoweNarzędzia do nauki15000-08
Dumont #5 Kleszcze do drobnychnarzędzi naukowych11254-20
ChusteczkiKimberly-Clark34155
mikropipet AM Izolator bodźców

Bibliografia

  1. McCrohan, C. R., Benjamin, P. R. Synaptic relationships of the cerebral giant cells with motoneurones in the feeding system of Lymnaea stagnalis. J. Exp. Biol. 85, 169-186 (1980).
  2. Benjamin, P. R., Rose, R. M. Central gen....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Stymulacja zewnątrzkomórkowaidentyfikacja neuronów ruchowychzwoje szczękoweelektrody ssąceelektrody szklaneunerwienie mięśniprojekcja aksonalnatransdukcja siłyrejestracja elektrofizjologiczna