Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

USG przezbrzuszne w diagnostyce ciąży u jelenia Muntjac Reevesa

10K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/50855

⸱

7 stycznia 2014

 ,  ,  , 

W tym artykule

Podsumowanie

Przezbrzuszne ultrasonografie jest opisywane jako skuteczny, nieinwazyjny sposób oceny statusu reprodukcyjnego u jelenia muntjac Reevesa. Metody te można wykorzystać do wczesnej diagnozy ciąży i oceny żywotności płodu. Przyszłe zastosowania tej techniki obejmują szacowanie wieku ciążowego i wpływu chorób matki na rozwój płodu.

Streszczenie

Jeleń muntjac Reevesa (Muntiacus reevesi) to mały gatunek jeleniowatych pochodzący z południowo-wschodniej Azji i obecnie badany jako potencjalny model przenoszenia i patogenezy chorób prionowych. Transmisja wertykalna jest obszarem zainteresowania naukowców zajmujących się chorobami zakaźnymi, w tym chorobą prionową, a badania te wymagają skutecznych metod oceny wpływu infekcji matki na wydajność reprodukcyjną. Badanie ultrasonograficzne jest ugruntowanym narzędziem do diagnozowania ciąży i oceny zdrowia płodu u wielu gatunków zwierząt1-7, w tym kilku gatunków jeleniowatych hodowlanych8-19, jednak technika ta nie została opisana u jelenia muntjac Reevesa. W tym artykule opisano zastosowanie ultrasonografii przezbrzusznej do wykrywania ciąży u samic oraz do oceny wzrostu i rozwoju płodu przez cały okres ciąży. Korzystając z tej procedury, ciężarne zwierzęta zostały zidentyfikowane już po 35 dniach od sparowania łań z kozłami, co było skutecznym sposobem bezpiecznego monitorowania ciąży w regularnych odstępach czasu. Przyszłe cele tej pracy będą obejmowały ustalenie normalnych pomiarów płodu w celu oszacowania wieku ciążowego, określenie czułości i swoistości techniki diagnozowania ciąży na różnych etapach ciąży oraz identyfikację zmian we wzroście i rozwoju płodu w różnych warunkach eksperymentalnych.

Wprowadzenie

Badanie ultrasonograficzne jest dobrze opisaną metodą diagnozowania ciąży u bydła1, owiec2,3, kóz4, koni5, zwierząt towarzyszących6,7 i innych gatunków zwierząt domowych. Ta metoda obrazowania została również uznana za cenne narzędzie do wykrywania ciąży i szacowania wieku płodu u kilku gatunków jeleniowatych żyjących w niewoli, w tym danieli8-11, jeleni szlachetnych12-16, jeleni Hokkaido17 i reniferów18,19. W wielu przypadkach ultrasonografia przyniosła wyższe wskaźniki dokładności niż inne mechanizmy wykrywania ciąży, takie jak progesteron w surowicy lub analiza glikoproteiny związanej z ciążą9,18. Ponadto ultrasonograficzna wizualizacja układu rozrodczego może dostarczyć dodatkowych informacji na temat żywotności płodu, wieku ciążowego oraz identyfikacji nieprawidłowości rozwojowych, które w innym przypadku byłyby trudne do oceny. Użyteczność ultrasonografii do oceny stanu rozrodczego sugeruje, że metodologia ta powinna być dostosowana do innych gatunków, u których stosuje się aktywne programy hodowlane.

Jeleń muntjac Reevesa (Muntiacus reevesi) to mały gatunek jeleniowatych pochodzący z południowo-wschodniej Azji20. Chociaż cykl reprodukcyjny tych zwierząt nie jest dobrze scharakteryzowany na ich rodzimych terytoriach, badania dzikich populacji w niektórych częściach południowej Anglii poprawiły zrozumienie ich wzorców rozrodczych20. W przeciwieństwie do większości jeleniowatych, muntjac Reevesa wydaje się rozmnażać przez cały rok, bez widocznych sezonowych szczytów łaszeniasię 20-22. Samice muntjac zazwyczaj rodzą jednego jelonka po 210-dniowym okresie ciąży i niezawodnie wchodzą w ruję poporodową w ciągu 24 godzin20-22. Czy to nie począć w tym okresie poporodowym powróci do rui około 24-25 dni później20. W sytuacjach trzymania w niewoli rozmnażanie odbywa się zwykle poprzez trzymanie łań z jednym lub więcej nienaruszonymi samcami. System ten zapewnia zadowalające wskaźniki zapłodnień i wymaga od personelu niewielkich umiejętności technicznych, jednak dokładne daty hodowli są trudne, jeśli nie niemożliwe, do ustalenia.

Muntjac są powszechnie używane w badaniach cytogenetycznych ze względu na szeroki zakres diploidalnych liczb chromosomów i wysoki wskaźnik zróżnicowania kariotypowego między różnymi gatunkami23. Zwierzęta te są również obecnie badane jako model patogenezy i przenoszenia choroby prionowej, ze szczególnym zainteresowaniem związanym z badaniem pionowego przenoszenia przewlekłej choroby wyniszczającej (CWD) u jeleniowatych. Znaczenie muntjaca w wielu różnych zastosowaniach badawczych sugeruje, że należy opracować ulepszone technologie reprodukcyjne, które uzupełnią obecne procedury badawcze. W szczególności nieinwazyjne mechanizmy oceny okresu ciąży mogą potencjalnie wyjaśnić krytyczne różnice w wydajności reprodukcyjnej oraz wzroście i rozwoju płodu w różnych warunkach eksperymentalnych. Co więcej, opracowanie odniesień do pomiarów płodu w czasie rzeczywistym byłoby potencjalnie cenne dla oszacowania wieku ciążowego w sytuacjach, w których nie można określić daty rozrodu. Wcześniejsze badania opisywały mechanizmy wykorzystania pomiarów płodu, takich jak długość korony i zadu (CRL), głębokość klatki piersiowej (CD) i długość głowy (HL) w celu oszacowania przybliżonego etapu ciąży u gatunków jeleniowatych11-14, 16,17. Ponadto niektóre z tych badań ustaliły również wytyczne opisujące, kiedy można zidentyfikować określone kamienie milowe rozwoju, takie jak mineralizacja szkieletu lub bicie serca płodu8-19. Chociaż dane te mogą być przydatne w prowadzeniu analizy ultrasonograficznej reprodukcji u muntjaców, większość innych badanych gatunków jeleniowatych ma znacznie większy rozmiar ciała i dłuższe okresy ciąży, co zmniejsza wartość translacyjną tych badań dla zastosowań muntjac

.

Protokół opisany tutaj opisuje przezbrzuszną ultrasonografię samicy muntjac w celu diagnozowania i monitorowania ciąży. Pomyślne wykonanie tego protokołu może ułatwić wczesne wykrycie ciąży oraz ocenę wzrostu i rozwoju płodu. Technika ta ma cenne zastosowania w prowadzeniu badań nad rozrodczością, rozwojem in utero lub pionowym przenoszeniem chorób zakaźnych w modelu małych jeleniowatych i może być również przydatna do celów klinicznych w hodowli w niewoli.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Przygotowanie proceduralne

Wszystkie opisane procedury dla zwierząt zostały sprawdzone i zatwierdzone przez Instytucjonalną Komisję ds. Opieki nad Zwierzętami i Użytkowania na Uniwersytecie Stanowym Kolorado, Stowarzyszenie na rzecz Oceny i Akredytacji Opieki nad Zwierzętami Laboratoryjnymi (AAALAC), instytucję akredytowaną przez Intl.

  1. Przed badaniem należy unieruchomić zwierzęta za pomocą odpowiednich protokołów sedacji lub znieczulenia, aby zapewnić relaks i umożliwić odpowiednie ułożenie. Jeden przewodnik przytrzymuje jelenia, podczas gdy druga osoba podaje zwierzęciu środek uspokajający.
    nuta: Autorzy znaleźli następującą kombinację, aby zapewnić skuteczną sedację u tego gatunku: butorfanol (0,45 mg / kg), azaperon (0,035 mg / kg) i medetomidyna (0,04 mg / kg), podawane domięśniowo w mięśnie pośladkowe.
  2. Gdy łania osiągnie płaszczyznę sedacji, która pozwala na zgodne obchodzenie się z nią, umieść ją w pozycji grzbietowej lub bocznej na stole do badań lub w korycie V. Nieznacznie unieś głowę, szyję i klatkę piersiową (około 20-30°), aby zmniejszyć ryzyko niedomykalności i aspiracji treści żwacza oraz ułatwić prawidłową wentylację podczas zabiegu.
    nuta: U większości jeleniowatych lub innych gatunków przeżuwaczy USG jamy brzusznej wykonuje się u zwierząt stojących; Jednak niewielkie rozmiary i względy behawioralne tego gatunku wymagają silnej sedacji do badania, a zatem ułożenie mostka jest trudniejsze i może uniemożliwić skuteczną technikę obrazowania. Ustawienie zwierzęcia w połowie drogi między leżeniem mostkowym a bocznym może być idealne dla zmniejszenia ryzyka niedomykalności i hipowentylacji i powinno być brane pod uwagę, jeśli to możliwe. W każdej pozycji leżącej bardzo ważne jest uważne monitorowanie oddechów zwierząt i natychmiastowe przerwanie badania oraz umieszczenie zwierzęcia w pozycji leżącej mostka, jeśli zauważy się niedomykalność lub hipowentylację.
  3. W razie potrzeby przyciąć włosy z obszaru brzucha, który ma być badany, aby uzyskać odpowiedni kontakt między śladem przetwornika a skórą.
    nuta: We wczesnej ciąży ślady ciąży można wykryć w jamie brzusznej ogona w pobliżu gruczołów sutkowych. Ten obszar muntjacu jest zazwyczaj bezwłosy, dlatego golenie może nie być w tej chwili wskazane. W miarę wzrostu płodu i tendencji macicy do zajmowania bardziej czaszkowej pozycji w jamie brzusznej, przed obrazowaniem konieczne będzie strzyżenie włosów. Należy zachować ostrożność, aby nie spowodować jakichkolwiek urazów mechanicznych skóry, w tym skaleczenia żyletkami lub obrażeń termicznych spowodowanych maszynkami do strzyżenia elektrycznego.
  4. Ustaw aparat ultrasonograficzny w miejscu, które umożliwia technikowi łatwą wizualizację monitora podczas przeprowadzania badania dominującą ręką. Wprowadź informacje identyfikujące zwierzę (imię, numer identyfikacyjny itp.) do systemu, aby automatycznie oznaczyć zapisane obrazy i pętle wideo.

2. Badanie ultrasonograficzne przezbrzusznego układu rozrodczego

  1. Nałóż dużą ilość akustycznego żelu sprzęgającego na brzuch ogonowy.
  2. Umieść zakrzywiony przetwornik liniowy 5-10 MHz na skórze brzucha ogonowego, bezpośrednio czaszką do kości łonowej, i przesuwaj go powoli w kierunku czaszki, aby ocenić struktury w jamie miednicy. Zeskanuj lewą i prawą ćwiartkę brzucha ogonowego, aby ocenić oba rogi dwurożnej macicy muntjaca.
    nuta: Kompleksowe badanie ultrasonograficzne jamy brzusznej polega na ocenie wszystkich wnętrzności jamy brzusznej, w tym wątroby, nerek, śledziony, przewodu pokarmowego, pęcherza moczowego i dróg rodnych. Do celów niniejszego protokołu szczegółowo omówione zostanie jedynie badanie ciąży; Należy jednak rozpoznać normalny wygląd innych ogonowych narządów jamy brzusznej, ponieważ struktury te mogą wystąpić w trakcie badania. Narządy najczęściej spotykane w tej lokalizacji to odcinki przewodu pokarmowego, pęcherz moczowy i drogi rodne. Jelito grube i cienkie można rozpoznać po charakterystycznie warstwowym wyglądzie ściany jelita. Światło może, ale nie musi być wyraźne w zależności od rodzaju i ilości zawartości, która może obejmować płyn, gaz, śluz lub cząstki jedzenia. Pęcherz moczowy może być trudny do zidentyfikowania, chyba że jest rozdęty moczem, a warstwy ściany pęcherza moczowego są znacznie mniej wyraźne niż te w jelitach. Oprócz macicy na USG dróg rodnych samicy muntjac można również znaleźć jajniki. Jajniki pojawią się jako jajowate struktury w pobliżu bieguna ogonowego nerek, a ich wygląd może się zmieniać w trakcie cyklu rujowego. Obecność wielu dojrzałych, wypełnionych płynem pęcherzyków w korze sugeruje ruję.
    nuta: Obracając i/lub "wachlując" głowicę skanującą przetwornika, struktury mogą być oceniane w płaszczyźnie poprzecznej lub strzałkowej.
    1. Jeśli jest to konieczne do odróżnienia ciężkiej macicy od pęcherza moczowego, opróżnij pęcherz ręcznie, wywierając delikatny nacisk na brzuch ogonowy lub umieszczając cewnik moczowy i powtarzając skanowanie.
      nuta: Ręczne odciąganie pęcherza moczowego powinno być próbowane tylko wtedy, gdy zwierzę znajduje się w pozycji mostkowej lub pionowej, co ułatwia bardziej naturalną orientację wnętrzności brzusznych i zmniejsza ryzyko urazu innych struktur. Macicę można również odróżnić od pęcherza moczowego, oceniając grubość ściany narządu. Typowa grubość umiarkowanie rozdętego pęcherza moczowego wynosi około 1,4 mm24, podczas gdy autorzy odkryli, że bardziej umięśniona ściana ciężkości macicy w muntjac zwykle mierzy między 7-8 mm.
      nuta: Wczesna ciąża jest trudna do ostatecznego zdiagnozowania ze względu na brak możliwych do zidentyfikowania struktur płodu, a w rzeczywistości pierwszą oznaką ciąży może być po prostu mała kieszeń płynowa w jamie brzusznej. Jeśli zostanie to zaobserwowane w tym czasie, rozwijający się zarodek będzie wyglądał jak hiperechoiczna, jajowata lub amorficzna struktura w macicy (ryc. 1).
  3. W razie potrzeby dostosuj głębię, częstotliwość i wzmocnienie, aby poprawić kontrast i szczegółowość obrazu.
    Uwaga: wyższe częstotliwości wiążą się z krótszymi falami, które są niezbędne do poprawy rozdzielczości obrazu. Większość przetworników może pracować w zakresie częstotliwości (na przykład 6-10 MHz)24. Częstotliwość można regulować za pomocą elementów sterujących skanera na urządzeniu ultrasonograficznym, a zwiększenie częstotliwości spowoduje uzyskanie wyraźniejszego obrazu. Jednoczesne zwiększanie częstotliwości zmniejsza głębokość penetracji fal dźwiękowych; W związku z tym zmniejszenie częstotliwości może być konieczne do wizualizacji głębszych struktur, ale rozdzielczość może ulec pogorszeniu24. Z tego powodu ważne jest, aby wybrać najwyższą możliwą częstotliwość, aby osiągnąć pożądaną głębokość tkanki. Regulacje elementów sterujących wzmocnieniem zmienią wzmocnienie fal dźwiękowych powracających do przetwornika z tkanek i wpłyną na stopień kontrastu obrazu24. Wzmocnienie powinno być ustawione na punkt, w którym uzyskuje się optymalny kontrast między tkankami hiperechogenicznymi i hipoechogenicznymi, a ustawienia te mogą wymagać dostosowania w zależności od obrazowanych struktur.

3. Pomiary płodu

Uwaga: Wiek ciążowy u wielu gatunków zwierząt domowych można oszacować za pomocą ustalonych zakresów referencyjnych dla pomiarów płodu uzyskanych z badania ultrasonograficznego. Najczęściej stosowane pomiary obejmują prostą długość korony i zadu (SCRL), głębokość klatki piersiowej (CD) i długość głowy (HL)17. Chociaż nie zebrano jeszcze wystarczających danych, aby opracować wiarygodne wytyczne dotyczące wieku ciążowego u jelenia muntjac Reevesa, można zebrać pomiary, aby rozpocząć ustalanie tych odniesień. Wykazano, że tętno płodu (FHR) u innych gatunków jeleniowatych i przeżuwaczy wzrasta liniowo w miarę postępu ciąży do pewnego punktu (zwykle około 60 dnia ciąży), w którym to czasie częstość akcji serca zaczyna spadać17. FHR może być stosowany do szacowania wieku ciążowego w połączeniu z innymi obserwacjami ultrasonograficznymi, jednak częściej jest stosowany jako miara żywotności płodu17,24. FHR został obliczony u muntjaca Reevesa już 35 dni po zaobserwowanym kryciu.

  1. Aby zmierzyć SCRL, zlokalizuj macicę na monitorze i dokonaj precyzyjnych regulacji położenia przetwornika, aż do uzyskania strzałkowego widoku całego płodu (ryc. 2 i 3). Zamrożenie obrazu i zmierzenie odległości między najbardziej grzbietową częścią czaszki a podstawą kości krzyżowej (ryc. 2 i 3).
  2. Aby zmierzyć CD, uzyskaj strzałkowy widok płodu (ten sam obraz może być użyty do pomiaru SCRL) i zmierz odległość między grzbietową i brzuszną częścią klatki piersiowej (ryc. 2 i 3).
  3. Aby zmierzyć HL, używając tego samego strzałkowego widoku płodu, jak opisano dla pomiarów SCRL i CD, zmierz odległość od grzebienia potylicznego do podstawy nosa (ryc. 2 i 3).
  4. Aby obliczyć tętno płodu, zidentyfikuj serce w jamie piersiowej płodu, wizualizując jego rytmiczne skurcze. Oblicz tętno, licząc liczbę skurczów (uderzeń serca), które występują w ciągu 1 minuty.
    nuta: Jeśli używany aparat ultrasonograficzny ma możliwości dopplerowskie, funkcja ta może być wykorzystana do dalszej pomocy w odróżnianiu serca od innych niespecyficznych ruchów płodu.
  5. Sprawdź, czy wszystkie zapisane obrazy i pętle wideo zawierają wszystkie niezbędne informacje identyfikujące, w tym nazwę lub numer zwierzęcia, datę, wymiary i odpowiednie etykiety struktury.

4. Wnioski proceduralne i odzyskiwanie

  1. Usuń wszystkie resztki kontaktowego żelu ultradźwiękowego z brzucha zwierzęcia za pomocą miękkiej szmatki lub ręczników papierowych. Oczyść żel z przetwornika przed przechowywaniem.
  2. W przypadku stosowania protokołu sedacji opisanego w kroku 1.1 atipamezol należy podawać podskórnie w dawce 0,25 mg/kg mc. w celu odwrócenia działania medetomidyny. W przypadku stosowania innego protokołu sedacji, w którym dostępny jest antagonista, należy podać ten środek zwierzęciu zgodnie z opublikowanymi dawkami po zakończeniu zabiegu, aby przyspieszyć powrót do zdrowia.
  3. Umieść muntjaca na miękkiej powierzchni w pozycji leżącej mostka, z lekko uniesioną głową, aby zmniejszyć ryzyko niedomykalności i aspiracji treści żwacza. Uważnie obserwować zwierzę do czasu, aż w pełni wyzdrowieje i będzie w stanie poruszać się po pomieszczeniu bez pomocy.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Korzystając z opisanego tutaj protokołu, ciąża może być diagnozowana i monitorowana u jelenia muntjac Reeve'a za pomocą minimalnie inwazyjnych technik. Najwcześniejszy punkt, w którym ciąża mogła zostać wykryta przez autorów, to około 35 dni po zaobserwowanym zachowaniu godowym.

We wczesnych stadiach ciąży ciąża została zdiagnozowana poprzez wizualizację wypełnionej płynem macicy zidentyfikowanej jako bezechowa przestrzeń w ogonowym brzuchu. W obrębie macicy rozwijający się zarodek wyglądał ja...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Protokół ten opisuje zastosowanie ultrasonografii przezbrzusznej do diagnozowania ciąży u jelenia muntjac Reevesa. Podobnie jak w przypadku innych badań ultrasonograficznych, odpowiedni sprzęt i biegłość techniczna są niezbędne do pomyślnego badania reprodukcyjnego łani muntjac. Dokładny przegląd podstawowej anatomii ssaków, fizycznych zasad diagnostycznych ultradźwięków i typowego ultrasonograficznego wyglądu wnętrzności brzusznych pomoże w zmniejszeniu liczby błędnych diagnoz. Ponadto wybór odpowiednich przetworników o...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Autorzy pragną podziękować Jeanette Hayes-Klug i Kelly Anderson za zarządzanie kolonią muntjac, dr Alanowi Youngowi za zapoznanie nas z muntjacem oraz panu Cleve Tedfordowi z Cervid Solutions Inc. za dostarczenie nasion muntjac dla tego projektu. Prace te były wspierane przez grant NIH R01AI093634.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Winian butorfanolu (Torbugesic) (0,45 mg / kg)Fort Dodge Animal Health, Fort Dodge, IowaNADA 135-780
Winian azaperonu (0,035 mg / kg)ZooPharm
Medetomidine HCl (0,04 mg / kg)ZooPharm
Ultradźwiękowy żel kontaktowyMedline, Mundelein, IllinoisMDS092005
Chlorowodorek atipamezolu ( Antisedan) (0,25 mg / kg)Orion Corporation, Espoo, FinlandiaNADA 141-033
V-trough (opcjonalnie)N/A/AZwierzę może być podtrzymywane w pozycji grzbietowej na standardowym stole do badań lub innej powierzchni bez użycia V-trough
Elektryczne maszynki do strzyżenia lub żyletki do depilacjiOster, McMinnville, Tennessee78005-140
System ultrasonograficzny: przenośny ultrasonograf Ibex ProE.I. Medical Imaging, Loveland, COIbex Pro
Przetwornik 5-10 MHz: CL3.8 5-2,5 MHz 60 mm zakrzywiona matryca liniowaEI Medical Imaging, Loveland, CO290420
Strzykawki 3 mlCovidien1.18E+09
Igły 22 GCovidien8.88E+09
N

Bibliografia

  1. White, I. R., Russel, A. J., Wright, I. A., Whyte, T. K. Real-time ultrasonic scanning in the diagnosis of pregnancy and the estimation of gestational age in cattle. Vet Rec. 117 (1), 5-8 (1985).
  2. Sergeev, L., et al. Real-time ultrasound imaging for predicting ovine fetal age. Theriogenology. 34 (3), 593-601 (1990).
  3. Aiumlamai, S., Fredriksson, G., Nilsfors, L. Real-time ultrasonography for determining the gestational age of ewes. Vet. Rec. 131 (24), 560-562 (1992).
  4. Lee, Y., et al. Ultrasonic measurement of fetal parameters for estimation of gestational age in Korean black goats. J. Vet. Med. Sci. 67 (5), 497-502 (2005).
  5. Renaudin, C. D., Gillis, C. L., Tarantal, A. F., Coleman, D. A. Evaluation of equine fetal growth from day 100 of gestation to parturition by ultrasonography. J. Reprod. Fertil. Suppl. (56), 651-660 (2000).
  6. Lopate, C. Estimation of gestational age and assessment of canine fetal maturation using radiology and ultrasonography: a review. Theriogenology. 70 (3), 397-402 (2008).
  7. Gatel, L., Rosset, E., Chalvet-Monfray, K., Buff, S., Rault, D. N. Relationships between fetal biometry, maternal factors and birth weight of purebred domestic cat kittens. Theriogenology. 76 (9), 1716-1722 (2011).
  8. Mulley, R. C., English, A. W., Rawlinson, R. J., Chapple, R. S. Pregnancy diagnosis of fallow deer by ultrasonography. Aust. Vet. J. 64 (8), 257-258 (1987).
  9. Willard, S. T., Sasser, R. G., Jaques, J. T., White, D. R., Neuendorff, D. A., Randel, R. D. Early pregnancy detection and the hormonal characterization of embryonic-fetal mortality in fallow deer (Dama dama). Theriogenology. 49 (4), 861-869 (1998).
  10. Willard, S. T., Petty, S. J., Sasser, R. G., White, D. L., Randel, R. D. Pregnancy detection and the effects of age, body weight, and previous reproductive performance on pregnancy status and weaning rates of farmed fallow deer (Dama dama). J. Anim. Sci. 77 (1), 32-38 (1999).
  11. Lenz, M. F., English, A. W., Dradjat, A. Real-time ultrasonography for pregnancy diagnosis and foetal ageing in fallow deer. Aust. Vet. J. 70 (10), 373-375 (1993).
  12. White, I. R., McKelvey, W. A., Busby, S., Sneddon, A., Hamilton, W. J. Diagnosis of pregnancy and prediction of fetal age in red deer by real-time ultrasonic scanning. Vet. Rec. 124 (15), 395-397 (1989).
  13. Bingham, C. M., Wilson, P. R., Davies, A. S. Real-time ultrasonography for pregnancy diagnosis and estimation of fetal age in farmed red deer. Vet. Rec. 126 (5), 102-106 (1990).
  14. Wilson, P. R., Bingham, C. M. Accuracy of pregnancy diagnosis and prediction of calving date in red deer using real-time ultrasound scanning. Vet. Rec. 126 (6), 133-135 (1990).
  15. Revol, B., Wilson, P. R. Ultrasonography of the reproductive tract and early pregnancy in red deer. Vet. Rec. 128 (10), 229-233 (1991).
  16. Revol, B., Wilson, P. R. Foetal ageing in farmed red deer using real-time ultrasonography. Anim. Reprod. Sci. 25 (3), 241-253 (1991).
  17. Yanagawa, Y., et al. Fetal age estimation of Hokkaido sika deer (Cervus nippon yesoensis) using ultrasonography during early pregnancy. J. Reprod. Dev. 55 (2), 143-148 (2009).
  18. Savela, H., Vahtiala, S., Lindeberg, H., Dahl, R. E., Beckers, J. F., Saarela, S. Comparison of accuracy of ultrasonography, progesterone, and pregnancy-associated glycoprotein tests for pregnancy diagnosis in semidomesticated reindeer. Theriogenology. 72 (9), 1229-1236 (2009).
  19. Vahtiala, S., Sakkinen, H., Dahl, E., Beckers, J. F., Ropstad, E. Ultrasonography in early pregnancy diagnosis and measurements of fetal size in reindeer (Rangifer tarandus tarandus). Theriogenology. 61 (4), 785-795 (2004).
  20. Chapman, N. G., Harris, S. Evidence that the seasonal antler cycle of adult Reeves' muntjac (Muntiacus reevesi) is not associated with reproductive quiescence. J. Reprod. Fertil. 92 (2), 361-369 (1991).
  21. Chapman, D. I., Chapman, N. G., Dansie, O. The periods of conception and parturition in feral Reeves' muntjac (Muntiacus reevesi) in southern England, based upon age of juvenile animals. J. Zool. 204 (4), 575-578 (1984).
  22. Chapman, N. G., Furlong, M., Harris, S. Reproductive strategies and the influence of date of birth on growth and sexual development of an aseasonally-breeding ungulate: Reeves' muntjac (Muntiacus reevesi). J. Zool. 241 (3), 551-570 (1996).
  23. Liming, S., Yingying, Y., Xingsheng, D. Comparative cytogenetic studies on the red muntjac, Chinese muntjac, and their F1 hybrids. Cytogenet. Cell Genet. 26 (1), 22-27 (1980).
  24. Nyland, T. G., Mattoon, J. S. Chapter 2. Small Animal Diagnostic Ultrasound. , 2nd edition, Saunders. Philadelphia. 19-29 (2002).
  25. Huang, F., Cockrell, D. C., Stephenson, T. R., Noyes, J. H., Sasser, R. G. A serum pregnancy test with a specific radioimmunoassay for moose and elk pregnancy-specific protein B. J. Wildl. Manag. 64, 492-499 (2000).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Pomiary płodubadanie ultrasonograficznedrogi rodnewiek ciążowywzrost płoduunieruchomienie zwierzątżel sprzęgający