TRP (przejściowe potencjały receptorowe) składają się z siedmiu podrodzin kanałów kationowych, które pełnią funkcje sensoryczne1,2. U ssaków TRPV, waniloidowa podrodzina TRP, ma sześć odmian. TRPV4 (typ 4)3,4 reaguje na ciepło, niektóre chemikalia, pęcznienie osmotyczne lub naprężenia ścinające. Gen TRPV4 był wielokrotnie izolowany przez klonowanie genu kandydującego i/lub ekspresji5-8. Ta ostatnia metoda była zgodna z reakcją produktu genu na hipoosmolarność. TRPV4 ulega ekspresji w prawie wszystkich narządach i funkcjach w rozwoju, fizjologii lub patologii wielu różnych typów komórek3,4.
Uderzające są >50 ludzkich autosomalnych dominujących mutacji >TRPV4, powodujących neuropatie obwodowe i/lub dysplazje szkieletowe (nieprawidłowości w rozwoju szkieletu)9-11. Dysplazje szkieletowe wahają się od łagodnej brachyomii typu 3 (karłowatość typu 3), dysplazji kręgowo-przynasadowej typu Kozłowskiego do ciężkich dysplazji, z których niektóre powodują śmierć noworodków lub zarodków. Chociaż wszystkie rodzaje mechanizmów wydają się możliwe, żaden z nich nie wyjaśnia różnorodności, złożoności, zmienności i sporadycznego nakładania się tych chorób.
Podobnie jak inne kanały TRP1, TRPV4 jest tetramerem. W TRPV4 szczura lub człowieka każda podjednostka składa się z 871 reszt. Jego centralnym elementem jest sześć transbłonowych helis A (S1-S6), które są prawdopodobnie ułożone w sposób podobny do kanałów bramkowanych napięciem K+. Tam S1 do S4 tworzą domenę peryferyjną, a S5 i S6 tworzą domenę porów przenikania. Pomiędzy S5 i S6 TRPV4 znajduje się helisa o krótkich porach, po której następuje sekwencja LDLFKLTIGMGDL, z których cztery prawdopodobnie zbiegają się, tworząc filtr kationowy. N-końcowy segment cytoplazmatyczny z 470 resztami zawiera 6 powtórzeń ankyryny, o których wiadomo, że wiążą białka lub małe ligandy. C-końcowy segment cytoplazmatyczny ze 152 resztami zawiera sekwencję wiążącą kalmodulinę wśród innych możliwych miejsc, które wiążą inne pierwiastki3.
TRPV4 to kanał kationowy, który zasadniczo wyklucza aniony1. Podczas gdy jego funkcją fizjologiczną jest przekazywanie bodźców do napływu Ca2 +, jest również przepuszczalny dla innych kationów z sekwencją przepuszczalności Eisenmana IV, faworyzując dwuwartościowy w PCa : PNa ~ 7 12. Przewodność jednokanałowa prostuje przy ~90 pS na zewnątrz i ~40 pS do wewnątrz6,13,14. Prąd wyrażony heterologicznie (poniżej) może być aktywowany przez pęcznienie hipoosmotyczne, naprężenie ścinające lub ciepło15. Jest również aktywowany przez wielonienasycone kwasy tłuszczowe16,17 i syntetyczny ester forbalu 4αPDD 18. Obecnie najsilniejszym agonistą jest GSK1016790A 19, a antagonistą jest GSK2193874, skuteczny w 10-9 do 10-8 M 20, oba wykryte za pomocą wysokoprzepustowych, małocząsteczkowych badań przesiewowych.
Dwa kluczowe obszary badań nad TRPV4 pozostają niejasne: (1) Mimo że TRPV4 jest głównie badany pod kątem jego mechanowrażliwości, jego molekularne podstawy są kontrowersyjne. Jeden z modeli opisuje hipo-osmolarność w jakiś sposób aktywuje fosfolipazę A2 (PLA2) do produkcji wielonienasyconego kwasu tłuszczowego (PUFA) kwasu arachidonowego (AA), który jest przekształcany w kwas epoksyeikozatrienowy (EET) przez epoksydazę, a wiązanie EET aktywuje TRPV4 16,17. Jednak wykazano, że sam TRPV4 bezpośrednio reaguje na rozciąganie błony14 (poniżej), co zapewnia prostsze wyjaśnienie. (2) Patologie mutacji TRPV4 są oszałamiające. W fundacji trzeba wiedzieć, czy choroby są spowodowane utratą, zmniejszeniem czy wzrostem aktywności kanału. Nawet w tym przypadku literatura jest daleka od jasności. Podczas gdy donoszono, że mnogie allele dysplazji szkieletowej mają wyższą aktywność (przyrost funkcji, GOF)4,21, kilka z nich miało zmniejszoną aktywność (utrata funkcji, LOF)10,22. Systematyczne badanie 14 alleli wykazało, że wszystkie są mutacjami GOF (poniżej)23. Twierdzenie, że niektóre z nich są LOF, wydaje się być sprzeczne z fenotypem myszy z nokautem trpV4-/-, które są żywotne lub płodne, z niewielkimi wadami, pomimo całkowitej utraty funkcji TRPV4.
Część tych kontrowersji ma pochodzenie metodologiczne. Laboratoria stosują różne metody lub warianty jednej metody i stosują różne standardy oceny. Najczęściej TRPV4 ulega przejściowej ekspresji w hodowanych komórkach ssaków (HEK, CHO, HeLa), a wzrost wewnętrznego [Ca2+] po stymulacji agonistycznej lub hipotonicznej jest rejestrowany za pomocą wrażliwego na Ca2+ barwnika fluorescencyjnego, Fura-2. Nadmierne poleganie na tym teście fluorometrycznym zostało skrytykowane1. Poziom ekspresji w różnych populacjach, jego rozmieszczenie, a także efektywne stężenie barwnika muszą być kontrolowane i dokumentowane. Bardziej wiarygodne są bezpośrednie badania elektrofizjologiczne. Nawet to, jak powszechnie się praktykuje, również nie jest pozbawione problemów. Ponieważ poziomy ekspresji w poszczególnych hodowanych komórkach są trudne do kontrolowania, prądy w całych komórkach mają duże różnice. Co więcej, ponieważ prądy są małe, wiarygodne statystyki będą musiały opierać się na dużych rozmiarach próbek, co często nie jest praktyczne. Badania typu patch-clamp były rzadko wykonywane. Niektóre z takich nagrań pokazują skupiska wybuchów aktywności, które sprawiają, że ocena statystyczna jest trudna16,17.
Aby lepiej zrozumieć mechanowrażliwość molekularną, opracowaliśmy dwa dodatkowe systemy do badania TRPV4. (1) Aby wyizolować TRPV4 z dala od jego zwykłych partnerów ssaków, wyraziliśmy TRPV4 szczura w pączkujących drożdżach24. Funkcjonalna ekspresja TRPV4 w tym ewolucyjnie odległym kontekście wykazała, że może on nadal reagować na siłę osmotyczną bez swoich zwykłych partnerów. Ponieważ drożdże nie wytwarzają PUFA, takich jak AA lub EET, a ich genom nie ma genów PLA2 ani epoksydazy, to wyrażenie pokazuje również, że nie są one wymagane, aby TRPV4 wyczuwał siłę. Posiadanie TRPV4 w biologicznie najbardziej podatnych molekularnie eukariontach pozwala również na skuteczne manipulacje genetyczne do przodu lub do tyłu25. (2) W celu dogłębnych analiz biofizycznych TRPV4 ulegliśmy ekspresji TRPV4 w oocytach Xenopus. W przeciwieństwie do hodowanych komórek, które wytwarzają prądy sub-nA do nA (10-10 do 10-9 A), oocyt wyraża prądy w μA (10-6 do 10-4 A). Znacznie większy sygnał w stosunku do szumu pozwala na lepszą kwantyfikację i pewniejsze porównanie. TRPV4, wyrażony w ten sposób, może być również badany jako pojedyncze cząsteczki za pomocą patch clamp. Pojedynczy oocyt umożliwia wielokrotne pobieranie próbek plastrów, co ponownie zwiększa wiarygodność oceny ilościowej. Takie badania wykazały, że sam kanał TRPV4 może być bezpośrednio aktywowany przez siłę rozciągającą błonę14. Analizy wykazały również, że 14 reprezentatywnych alleli dysplazji szkieletowej to mutacje wynikające ze wzmocnienia funkcji. Co więcej, stopień tego składowego wycieku Ca2 + jest równoległy do ciężkości chorób układu kostnego23.
Ze względu na ich nowatorstwo i użyteczność, szczegółowe procedury tych dwóch metod są tutaj zebrane, aby umożliwić replikacje w przyszłych badaniach nad TRPV4 lub podobnymi kanałami.