Artykuł metodologiczny

Submilisekundowe zmiany konformacyjne w białkach rozwiązane przez odchylenie wiązki fototermicznej

DOI:

10.3791/50969

18 lutego 2014

W tym artykule

Podsumowanie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tutaj opisujemy zastosowanie techniki odchylania wiązki fototermicznej w połączeniu z umieszczonym w klatce związkiem wapnia, DM-nitrofenem, do monitorowania dynamiki mikrosekund i milisekund oraz energetyki zmian strukturalnych związanych ze związkiem wapnia z neuronalnym czujnikiem wapnia, Modulatorem Antagonisty Elementu Regulatorowego.

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Odchylanie wiązki fototermicznej wraz z kalorymetrią fotoakustyczną i siatką termiczną należy do rodziny metod fototermicznych, które monitorują zmiany profilu czasowego, objętości i entalpii zmian konformacyjnych w białkach wywołanych światłem w mikrosekundowych do milisekundowych skalach czasowych, które nie są dostępne przy użyciu tradycyjnych przyrządów do zatrzymywania przepływu. Ponadto, ponieważ badane są ogólne zmiany objętości i/lub entalpii, techniki te można zastosować do białek i innych biomakrocząsteczek, które nie mają etykiety fluoroforowej i/lub chromoforowej. Do monitorowania dynamiki i energetyki zmian strukturalnych związanych z wiązaniem Ca2+ z przetwornikami wapnia, takie neuronalne czujniki wapnia, związek wapnia w sadzce, DM-nitrofen, jest używany do fotowyzwalania szybkiego (τ < 20 μs) wzrostu stężenia wolnego wapnia, a związane z tym zmiany objętości i entalpii są badane za pomocą techniki odchylania wiązki fototermicznej.

Wprowadzenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Metody fototermiczne, takie jak kalorymetria fotoakustyczna, fototermiczne odchylanie wiązki (PDB) i przejściowe siatkowanie w połączeniu z nanosekundowym wzbudzeniem laserowym, stanowią potężną alternatywę dla przejściowych spektroskopii optycznych dla czasowo-rozdzielczych badań krótkożyciowych produktów pośrednich1,2. W przeciwieństwie do technik optycznych, takich jak absorpcja przejściowa i spektroskopia w podczerwieni, które monitorują profil czasowy zmian absorpcji w otoczeniu chromoforu; Techniki fototermiczne wykrywają zależność czasową zmian ciepła/objętości i dlatego są cennymi narzędziami do badania profili czasowych optycznie "cichych" procesów. Do tej pory kalorymetria fotoakustyczna i siatka przejściowa były z powodzeniem stosowane do badania dynamiki konformacyjnej procesów fotoindukowanych, w tym dwuatomowej migracji ligandów w globinach3,4, oddziaływań ligandów z białkiem czujnika tlenu FixL5, transportu elektronów i protonów w oksydazach hemowo-miedziowych6 i fotosystemie II, a także fotoizomeryzacji w rodopsyny7 i dynamiki konformacyjnej w kryptochromie8.

Aby rozszerzyć zastosowanie technik fototermicznych do systemów biologicznych, które nie posiadają wewnętrznego chromoforu i/lub fluoroforu, technika PBD została połączona z użyciem związku w klatce, aby fotowywołać wzrost stężenia liganda/substratu w ciągu kilku mikrosekund lub szybciej, w zależności od związku w klatce. Podejście to pozwala na monitorowanie dynamiki i energetyki zmian strukturalnych związanych z wiązaniem liganda/substratu z białkami, które nie mają wewnętrznego fluoroforu lub chromoforu i w skali czasowej, która nie jest dostępna dla komercyjnych instrumentów zatrzymujących przepływ. W artykule przedstawiono zastosowanie PBD do monitorowania termodynamiki związku klatkowego, Ca2 + DM-nitrofenu, fotorozszczepienia, a także kinetyki asocjacji Ca2 + z domeną C-końcową neuronalnego czujnika wapnia Modulator Antagonisty Elementu Regulatorowego (DREAM). Ca2+ jest fotouwalniany z Ca2 + DM-nitrofenu w ciągu 10 μs i ponownie wiąże się z niefotolizowaną klatką o stałej czasowej ~300 μs. Z drugiej strony, w obecności apoDREAM obserwuje się dodatkową kinetykę występującą w milisekundowej skali czasowej, która odzwierciedla wiązanie liganda z białkiem. Zastosowanie PBD do badania przemian konformacyjnych w systemach biologicznych zostało w pewien sposób ograniczone ze względu na trudności instrumentalne; np. żmudne ustawienie sondy i wiązki pompy w celu uzyskania silnego i powtarzalnego sygnału PBD. Jednak skrupulatne zaprojektowanie konfiguracji oprzyrządowania, precyzyjna kontrola temperatury oraz staranne ustawienie sondy i wiązki pompy zapewniają spójny i solidny sygnał PBD, który umożliwia monitorowanie czasowo rozdzielonych zmian objętości i entalpii w szerokiej skali czasowej od 10 μs do około 200 ms. Ponadto modyfikacje procedury eksperymentalnej w celu zapewnienia wykrycia próbek i śladów odniesienia w identycznej temperaturze, składzie buforu, orientacji ogniwa optycznego, mocy lasera itp. znacznie zmniejszają błąd doświadczalny w mierzonych objętościach reakcji i entalpiach.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Przygotowanie próbki

  1. Przygotowanie próbki i wszystkie czynności związane z próbką należy przeprowadzić w ciemnym pomieszczeniu, aby zapobiec niepożądanemu wyjęciu z klatek.
  2. Rozpuścić DM-nitrofen ((1-(2-nitro-4,5-dimetoksyfenylo)-N,N,N',N',N'--tetrakis [(oksy-karbonylo)metylo]-1,2-etanodiamina) w 50 mM buforze HEPES, 100 mM KCl, pH 7,0 do końcowego stężenia 400 μM (ε350nm = 4330 M-1 cm-1 9).
  3. Dodać CaCl2 z 0,1 M roztworu podstawowego, aby uzyskać pożądany stosunek [Ca2+]:[DM-nitrofen]. W przypadku białek z asocjacją Kd dla Ca2+ większą niż 10 μM, stosunek [Ca2+]:[DM-nitrofen] wynoszący 1:1 jest preferowany, aby zapobiec wiązaniu uwolnionego foto Ca2+ z nieklatkowym DM-nitrofenem. Rzeczywiście, biorąc pod uwagę, że wartość Kd dla azotfenu DM wynosi 10 nM, a całkowite stężenie DM-nitrofenu i Ca2+ wynosi 400 mM, ~ 90% białka wiążącego wapń o Kd = 10 μM będzie znajdować się w apoformie. Z drugiej strony, w przypadku badania wiązania Ca2 + z białkami o Kd < 10 μM, lepiej jest zmniejszyć stosunek [Ca2 +] : [DM - nitrofen] do 0,95, aby zapobiec kompleksowaniu Ca2 + z białkiem apo przed fotodysocjacją klatki.
  4. Rozpuszczony jest związek odniesienia, K3[Fe(III)(CN)6] lub Na2CrO4 w tym samym buforze, co w przypadku próbki.

2. Przygotowanie eksperymentu

  1. Podstawowa konfiguracja eksperymentalna jest pokazana na rysunku 2.
  2. Użyj otworu na szpilkę (P2), aby wyregulować średnicę wiązki sondy (wyjście 632 nm lasera He-Ne, moc lasera ~5 mW) do 1 mm i rozchodzić wiązkę sondy przez środek ogniwa umieszczonego w uchwycie ogniwa o kontrolowanej temperaturze za pomocą lustra M1.
  3. Użyj lustra (M2) za próbką, aby wyśrodkować wiązkę sondy na detektorze wrażliwym na środek położenia.
  4. Skoncentruj wiązkę sondy na środku detektora w taki sposób, aby różnica napięcia między dwiema górnymi diodami i dwiema dolnymi diodami, a także różnica napięcia między dwiema diodami po lewej i prawej stronie detektora wynosiła zero.
  5. Następnie ukształtuj średnicę wiązki pompy, wyjście 355 nm lasera Nd:YAG z przełączaniem Q, FWHM 5 nsec) za pomocą otworu o średnicy 3 mm (P1) umieszczonego między dwoma lustrami laserowymi 355 nm.
  6. Rozpłynąć belkę pompy przez środek kuwety, jak pokazano na rysunku 2. Ważne jest, aby obie wiązki laserowe rozchodziły się przez środek komórki optycznej w sposób niemal współliniowy, aby uzyskać mierzalny kąt odchylenia, a tym samym wysoką amplitudę sygnału PBD. W warunkach eksperymentalnych kąt przecięcia belek sondy i pompy jest mniejszy niż 15°.
  7. Użyj związku referencyjnego, aby wyrównać sondę i wiązkę pompy, aby uzyskać zadowalający sygnał PBD, tj. dobry stosunek sygnału do szumu i stabilną amplitudę PBD w dłuższych skalach czasowych (~100 ms).
  8. Dostosuj położenie belki pompy w stosunku do wiązki sondy poprzez stopniową regulację luster laserowych 355 nm.
  9. Zmierz amplitudę sygnału referencyjnego PBD jako różnicę między dwiema górnymi i dolnymi fotodiodami na detektorze czułym na położenie. Sygnał PBD powinien wykazywać szybki wzrost amplitudy w szybkiej skali czasowej (<10 μs) i pozostawać stabilny w skali czasowej 100 ms, jak pokazano na rysunku 3. Zmienność amplitudy PDB między strzałami mieści się w granicach 5% amplitudy sygnału, a na odtwarzalność sygnału wpływają głównie drgania.
  10. Sprawdź liniowość amplitudy sygnału PBD w odniesieniu do uwolnionej energii cieplnej, mierząc liniową zależność sygnału PBD od mocy lasera wzbudzającego i od liczby pochłoniętych Einsteinów, Ea = (1-10-A), gdzie A odpowiada absorbancji odniesienia na długości fali wzbudzenia.
  11. Utrzymuj moc lasera poniżej około 1,000 μJ i absorbancję próbki/związku odniesienia przy długości fali wzbudzenia mniejszej niż 0,5, aby zapobiec odpowiednio absorpcji wielofotonowej i spadkowi mocy wiązki pompy oraz zapewnić liniowość sygnału PBD.

3. Pomiary PBD

  1. Rozpocznij od pomiaru śladów PBD dla odniesienia. Umieścić roztwór związku odniesienia w kuwetce kwarcowej o wymiarach 1,0 cm x 1,0 cm lub 1,0 cm x 0,5 cm i umieścić ogniwo w uchwycie o kontrolowanej temperaturze. Obie długości ścieżek zapewniają porównywalną amplitudę PBD.
  2. Wykrywać referencyjny sygnał PBD w funkcji temperatury w zakresie temperatur od 16 do 35 °C ze wzrostem temperatury o 3 °C.
  3. Przy każdej zmianie temperatury sprawdź położenie wiązki sondy na detektorze czułym na położenie i w razie potrzeby ponownie dostosuj pozycję do środka detektora.
  4. Sprawdź liniowość sygnału PBD w funkcji składnika [(dn/dt)/Cpρ] zgodnie z równaniem 2.
  5. Umieścić roztwór próbki w tej samej celi optycznej, co w przypadku związku odniesienia, zachowując tę samą orientację celi optycznej, co w przypadku pomiaru referencyjnego.
  6. Wykryć ślady PBD próbki w tym samym zakresie temperatur, co dla wzorca i sprawdzić liniowość amplitudy PBD próbki w odniesieniu do składnika [(dn/dt)/Cpρ].

4. Analiza danych

Wielkość ugięcia jest wprost proporcjonalna do zmiany objętości spowodowanej nagrzewaniem próbki (ΔVth) i nietermicznej zmiany objętości (ΔVnonth) zgodnie z równaniem 1:
figure-protocol-1
Amplitudę próbki (A, S) i sygnał odniesienia (Ar) PBD można opisać za pomocą równań odpowiednio 2 i 3.
figure-protocol-2

figure-protocol-3

Sygnał PBD jest wprost proporcjonalny do parametru odpowiedzi instrumentu (K) i liczby wchłoniętych Einsteinów (Ea). Pierwszy składnik równania 2, (dn/dt)(1/ρCp)Q, odpowiada zmianie sygnału spowodowanej ciepłem uwolnionym do rozpuszczalnika. Składnik dn/dt reprezentuje zależną od temperatury zmianę współczynnika załamania, ρ to gęstość rozpuszczalnika, Cp to pojemność cieplna. Wszystkie parametry są znane dla wody destylowanej i można je określić dla roztworu buforowego, porównując sygnał PBD dla związku odniesienia w wodzie destylowanej i w odpowiednim buforze. Q jest ilością ciepła zwróconego do rozpuszczalnika. Człon ρ (dn/d ρ ) jest stałą bezjednostkową, która jest niezależna od temperatury w zakresie temperatur od 10-40 °C 10. Termin Δnabs odpowiada zmianie współczynnika załamania światła spowodowanej obecnością związków absorbujących w roztworze i jest nieistotny, jeśli długość fali wiązki sondy jest przesunięta względem widm absorpcyjnych dowolnego rodzaju w roztworze. Sygnał powstający ze związku odniesienia (Ar) jest wyrażony równaniem 3, gdzie Ehν jest energią fotonu o długości fali wzbudzenia, Ehν = 80,5 kcal/mol dla wzbudzenia 355 nm.

  1. Przyjmij amplitudę referencyjnego sygnału PBD jako różnicę między sygnałem PBD przed i po wyzwoleniu, jak pokazano na rysunku 3. W podobny sposób określ amplitudę szybkiej (As fast) i wolnej fazy (Aswolno) próbki sygnału PBD.
  2. Aby wyeliminować parametr odpowiedzi przyrządu, K, przeskaluj amplitudę sygnału PBD próbki przez amplitudę sygnału PBD dla odniesienia. Stosunek sygnału próbki do sygnału odniesienia daje równanie 4 i można go zapisać jako:
    figure-protocol-4
  3. Korzystając z tego równania, określ ciepło uwolnione do roztworu (Q) i nietermiczną zmianę objętości (ΔVnonth) związaną z reakcją zainicjowaną światłem ze zbocza i przecięcie, odpowiednio, wykresu terminu [(As/Ar) Ehν] w zależności od temperatury składnika [(dn/dt)(1/ρCp)].
  4. Aby określić objętość reakcji i zmianę entalpii dla procesu szybkiego i wolnego, przeskaluj obserwowaną objętość i zmianę entalpii do odpowiedniej wydajności kwantowej zgodnie z równaniami 5-7.
    figure-protocol-5

    figure-protocol-6

    figure-protocol-7

    Dla procesu wieloetapowego, w którym kinetyka zachodzi w skali czasowej między 10 μsec~200 ms, można określić zmiany objętości i entalpii związane z poszczególnymi etapami reakcji. Amplitudy i czasy życia dla poszczególnych kroków są analizowane poprzez dopasowanie danych do funkcji F(t), która opisuje profil czasowy zmian objętości i entalpii.
    figure-protocol-8
    gdzie α0 odpowiada szybkiemu A,a α i odpowiada wolnemu As dla każdego pojedynczego procesu, a τ i oznacza czas życia poszczególnych etapów reakcji. Na podstawie zależności od temperatury stałej szybkości dla poszczególnych procesów (ki = 1/τi) parametry entalpii aktywacji i entropii można łatwo określić za pomocą wykresów Eyringa.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Reprezentatywny przykład śladów PBD dla fotouwalniania Ca2+ z Ca2+DM-nitrofenu jest pokazany na rysunku 3. Faza szybka odpowiada fotorozszczepieniu Ca2 + DM - nitrofenu i uwolnieniu Ca2 +, podczas gdy faza wolna odzwierciedla wiązanie Ca2 + z klatką niefotolizowaną. Wykres amplitudy PBD próbki dla fazy szybkiej i wolnej przeskalowany do amplitudy związku odniesienia w funkcji współczynnika zależnego od temperatury [C,p, ρ/(dn/dt)], współcz...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zasada fizyczna metod fototermicznych polega na tym, że fotowzbudzona cząsteczka rozprasza nadmiar energii poprzez relaksację wibracyjną do stanu podstawowego, co powoduje termiczne podgrzanie otaczającego rozpuszczalnika1,12. W przypadku rozpuszczalników, takich jak woda, powoduje to szybkie rozszerzanie objętości (ΔVth). Cząsteczki w stanie wzbudzonym mogą również ulegać procesom fotochemicznym, które powodują nietermiczne zmiany objętości (ΔVnonth) z powodu rozszczepienia/tworzenia wią...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca była wspierana przez National Science Foundation (MCB 1021831, JM) oraz J. & E. Biomedical Research Program (Departament Zdrowia Florydy, JM).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
1-(4,5-dimetoksy-2-nitrofenylo)-1,2-diaminoetan-N,N,N',N' -Tetraoctowy kwasLife TechnologiesD-6814DM-nitrofen, klatkowy związek wapnia, roztwory podstawowe należy przechowywać w ciemności, aby zapobiec fotodysocjacji
Kwas 4-(2-hydroksyetylo)piperazyno-1-etanosulfonowy, N-(2-hydroksyetylo)piperazyna-N′ -(kwas 2-etanosulfonowy)Sigma Adrich0909CBufor HEPES
Żelazocyjanek potasu (III)Sigma Aldrich702587związek referencyjny do pomiarów PBD
Chromian soduSigma Aldrich307831związek referencyjny do pomiarów PBD
Dioda laserowa He-Ne 5 mW 635 nmEdmund Optics54-179zastosowanie jako wiązka sondy do pomiarów PBD
Oscyloskop, LeCroyWave Surfer 42Xs400 MHz pasmo
laserem Nd:YAGContinuumML IIwiązka pompy do pomiarów PBD
M355; Lustro laserowe Nd:YAGlaserowe Edmund Optics47-324do linii laserowej 355 nm
M1 i M2; Lustro diody laserowejEdmund Optics43-532wijące płaskie zwierciadło laserowe, zakres długości fal 300-700 nm
P1 i P2; Przysłona irysowaEdmund Optics62-649otwór na pin do kształtowania sondy i wiązki pum
L1; soczewka dwuwypukłaThorlabsLB1844soczewka do ogniskowania wiązki sondy na detektorze, EFL 50 mm, zakres długości fal 350-2,000 nm
DM, zwierciadło dichroiczneThorlabsDMLP505długoprzepustowe zwierciadło dichroiczne o długości fali granicznej 505 nm
F1; Filtr krawędziowyAndower500FH90-25filtr długoprzepustowy o długości fali granicznej 500 nm
Uchwyt kuwety z kontrolowaną temperaturąQuantum NorthwestFLASH 300 
z Zwierciadło

Bibliografia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Gensch, T., Viappiani, C. Time-resolved photothermal methods: accessing time-resolved thermodynamics of photoinduced processes in chemistry and biology. Photochem. Photobiol. Sci. 2, 699-721 (2003).
  2. Larsen, R. W., Mikšovská, J. Time resolved thermodynamics of ligand binding to heme proteins. Coord. Chem. Rev. 251 (9-10), 1101-1127 (2007).
  3. Westrick, J. A., Peters, K. S. A photoacoustic calorimetric study of horse myoglobin. Bioph. Chem. 37 (1-3), 73-79 (1990).
  4. Belogortseva, N., Rubio, M., Terrell, W., Miksovska, J. The contribution of heme propionate groups to the conformational dynamics associated with CO photodissociation from horse heart myoglobin. J. Inorg. Biochem. 101 (7), 977-986 (2007).
  5. Mikšovská, J., Suquet, C., Satterlee, J. D., Larsen, R. W. Characterization of Conformational Changes Coupled to Ligand Photodissociation from the Heme Binding Domain of FixL. Biochemistry. 44 (30), 10028-10036 (2005).
  6. Miksovska, J., Gennis, R. B., Larsen, R. W. Photothermal studies of CO photodissociation from mixed valence Escherichia coli cytochrome bo3. FEBS Lett. 579 (14), 3014-3018 (2005).
  7. Losi, A., Michler, I., Gärtner, W., Braslavsky, S. E. Time-resolved Thermodynamic Changes Photoinduced in 5,12-trans-locked Bacteriorhodopsin. Evidence that Retinal Isomerization is Required for Protein Activation. Photochem. Photobiol. 72, 590-597 (2000).
  8. Kondoh, M., et al. Light-Induced Conformational Changes in Full-Length Arabidopsis thaliana Cryptochrome. J. Mol. Biol. 413 (1), 128-137 (2011).
  9. Kaplan, J. H., Ellis-Davies, G. C. Photolabile chelators for the rapid photorelease of divalent cations. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 85 (17), 6571-6575 (1988).
  10. Eisenberg, H. Equation for the Refractive Index of Water. J. Chem. Phys. 43 (11), 3887-3892 (1965).
  11. Ellis-Davies, G. C., Kaplan, J. H., Barsotti, R. J. Laser photolysis of caged calcium: rates of calcium release by nitrophenyl-EGTA and DM-nitrophen. Biophys. J. 70, 1006-1016 (1996).
  12. Miksovska, J., Larsen, R. W. Structure-function relationships in metalloproteins. Methods Enzymol. 360, 302-329 (2003).
  13. Miksovska, J., Norstrom, J., Larsen, R. W. Thermodynamic profiles for CO photodissociation from heme model compounds: effect of proximal ligands. Inorg. Chem. 44 (4), 1006-1014 (2005).
  14. Dhulipala, G., Rubio, M., Michael, K., Miksovska, J. Thermodynamic profile for urea photo-release from a N-(2-nitrobenzyl) caged urea compound. Photochem. Photobiol. Sci. 8, 1157-1163 (2009).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Photothermal Beam DeflectionSubmillisecond Conformational ChangesCalcium Binding KineticsProtein Volume ChangesEnthalpy Change MeasurementCaged Calcium CompoundPosition Sensitive DetectorTemperature Dependent AnalysisReaction Volume DeterminationThermodynamic Parameter Analysis

Powiązane artykuły