$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Metody fototermiczne, takie jak kalorymetria fotoakustyczna, fototermiczne odchylanie wiązki (PDB) i przejściowe siatkowanie w połączeniu z nanosekundowym wzbudzeniem laserowym, stanowią potężną alternatywę dla przejściowych spektroskopii optycznych dla czasowo-rozdzielczych badań krótkożyciowych produktów pośrednich1,2. W przeciwieństwie do technik optycznych, takich jak absorpcja przejściowa i spektroskopia w podczerwieni, które monitorują profil czasowy zmian absorpcji w otoczeniu chromoforu; Techniki fototermiczne wykrywają zależność czasową zmian ciepła/objętości i dlatego są cennymi narzędziami do badania profili czasowych optycznie "cichych" procesów. Do tej pory kalorymetria fotoakustyczna i siatka przejściowa były z powodzeniem stosowane do badania dynamiki konformacyjnej procesów fotoindukowanych, w tym dwuatomowej migracji ligandów w globinach3,4, oddziaływań ligandów z białkiem czujnika tlenu FixL5, transportu elektronów i protonów w oksydazach hemowo-miedziowych6 i fotosystemie II, a także fotoizomeryzacji w rodopsyny7 i dynamiki konformacyjnej w kryptochromie8.
Aby rozszerzyć zastosowanie technik fototermicznych do systemów biologicznych, które nie posiadają wewnętrznego chromoforu i/lub fluoroforu, technika PBD została połączona z użyciem związku w klatce, aby fotowywołać wzrost stężenia liganda/substratu w ciągu kilku mikrosekund lub szybciej, w zależności od związku w klatce. Podejście to pozwala na monitorowanie dynamiki i energetyki zmian strukturalnych związanych z wiązaniem liganda/substratu z białkami, które nie mają wewnętrznego fluoroforu lub chromoforu i w skali czasowej, która nie jest dostępna dla komercyjnych instrumentów zatrzymujących przepływ. W artykule przedstawiono zastosowanie PBD do monitorowania termodynamiki związku klatkowego, Ca2 + DM-nitrofenu, fotorozszczepienia, a także kinetyki asocjacji Ca2 + z domeną C-końcową neuronalnego czujnika wapnia Modulator Antagonisty Elementu Regulatorowego (DREAM). Ca2+ jest fotouwalniany z Ca2 + DM-nitrofenu w ciągu 10 μs i ponownie wiąże się z niefotolizowaną klatką o stałej czasowej ~300 μs. Z drugiej strony, w obecności apoDREAM obserwuje się dodatkową kinetykę występującą w milisekundowej skali czasowej, która odzwierciedla wiązanie liganda z białkiem. Zastosowanie PBD do badania przemian konformacyjnych w systemach biologicznych zostało w pewien sposób ograniczone ze względu na trudności instrumentalne; np. żmudne ustawienie sondy i wiązki pompy w celu uzyskania silnego i powtarzalnego sygnału PBD. Jednak skrupulatne zaprojektowanie konfiguracji oprzyrządowania, precyzyjna kontrola temperatury oraz staranne ustawienie sondy i wiązki pompy zapewniają spójny i solidny sygnał PBD, który umożliwia monitorowanie czasowo rozdzielonych zmian objętości i entalpii w szerokiej skali czasowej od 10 μs do około 200 ms. Ponadto modyfikacje procedury eksperymentalnej w celu zapewnienia wykrycia próbek i śladów odniesienia w identycznej temperaturze, składzie buforu, orientacji ogniwa optycznego, mocy lasera itp. znacznie zmniejszają błąd doświadczalny w mierzonych objętościach reakcji i entalpiach.