Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

In vivo (in vivo) Poporodowa elektroporacja i obrazowanie poklatkowe migracji neuroblastów w ostrych wycinkach mózgu myszy

13.1K wyświetleń

DOI:

10.3791/50905

25 listopada 2013

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

Migracja neuroblastów jest fundamentalnym wydarzeniem w neurogenezie poporodowej. Opisujemy protokół skutecznego znakowania neuroblastów za pomocą elektroporacji poporodowej in vivo i późniejszej wizualizacji ich migracji za pomocą obrazowania poklatkowego ostrych wycinków mózgu. Dołączamy opis do ilościowej analizy dynamiki neuroblastów za pomocą śledzenia wideo.

Streszczenie

Strefa podkomorowa (SVZ) jest jedną z głównych nisz neurogennych w mózgu po urodzeniu. W tym przypadku neuronalne komórki progenitorowe namnażają się i dają początek neuroblastom zdolnym do poruszania się wzdłuż rostralnego strumienia migracyjnego (RMS) w kierunku opuszki węchowej (OB). Ta długodystansowa migracja jest niezbędna do późniejszego dojrzewania nowo narodzonych neuronów w OB, ale mechanizmy molekularne regulujące ten proces są nadal niejasne. Badanie szlaków sygnałowych kontrolujących ruchliwość neuroblastów może nie tylko pomóc w zrozumieniu podstawowego etapu neurogenezy, ale także mieć terapeutyczny potencjał regeneracyjny, biorąc pod uwagę zdolność tych neuroblastów do celowania w miejsca mózgu dotknięte urazem, udarem lub zwyrodnieniem.

W tym manuskrypcie opisujemy szczegółowy protokół elektroporacji in vivo i późniejszego obrazowania poklatkowego migracji neuroblastów w RMS myszy. Elektroporacja poporodowa może skutecznie transfekować komórki progenitorowe SVZ, które z kolei generują neuroblasty migrujące wzdłuż RMS. Korzystając z konfokalnej mikroskopii poklatkowej z wirującym dyskiem na ostrych kulturach wycinków mózgu, migracja neuroblastów może być monitorowana w środowisku bardzo przypominającym w warunkach in vivo. Co więcej, ruchliwość neuroblastów może być śledzona i analizowana ilościowo. Jako przykład opisujemy, jak wykorzystać elektroporację in vivo plazmidu wykazującego ekspresję GFP do znakowania i wizualizacji neuroblastów migrujących wzdłuż RMS. Elektroporacja plazmidów eksprymujących rekombinazę shRNA lub CRE u myszy z warunkowym nokautem wykorzystujących system LoxP może być również wykorzystana do celowania w interesujące geny. Można przeprowadzić farmakologiczną manipulację ostrymi kulturami wycinków mózgu w celu zbadania roli różnych cząsteczek sygnałowych w migracji neuroblastów. Łącząc elektroporację in vivo z obrazowaniem poklatkowym, mamy nadzieję zrozumieć mechanizmy molekularne kontrolujące ruchliwość neuroblastów i przyczynić się do rozwoju nowych podejść wspomagających naprawę mózgu.

Wprowadzenie

W mózgu ssaków tworzenie nowych neuronów (neurogeneza) następuje po urodzeniu głównie w dwóch regionach, strefie podkomorowej (SVZ) komór bocznych i strefie podziarnistej w zakręcie zębatym hipokampa1. Liczne dowody zebrane w ostatnich latach potwierdzają kluczową rolę neurogenezy pourodzeniowej w funkcjach pamięci hipokampa i opuszki węchowej1-3. Co ważne, neurogeneza poporodowa ma również potencjał terapeutyczny ze względu na jej związek z zwyrodnieniowymi zaburzeniami neurologicznymi oraz zdolność neuroblastów do migracji do uszkodzonych miejsc w mózgu4-6.

Strefa podkomorowa (SVZ) stała się ostatnio klucz....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Ta procedura jest zgodna z przepisami brytyjskiego Ministerstwa Spraw Wewnętrznych (Animal Scientific Procedures Act, 1986). Naukowcy powinni postępować zgodnie z wytycznymi ustanowionymi i zatwierdzonymi przez ich instytucje i krajowe organizacje regulacyjne zajmujące się zwierzętami.

1. Elektroporacja poporodowa

1.1. Przygotowanie szklanych kapilarn, roztworu DNA i elektroporatora

  1. Przygotuj wyciągnięte szklane naczynia włosowate (średnica zewnętrzna: 1,5 mm, średnica wewnętrzna: 0,86 mm) do wstrzyknięcia DNA. (Orientacyjne ustawienia ściągacza kapilarnego Sutter P-97 to: Ciepło 283; Pociągnij 50; Prędk....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Znakowanie migrujących neuroblastów pochodzących z SVZ można obserwować wzdłuż RMS, zazwyczaj 4-8 dni po udanej elektroporacji (Rysunek 1B). Można wybrać dłuższe punkty czasowe, jednak w RMS znajdzie się mniej komórek, ponieważ większość z nich przeniknie do OB. Neuroblasty zaczynają nabierać typowej morfologii i cech dojrzałych komórek ziarnistych w OB około 2-3 tygodni po elektroporacji (nie pokazano). Po hodowli przez ~1 hr, skrawki mózgu z elektroporowanych mysich piskląt można wiarygodnie obrazować .......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Efektywna migracja neuronalnych komórek progenitorowych wzdłuż RMS zapewnia ich późniejsze dojrzewanie do funkcjonalnych neuronów10. Wyraźne strumienie neuronalnych komórek progenitorowych skierowanych w stronę OB są widoczne w okresie niemowlęcym u człowieka i prawdopodobnie odgrywają ważną rolę we wczesnym rozwoju mózgu człowieka po urodzeniu27. Co więcej, komórki te są w stanie celować w miejsca mózgu dotknięte urazem i neurodegeneracją4,28. Możliwość monitorowania w czasie rzeczywisty.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

M.S. i Y.Z. są wspierane przez stypendia doktoranckie KCL i KCL-China. M.O. zostało sfinansowane przez stypendium doktoranckie Rady ds. Badań Biotechnologii i Nauk Biologicznych. Dziękujemy Masaru Okabe i Jun-ichi Miyazaki za plazmid pCX-EGFP oraz Alainowi Chedotalowi i Atenie Ypsilanti za cenne porady dotyczące elektroporacji.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
MillicellMilliporePICM0RG50
35 mm Naczynie hodowlane ze szklanym dnemMatTekP35G-0-14-C
Gey's Balanced MediaSigmaG9779-500ML
Glukoza, 45%SigmaG8769-100ML
HEPESSigmaH3375-25G
Długopis/ StrepGIBCO15140-122
FCSGIBCO10109-163
B27 suplementInvitrogen Life Technologies17504044
L-glutaminaInvitrogen Life Technologies25030-081
DMEM (bez czerwieni fenolowej)GIBCO31053-028
Fast GreenSigmaF7252-5G
Szklane kapilary do wstrzykiwańAparat Harvard30-0057
Rurka aspiratoraSigmaA5177
Ściągacz kapilar Sutter P-97Instrument SutterP-97
ECM830 Elektroporator prostokątnyAparat Harvard45-0052
Platynowa pęseta 7 mmAparat Harvard45-0488
Przełącznik nożny model 1250FAparatura Harvarda45-0211
Żel do elektrodCefar Compex6602048
IsofluraneMerialAP/DRUGS/220/96
VibratomeLeicaVT1000S
KlejRoti collRoti coll 1
System wirujących dysków UltraViEW VoXPerkin ElmerIndywidualna konfiguracja (można użyć wielu źródeł lasera) wyposażona w kamerę CCD Hamamatsu ORCA R2 C10600-10B
Oprogramowanie VolocityPerkin ElmerModuły akwizycji, kwantyfikacji, wizualizacji
Komora środowiskowa do mikroskopiiSolent ScientificWykonany na zamówienie
mikroskop odwrócony Ti-ENikonObiektyw CFI Super Plan Fluor ELWD 20X/0,45 NA jest zalecany do zastosowań opisanych w tym artykule

Bibliografia

  1. Ming, G. L., Song, H. Adult neurogenesis in the mammalian brain: significant answers and significant questions. Neuron. 70, 687-702 (2011).
  2. Deng, W., Aimone, J. B., Gage, F. H. New neurons and new memories: how does adult hippocampal neurogenesis affect ....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Elektroporacja in vivoprąd migracyjny rostralnymikroskopia konfokalnaśledzenie komórekznakowanie GFPtransfekcja plazmidowadysk obrotowy