Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

długość telomerów i aktywność telomerazy; Yin i Yang starzenia się komórek

46.3K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/50246

⸱

22 maja 2013

 ,  , 
1Department of Medicine, Albert Einstein College of Medicine , 2Diabetes Research and Training Center, Albert Einstein College of Medicine , 3Department of Genetics, Albert Einstein College of Medicine

W tym artykule

Podsumowanie

Opisana jest dokładna, krótka, wyrafinowana i tania metoda, która ocenia długość telomerów w wielu tkankach i gatunkach za pomocą qRT-PCR. Ponadto opiszemy prosty test do oceny aktywności telomerazy jako uzupełniający test szkieletowy dla długości telomerów.

Streszczenie

Telomery to powtarzające się sekwencje DNA na końcach chromosomów, które są zróżnicowane pod względem długości, a u ludzi mogą osiągnąć długość 15 000 par zasad. Telomer służy jako bioprotekcyjny mechanizm ścierania chromosomów przy każdym podziale komórki. Po pewnym czasie telomery stają się zbyt krótkie, aby umożliwić replikację, proces, który może prowadzić do niestabilności chromosomów lub śmierci komórki. Długość telomerów jest regulowana przez dwa przeciwstawne mechanizmy: ścieranie i wydłużanie. Wyczerpanie następuje, gdy każda komórka się dzieli. Natomiast wydłużenie jest częściowo modulowane przez enzym telomerazę, który dodaje powtarzające się sekwencje na końcach chromosomów. W ten sposób telomeraza może odwrócić mechanizm starzenia się i odmłodzić żywotność komórek. Są to kluczowe elementy w utrzymaniu życia komórkowego i są wykorzystywane do oceny starzenia się komórek. W tym manuskrypcie opiszemy dokładną, krótką, wyrafinowaną i tanią metodę oceny długości telomerów w wielu tkankach i gatunkach. Metoda ta wykorzystuje dwa kluczowe elementy: tandemowe powtórzenia sekwencji telomerów i czułość qRT-PCR do wykrywania różnicowej liczby kopii badanych próbek. Ponadto opiszemy prosty test do oceny aktywności telomerazy jako uzupełniający test szkieletowy dla długości telomerów.

Wprowadzenie

Telomery to powtarzające się sekwencje heksameru DNA (TTAGGG) znajdujące się na końcach chromosomów. W każdej replikacji komórki te końce chromosomów są skracane. Jeśli staną się zbyt krótkie, chromosomy mogą ulegać fuzjom końców telomerów, nieprawidłowej rekombinacji i degradacji. Tak więc utrzymanie wystarczającej długości telomerów odgrywa ważną rolę w stabilności chromosomów i ochronie komórek 38. Utrzymanie długości telomerów ma również kluczowe znaczenie dla genów znajdujących się w pobliżu końców chromosomów, ponieważ replikacja DNA nie może trwać do samego końca chromosomów 1-2. W związku z tym zapobieganie skracaniu telomerów może poprawić stabilność komórek.

Liczne badania wykazały, że długość telomerów jest skorelowana z długowiecznością organizmu i stanem chorobowym, np. w przypadku raka 3-4, cukrzycy 5 i choroby układu krążenia 6,7. Ponadto skrócone telomery są związane z nadmiernym stresem lub niezdrowym stylem życia 8, być może poprzez promowanie przedwczesnego starzenia się i śmierci komórek 9. Z drugiej strony, niektóre badania wykazały, że nie ma znaczącej różnicy między długością i długowiecznością telomerów a chorobą związaną z wiekiem 39, 40, 41.

Jednym z wrodzonych mechanizmów ochrony komórki przed skracaniem telomerów jest aktywacja jej własnego enzymu odwrotnej transkryptazy telomerazy (TERT). Enzym ten i jego podjednostka, telomeraza RNA (TERC), niekodujący RNA, wykorzystują telomer jako matrycę do dodawania powtórzeń telomerów do końców chromosomów 10. Chociaż aktywność telomerazy jest nieobecna w kilku typach komórek, a inne mechanizmy są zaangażowane w utrzymanie długości telomerów, zwiększona aktywność telomerazy jest skorelowana ze zwiększoną długością telomerów. Aktywacja telomerazy została uznana za jeden z mechanizmów, dzięki którym komórki reagują na uszkodzenia i stres oraz unikają przedwczesnego starzenia się i śmierci. Na przykład dłuższe telomery wykazano w populacji Żydów aszkenazyjskich o wyjątkowej długości życia 11, wykazano, że mutacje w TERC lub TERT przyczyniają się do śmiertelnej choroby 12, a epigenetyczna regulacja telomerazy ma wpływ na choroby związane z wiekiem 13. Od czasu jego odkrycia, długość telomerów została zaproponowana jako biomarker stanu zdrowia w różnych modelach zwierzęcych, a także u ludzi, ale te wczesne badania były trudne do szerokiego powtórzenia, ponieważ zastosowana metoda była żmudna, długa i kosztowna. W 2002 r., a następnie w 2009 r., Cawthon zaproponował i zademonstrował nowy, dokładny, szybki i prosty protokół oparty na PCR do oceny długości telomerów i dalszego badania jego roli w różnych aspektach biologii komórki, starzenia się i chorób 19.

Wybór właściwej metody pomiaru telomerów do badania jest niezbędny. Obecnie istnieją różne metody pomiaru długości telomerów, z których każda ma swoje zalety i wady. Tradycyjnie, długość telomerów mierzy się za pomocą analizy Southern Blot końcowych fragmentów restrykcyjnych (TRF), która obejmuje: a. trawienie DNA za pomocą enzymów restrykcyjnych, które nie tną powtórzeń telomerowych w celu uzyskania TRF, b. Southern Blot tych TRF odbywa się poprzez określenie średniej długości TRF za pomocą sondy telomerowej 14, 37. Chociaż metoda ta jest bardzo dokładna z małym współczynnikiem zmienności, jest miarą bezpośrednią i może być korzystna do pomiaru rozkładu długości, analiza TRF jest kosztowna, pracochłonna i wymaga co najmniej 3 μg DNA. Metoda ta jest również niewrażliwa na krótkie telomery, a określenie długości może być zakłócone przez subtelomerowe DNA, które może być wykryte przez sondę dzięki sekwencjom podobnym do (TTAGGG)n, które zawierają 15, 42.

Inną bardzo dokładną metodą pomiaru długości telomerów jest Analiza Długości Wydłużenia Pojedynczego Telomeru (STELA), metoda oparta na PCR pojedynczej cząsteczki, która wymaga tylko niewielkiej ilości DNA. W tej metodzie startery są wytwarzane w celu rozpoznania nawisu bogatego w G na końcu chromosomów i związania się z unikalną sekwencją subtelomerową na jednym chromosomie, która amplifikuje telomer określonego chromosomu. Powstałe w ten sposób wzmocnienie jest następnie wizualizowane przez Southern Blot. Ta metoda ma tę zaletę, że jest bardzo dokładna i jest w stanie wykryć krótkie telomery odstające 16. Niestety, ponieważ nie wszystkie chromosomy mają końcówki bogate w G i użyteczną sekwencję subtelomerową, długość telomerów można zmierzyć tylko na określonych chromosomach, a pomiary te mogą nie reprezentować długości wszystkich telomerów w komórce 15.

Inną metodą, która była praktykowana, jest użycie sond peptydowych kwasów nukleinowych (PNA) do wykrywania długości telomerów. Ilościowa hybrydyzacja kwiatostanu in situ (Q-FISH) pozwala nam na wizualizację telomerów podczas metafazy, gdzie barwienie telomerów sondą PNA proporcjonalnie do ich wielkości pozwala na porównanie telomerów między określonymi chromosomami. Chociaż metoda ta może być również stosowana w przypadku komórek w interfazie, tutaj nie można wykryć długości telomerów dla odrębnych chromosomów, co wprowadza ograniczenie przy pomiarze długości telomerów w starzejących się lub rzadko dzielących się komórkach 17. Zamiast tego Flow FISH wykorzystuje cytometrię przepływową i jest obecnie najbardziej czułą metodą pomiaru długości telomerów komórek krwi w warunkach klinicznych, ale wymaga wysoko wykwalifikowanych techników 18.

Obecnie, standardowa metoda pomiaru średniej długości telomerów w naszym laboratorium wykorzystuje precyzję, czułość i łatwość ilościowego PCR w czasie rzeczywistym. Metoda ta umożliwiła pomiar długości telomerów dzięki opracowaniu nowych starterów, które pozwalają uniknąć syntezy produktów pochodnych dimerów starterów, które w przeciwnym razie zostałyby wytworzone w standardowym teście ze względu na powtarzalność telomerów. W tym teście pomiar długości telomerów jest reprezentowany przez stosunek T / S, liczbę powtórzeń telomerów do liczby genów z pojedynczą kopią. Ponieważ istnieje bezpośrednia proporcjonalna zależność między długością telomerów a liczbą znakowanych starterów telomerów wiążących się z DNA podczas początkowych etapów PCR, stosunek T / S jest wprost proporcjonalny do długości telomerów. Stosunek T / S mierzy się, porównując różnicę w Ct, liczbie cyklu ułamkowego, przy której skumulowany kwiatostan próbki przekracza próg, który jest kilka odchyleń standardowych powyżej pierwotnego kwitnienia, między próbkami ze starterami telomerów a starterami SCG 19. Metoda ta była krytykowana za pośredni pomiar długości telomerów, co może prowadzić do niedokładnych pomiarów, na przykład w przypadku duplikacji chromosomów lub wariacji liczby kopii 15. Ponadto porównanie między badaniami jest często trudne, ale standardowe oligomery zostały opracowane do pomiaru bezwzględnej długości telomerów 20. Metoda ta została dodatkowo ulepszona przez firmę Cawthon, przy użyciu monochromatycznego multipleksowego testu qPCR. W tym teście PCR przeprowadzano w niższych temperaturach przez pierwsze kilka cykli, aby uniknąć wiązania starter-dimer, a telomer i gen kontrolny analizowano w tej samej probówce PCR, aby jeszcze bardziej uniknąć błędu. Uzyskane pomiary długości telomerów silnie korelowały z długością telomerów mierzoną za pomocą analizy Southern blot TRF i miały wyższą dokładność 15, 19, 36. W tej chwili qRT-PCR jest jedyną dostępną wygodną metodą do badania dużych rozmiarów próbek i wymaga tylko niewielkiej ilości DNA do przeprowadzenia. Kluczową częścią tej metody są kompleksowe środki kontroli jakości, dzięki czemu, gdy zostanie wykonana prawidłowo, metoda ta może dostarczyć cennych informacji porównawczych na temat długości telomerów. Ponadto metoda ta została zaadaptowana do stosowania poza leukocytami do pomiaru długości telomerów w różnych tkankach 42.

Dodatkowo, aby lepiej zrozumieć biologię stojącą za utrzymaniem długości telomerów i interakcjami między dwoma przeciwstawnymi efektami (tj. skracaniem telomerów podczas replikacji i wydłużaniem przez enzym telomerazy), dołączyliśmy do metody długości telomerów dodatkowy test, który mierzy aktywność telomerazy.

W tym celu użyliśmy protokołu wielokrotnej amplifikacji telomerów, testu in vitro. Krótko mówiąc, zlizowane, zakonserwowane, enzymatycznie aktywne komórki zsyntetyzowały powtórzenia telomerowe na substracie oligonukleotydowym za pomocą telomerazy, a produkty amplifikowano za pomocą PCR w obecności SYBR Green. Wyniki zostały następnie przeanalizowane, porównując wartości progowe Ct próbki i kontroli. Ponieważ telomeraza jest enzymem wrażliwym na ciepło, przy każdej próbce 21 przeprowadza się dodatkową kontrolę poddaną obróbce cieplnej 21.

Podczas gdy pomiar długości telomerów może dostarczyć cennych informacji na temat możliwej roli długości telomerów w patofizjologii starzenia się i chorób, długość telomerów nie jest właściwością statyczną i potrzeba więcej informacji, aby zrozumieć funkcję telomerów. Badania aktywności telomerazy mogą dostarczyć informacji o mechanizmach regulacji długości telomerów. Na przykład kontrolowana aktywacja telomerazy może utrzymać długość telomerów i proliferację komórek, ale niekontrolowana aktywacja telomerazy może spowodować raka. Te dwie niedrogie i proste metody w połączeniu dostarczyły nam nie tylko silniejszych dowodów na związek między długością telomerów a stabilnością komórek, ale także dalszego wglądu w możliwe mechanizmy skracania i odzyskiwania telomerów. Dzięki tym metodom mamy nadzieję dokładniej wyjaśnić reakcję komórki na starzenie się i różne stany proliferacji komórek, a ostatecznym celem jest lepsze zrozumienie głównych mechanizmów biologii komórki.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Protokół długości telomerów19

1. Izolacja DNA

Większość metod izolacji DNA może być użyta. Nasze laboratorium preferuje zestaw Qiagen DNeasy (#69506) do źródeł krwi. W zależności od źródła DNA, takiego jak policzek lub inne źródła, można zastosować inną metodę izolacji.

2. Elementarze

Wszystkie startery są rozcieńczane do stężenia 100pmole/μl w wodzie klasy PCR i przechowywane w temperaturze -20 °C do momentu, gdy będą potrzebne. Zapasy robocze podkładów są świeże i przechowywane w temperaturze 20 °C przez krótki okres czasu (kilka miesięcy). Standardowe startery zastosowano dla telomerów i β-Globiny, SCG, jak opisano w O'Callaghan i wsp. 20.

Sekwencje podkładów:
Telo 1: 5'-CGGTTTGTTTGGGTGTGTGTGTGTT-TGGGTTTGGGTT-3'

Telo 2: 5'-GGCTTGCCTTACCCTTACCCTTACCCTCTCTCTCTCTCT-ACCCT-3'
SCG 1: 5'-GCTTCTGACACAACTGTGTTCACTAGC-3'
SCG 2: 5'-CACCAACTTCATCCACGTTC-ACC-3'

Uwaga: Startery są rozcieńczane do stężenia roboczego 10pmol/μl, przed dodaniem do mieszaniny reakcyjnej.

3. Seryjne rozcieńczanie genomowego DNA

Seryjne rozcieńczenia genomowego DNA dla Telo i Single Copy Gene (SCG) są tworzone w celu wygenerowania standardowej krzywej wartości Ct dla testu. Wykorzystany genomowy DNA wyekstrahowano z limfocytów z próbek krwi. Rozcieńczenia te tworzy się przez rozcieńczenie DNA metodą PCR klasy H20 do każdego stężenia o współczynnik 1,68, aby uzyskać dwa zestawy seryjnych rozcieńczeń przy użyciu tego samego genomowego DNA. Stężenia wyjściowe zostały zoptymalizowane w oparciu o metody prób i błędów i mogą wymagać dostosowania w przypadku korzystania z różnych odczynników, instrumentów, DNA innych gatunków, typów komórek i użytego SCG.

Uwaga: Seryjne rozcieńczanie za pomocą genomowego DNA odbywa się poprzez delikatne mieszanie i odczekanie co najmniej 15 minut do jednej godziny przed pobraniem DNA do następnego rozcieńczenia. Każde rozcieńczenie wymaga czasu na dysocjację genomowego DNA. W przypadku długotrwałego przechowywania, podwielokrotne rozcieńczenia seryjnie na paski PCR do przechowywania w temperaturze -80 °C. Każdy pasek PCR jest rozmrażany i używany raz, aby uniknąć cykli zamrażania i rozmrażania, które mogą uszkodzić DNA.

4. Konfiguracja reakcji dla RT-PCR

Używany instrument: Cykler świetlny Roche480

Odczynnik: Roche Light cycler sybr-green

Rozcieńczyć próbki testowe DNA do końcowego stężenia 10 ng/μl. Badamy stężenie za pomocą Nanodrop lub Qubit. Następnie rozcieńczamy DNA od 10 ng / μl do końcowych 5 ng / μl. Nie badamy ponownie stężenia.

Składniki reakcji:

TELO 1x SCG 1x H20 6 μl Klasa H20 6 μl Telo 1 0,2 μl SCG 1 (Sekcja Schorzenia 1) 0,6 μl Telo 2 1,8 μl SCG 2 (Sekcja Szkolenia 2) 1,4 μl Mieszanka Rxn 10 μl Mieszanka Rxn 10 μl Rozcieńczenie DNA lub rozcieńczenie seryjne 2 μl Rozcieńczenie DNA lub rozcieńczenie seryjne 2 μl

Uwaga: Master Mix jest wytwarzany bez DNA i z nadmiarem od 5% do 10%.

Zarówno Telo, jak i SCG są uruchamiane razem na tej samej płycie za pomocą następującego programu. W celu przeprowadzenia badania precyzji należy przeprowadzić co najmniej trzy powtórzenia każdej próbki i kontroli. Różnice w stosowanych podkładach mogą mieć wpływ na wyniki. Nasz protokół został zoptymalizowany do działania w następujący sposób na Roche480 Light Cycler i naszych podkładach.

Początkowa denaturacja
10 min denaturacja 95 °C
Jazda na rowerze
95 °C 10 s Hold
60 °C 5 s Hold
72 °C 11 sek. wstrzymanie i pojedyncza akwizycja
W razie potrzeby powtórz od 45 do 55 razy

2. Protokół ilościowego wykrywania telomerazy (QTD) (oparty na zestawie QTD firmy Allied Biotech, Inc. Kat. Nie. MT3012)

Przygotowanie ekstraktu

  1. Komórki lub tkanka peletowa.
  2. Umyj raz 1x PBS.
  3. Ponownie zasyp i usuń 1x PBS.*
  4. Zawiesić osad komórkowy w 200 μl 1 x bufor do lizy na każde 105-10 6 komórek lub 40-100 mg tkanki.
  5. Inkubować na lodzie przez 30 minut.
  6. Odwirowywać próbkę w temperaturze 12 000 x g przez 30 minut w temperaturze 4 °C.
  7. Przenieść 160 μl supernatantu do świeżej probówki i oznaczyć stężenie białka.
  8. Pozostałą ilość ekstraktu podsycić i szybko zamrozić na suchym lodzie/etanolu, przechowywać w temperaturze -80 °C.

*W tym stanie, telomeraza w zamrożonych komórkach lub tkankach jest stabilna przez co najmniej rok. Po rozmrożeniu do użycia należy natychmiast ponownie zawiesić komórki w 1 x bufor do lizy.

2.1. Kontrole testowe

Kontrola inaktywacji termicznej: Dla każdej próbki, poddaj obróbce cieplnej dodatkowy ekstrakt kontrolny poprzez inkubację w temperaturze 85 °C przez 10 minut przed testem aktywności telomerazy.

Standardowa krzywa dla szablonu kontrolnego TSR: Wykonaj ilościowy PCR w czasie rzeczywistym przy użyciu rozcieńczeń TSR, oligonukleotydu o sekwencji podobnej do starterów telomerów dołączonych do zestawu, aby wygenerować krzywą standardową.

  1. Przygotować seryjne rozcieńczenia 1:5 podstawowego stężenia TSR (0,5 amol/μl) z buforem do lizy
  2. Przeprowadzić test wzorcowy wykrywania telomerazy, używając 1 μl każdego rozcieńczenia TSR, łącznie ze stężeniem podstawowym. Rozcieńczenia te można przechowywać w temperaturze 4 °C przez co najmniej 2 tygodnie.

2.2. Test aktywności telomerazy przy użyciu QTD Real-Time PCR

  1. Do każdej próbki należy dodać następujące składniki do probówki do PCR lub cienkościennej płytki do PCR (całkowita objętość 25,0 μl):
    • 12,5 μl 2 x premiks QTD
    • 1,0 μl ekstraktu komórkowego lub tkankowego
    • 11,5 μl wody kwalifikowanej do PCR
  2. Dokładnie wymieszaj
  3. Zaprogramuj systemy wykrywania PCR w czasie rzeczywistym zgodnie z poniższym programem:
    - 25 °C przez 20 min (reakcja telomerazy)
    - 95 °C przez 10 min (etap początkowej aktywacji PCR)
    35-40 cykli:
    - 95 °C przez 30 sekund (denaturacja)
    - 60 °C przez 30 sekund (wyżarzanie)
    - 72 °C przez 30 sekund (przedłużenie)
  4. Umieść probówki PCR w termocyklerze i uruchom program cykliczny.
  5. Zbierz cykl progowy lub wartośćCT po zakończeniu cykli. Cykl progowy to cykl, w którym po raz pierwszy wykrywa się statystycznie istotny wzrost ΔRn.

2.3. Analiza danych

  1. Wygeneruj krzywą wzorcową na podstawie odczytówCT i porównaj aktywność telomerazy.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Przykład analizy długości telomerów metodą qRT-PCR przedstawiono na Rysunku 1. Na panelu w lewym górnym rogu próbki oznaczone kolorem czerwonym i zielonym reprezentują rozmieszczenie badanych osób na płytce 96-dołkowej. Na panelu w prawym górnym rogu przedstawiono krzywą amplifikacji. Każdy badany jest analizowany za pomocą dwóch testów (telomeru i genu pojedynczej kopii), które są wykonywane w trzech powtórzeniach. Ze względu na różną liczbę kopii DNA uzyskanych w dwóch testach u wybranych osób, liczba ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Długość telomerów stanowi unikalny marker komórkowy do badania zestresowanej i starzejącej się komórki oraz oferuje wgląd w mechanizmy starzenia. Ponieważ po raz pierwszy zasugerowano jego rolę w starzeniu się, przeprowadzono wiele badań dotyczących długości telomerów z wiekiem, długowiecznością, chorobami związanymi z wiekiem, nowotworami i stresem. Przez dziesięciolecia złotym standardem pomiarów długości telomerów była analiza końcowych fragmentów restrykcyjnych przy użyciu hybrydyzacji południowej. Jednak ostatnio ro...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Ilościowe wykrywanie telomerazy Allied BiotechMT3012
Qiagen DNeasy KitQiagen69506
LightCycler 480 SYBR Green I Master, Gotowa do użycia mieszanka reakcyjna gorącego startu do PCR w czasie rzeczywistym na bazie SYBR Green I przy użyciu LightCycler 480 InstrumentRoche Diagnostics4707516

Bibliografia

  1. Blackburn, E. H. Structure and Function of Telomeres. Nature. 350 (6319), 569-573 (1991).
  2. Gilson, E., Ségal-Bendirdjian, E. The Telomere Story or the Triumph of an Open-Minded. Research. Biochimie. 92 (4), 321-326 (2010).
  3. Wu, X., Amos, C. I., Zhu, Y., Zhao, H., Grossman, B. H., Shay, J. W., Luo, S., Hong, W. K., Spitz, M. R. Telomere Dysfunction: a Potential Cancer Predisposition Factor. J. Natl. Cancer Institute. 95, 1211-1218 (2003).
  4. Blackburn, E. H. Walking the Walk from Genes through Telomere Maintenance to Cancer Risk. Cancer Prevention. 4, 473(2011).
  5. Monickaraj, F., Aravind, S., Gokulakrishnan, K., Sathishkumar, C., Prabu, P., Prabu, D., Mohan, V., Balasubramanyam, M. Accelerated Aging as Evidenced by Increased Telomere Shortening and Mitochondrial DNA Depletion in Patients with Type 2 Diabetes. Molecular and Cellular Biochemistry. 365 (1-2), 343-350 (2012).
  6. Bekaert, S., De Meyer, T., Rietzschel, E. R., De Buyzere, M. L., De Bacquer, D., Langlois, M., Van Oostveldt, P. Telomere Length and Cardiovascular Risk Factors in a Middle-Aged Population Free of Overt Cardiovascular Disease. Aging Cell. 6 (5), 639-647 (2007).
  7. Weischer, M., Bojesen, S. E., Cawthon, R. M., Freiberg, J. J., Tybjaerg-Hansen, A., Nordestgaard, B. G. Short Telomere Length, Myocardial Infarction, Ischemic Heart Disease, and Early Death. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 32 (3), 822-829 (2011).
  8. Sun, Q., Shi, L., Prescott, J., Chiuve, S. E., Hu, F. B., et al. Healthy Lifestyle and Leukocyte Telomere Length in U.S. Women. PLoS ONE. 7 (5), e38374(2012).
  9. Pont, A. R., Sadri, N., Hsiao, S. J., Smith, S., Schneider, R. J. mRNA Decay Factor AUF1 Maintains Normal Aging, Telomere Maintenance, and Suppression of Senescence by Activation of Telomerase Transcription. Molecular Cell. , In Press (2012).
  10. Cohen, S. B., Graham, M. E., Lovrecz, G. O., Bache, N., Robinson, P. J., Reddel, R. R. Protein Composition of Catalytically Active Human Telomerase from Immortal Cells. Science. 315 (5820), 1850-1853 (2007).
  11. Atzmon, G., Cho, M., Cawthon, R. M., Budagov, T., Katz, M., Yang, X., Suh, Y., et al. Colloquium Paper: Genetic variation in human telomerase is associated with telomere length in Ashkenazi centenarians. Proceedings of the National Academy of Sciences. 107, 1710-1717 (2010).
  12. Njajou, O. T., Blackburn, E. H., Pawlikowska, L., Mangino, M., Damcott, C. M., et al. A Common Variant in the Telomerase RNA Component Is Associated with Short Telomere Length. PLoS ONE. 5 (9), e13048(2010).
  13. Guan, W. P., Maeda, T., Makino, N. The Subtelomere of Short Telomeres is Hypermethylated in Alzheimer's Disease. Aging Disease. 3 (2), 164-170 (2012).
  14. Kimura, M., Stone, R. C., Hunt, S. C., Skurnick, J., Lu, X., Cao, X., Aviv, A., et al. Measurement of Telomere Length by the Southern Blot Analysis of Terminal Restriction Fragment Lengths. Nature Protocols. 5 (9), 1596-1607 (2010).
  15. Aubert, G., Hills, M., Lansdorp, P. M. Telomere length measurement-Caveats and a critical assessment of the available technologies and tools. Mutation Research/Fundamental and Molecular Mechanisms of Mutagenesis. 730 (1-2), 59-67 (2012).
  16. Baird, D. M., Rowson, J., Wynford-Thomas, D., Kipling, D. Extensive allelic variation and ultrashort telomeres in senescent human cells. Nature Genetics. 33 (2), 203-207 (2003).
  17. O'Sullivan, J. N., Finley, J. C., Risques, R. A., Shen, W. T., Gollahon, K. A., Rabinovitch, P. S. Quantitative Fluorescence in situ Hybridization (QFISH) of Telomere Lengths in Tissue and Cells. Current Protocols in Cytometry. Chapter 12, Unit 12.6(2005).
  18. Baerlocher, G. M., Mak, J., Tien, T., Lansdorp, P. M. Telomere Length Measurement by Florescence in situ hybridization and Flow Cytometry: Tips and Pitfalls. Cytometry. 47 (2), 89-99 (2002).
  19. Cawthon, R. M. Telomere Measurement by Quantitative PCR. Nucleic Acids Research. 30 (10), e47(2002).
  20. O'Callaghan, N. J., Fenech, M. A Quantitative PCR Method for Measuring Absolute Telomere Length. Biological Procedures Online. 13 (1), 3(2011).
  21. Piatyszek, M. A., Kim, N. W., Weinrich, S. L., Hiyama, K., Hiyama, E., Wright, W. E., Shay, J. W. Detection of Telomerase Activity in Human Cells and Tumors by a Telomeric Repeat amplification protocol (TRAP). Methods in Cell Science. 17 (1), 1-15 (1995).
  22. Hochstrasser, T., Marksteiner, J., Humpel, C. Telomere Length is Age-Dependent and Reduced in Monocytes of Alzheimer Patients. Experimental Gerontology. 47 (2), 160-163 (2012).
  23. Mirabello, L., Richards, eg, Duong, L. M., Yu, K., Wang, Z., Cawthon, R., Berndt, S. I., Burdett, L., Chowdhury, S., Teshome, K., Douglass, C., Savage, S. A. Telomere Length and Variation in Telomere Biology Genes in Individuals with Osteosarcoma. International Journal of Molecular Epidemiology and Genetics. 2 (1), (2011).
  24. Shen, M., Cawthon, R., Rothman, N., Weinstein, S. J., Virtamo, J., Hosgood, H. D. 3rd, Hu, W., Lim, U., Albanes, D., Lan, Q. A Prospective Study of Telomere Length Measured by Monochrome Multiplex Quantitative PCR and Risk of Lung Cancer. Lung Cancer. 73 (2), 133-137 (2011).
  25. Capezzone, M., Cantara, S., Marchisotta, S., Filetti, S., De Santi, M. M., Rossi, B., Pacini, F., et al. Short Telomeres, Telomerase Reverse Transcriptase Gene Amplification, and Increased Telomerase Activity in the Blood of Familial Papillary Thyroid Cancer Patients. Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 93 (10), 3950-3957 (2008).
  26. Insel, K. C., Merkle, C. J., Hsiao, C. P., Vidrine, A. N., Montgomery, D. W. Biomarkers for Cognitive Aging Part I: Telomere Length, Blood Pressure and Cognition Among Individuals with Hypertension. Biological Research for Nursing. 14 (2), 124-132 (2012).
  27. Aviv, A. Telomeres and Human Somatic Fitness. Journals of Gerontology Series A. 61 (8), 871-873 (2006).
  28. Yaffe, K., Lindquist, K., Kluse, M., Cawthon, R., Harris, T., Hsueh, W. C., Simonsick, E. M., Kuller, L., Li, R., Ayonayon, H. N., Rubin, S. M., Cummings, S. R. Telomere Length and Cognitive Function in Community-Dwelling Elders: Findings from the Health ABC Study. Neurobiological Aging. 32 (11), 1055-1060 (2011).
  29. O'Donovan, A., Pantell, M. S., Puterman, E., Dhabhar, F. S., Blackburn, E. H., et al. Cumulative Inflammatory Load Is Associated with Short Leukocyte Telomere Length in the Health, Aging and Body Composition Study. PLoS ONE. 6 (5), e19687(2011).
  30. Parks, C. G., DeRoo, L. A., Miller, D. B., McCanlies, E. C., Cawthon, R. M., Sandler, D. P. Employment and Work Schedule are related to Telomere Length in Women. Occupational Environmental Medicine. 68 (8), 582-589 (2011).
  31. Epel, E. S., Blackburn, E. H., Lin, J., Dhabhar, F. S., Adler, N. E., Morrow, J. D., Cawthon, R. Accelerated Telomere Shortening in Response to Life Stress. PNAS. 101 (49), 17312-17315 (2004).
  32. Uchino, B. N., Cawthon, R. M., Smith, T. W., Light, K. C., McKenzie, J., Carlisle, M., Gunn, H., Birmingham, W., Bowen, K. Social Relationships and Health: Is Feeling Positive, Negative, or Both (Ambivalent) about your Social Ties Related to Telomeres? Health Psychology. , In Press (2012).
  33. Xu, Q., Parks, C. G., DeRoo, L. A., Cawthon, R. M., Sandler, D. P., Chen, H. Multivitamin Use and Telomere Length in Women. The American Journal of Clinical Nutrition. 89 (6), 1857-1863 (2009).
  34. Wan, S., Hann, H. W., Myers, R. E., Fu, X., Hann, R. S., Kim, S. H., Tang, H., Xing, J., Yang, H. Telomere Length in Circulating Serum DNA as a Novel Non-Invasive Biomarker for Cirrhosis: a Nested Case-Control Analysis. Liver International. , In Press (2012).
  35. Immonen, I., Seitsonen, S., Saionmaa, O., Fyhrquist, F. Leucocyte Telomere Length in Age-Related Macular Degeneration. Acta Ophthalmologica. , In Press (2012).
  36. Lan, Q., Cawthon, R., Shen, W., Weinstein, S. J., Virtamo, J., Lim, U., Hosgood, H. S. 3rd, Albanes, D., Rothman, N. A prospective study of telomere length measured by monochrome multiplex quantitative PCR risk of non-Hodgkin lymphoma. Clinical Cancer Research. 15, 7429-7433 (2009).
  37. Balasbramanyam, M., Adaikalakoteswari, A., Sameermahmood, Z., Mohan, V. Biomarkers of oxidative stress: methods and measures of oxidative DNA damage (COMET assay) and telomere shortening. Methods Molecular Biology. 610 (3), 245-261 (2010).
  38. Maser, R. S., DePinho, R. A. Telomeres and the DNA damage response: why the fox is guarding the henhouse. DNA Repair (Amsterdam). 3 (8-9), 979-998 (2004).
  39. Njajou, O. T., Hsueh, W. -C., Blackburn, E. H., Newman, A. B., Wu, S. -H., Li, R., Simonsick, E. M., Harris, T. M., Cummings, S. R., Cawthon, R. M. Association between telomere length, specific causes of death, and years of healthy life in health, aging, and body composition, a population-based cohort study. The Journals of Gerontology Series A: Biological Sciences and Medical Sciences. 64A. 8 (8), 860-864 (2009).
  40. Mather, K. A., Jorm, A. F., Milburn, P. J., Tan, X., Easteal, S., Christensen, H. No Associations Between Telomere Length and Age-Sensitive Indicators of Physical Function in Mid and Later Life. The Journals of Gerontology Series A: Biological Sciences and Medical Sciences. 65A (8), 792-799 (2010).
  41. Riethman, H., Ambrosini, A., Castaneda, C., Finklestein, J., Hu, X. -L., Mununuri, U., Paul, S., Wei, J. Mapping and Initial Analysis of Human Subtelomeric Sequence Assemblies. Genome Research. 14, 18-28 (2003).
  42. Terry, D. F., Nolan, V. G., Anderson, S. L., Perls, T. T., Cawthon, R. Association of Longer Telomeres with Better Health in Centenarians. J. Gerontol. A. Biol. Sci. Med. Sci. 63 (8), 809-812 (2008).
  43. Zee, R., Castonguay, A. J., Barton, N. S., Buring, J. E. Mean Telomere Length and Risk of Incident Colorectal Carcinoma. A Prospective, Nested Case-Control Approach. Cancer Epidemiology Biomarkers & Prevention. 18 (8), 2280-2282 (2009).
  44. Njajou, O. T., Hsueh, W. -C., Blackburn, E. H., Newman, A. B., Wu, S. -H., Li, R., Simonsick, E. M., Harris, T. M., Cummings, S. R., Cawthon, R. M. Association Between Telomere Length, Specific Causes of Death, and Years of Healthy Life in Health, Aging, and Body Composition, a Population-Based Cohort Study. The Journals of Gerontology Series A: Biological Sciences and Medical Sciences. 64A (8), 860-864 (2009).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Ilo ciowa reakcja a cuchowa polimerazy w czasie rzeczywistym qPCRizolacja genomowego DNArozcie czanie starter w telomerycznychseryjne rozcie czanie DNAurz dzenie do PCR w czasie rzeczywistymzestaw do detekcji telomerazyoznaczenie st enia bia kawarto ci cyklu progowego Ct
długość telomerów i aktywność telomerazy; Yin i Yang starzenia się komórek
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki Korzystania

Zasady

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.