Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Ulepszona metoda przygotowania kolagenu typu I ze skóry

22.6K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/51011

⸱

21 stycznia 2014

W tym artykule

Podsumowanie

Tradycyjne procedury izolacji rozpuszczalnego kolagenu typu 1 (COL1) wymagają około 10 dni od początku do końca ze względu na długie inkubacje buforowe i pracochłonne zawieszanie włókienek. Tutaj opisujemy sposób oczyszczania COL1 z małych biopsji skóry w mniej niż 3 godziny.

Streszczenie

Rozpuszczalny kolagen typu 1 (COL1) jest szeroko stosowany jako substrat adhezyjny dla kultur komórkowych oraz jako rusztowanie komórkowe do zastosowań regeneracyjnych. Klinicznie białko to jest szeroko stosowane w chirurgii plastycznej, iniekcjach skórnych, przeszczepach kostnych i chirurgii rekonstrukcyjnej. Źródła COL1 w tych procedurach są zwykle nieludzkie, co zwiększa ryzyko zapalenia i odrzucenia, a także przenoszenia chorób ksenobiotycznych. W związku z tym metoda skutecznego i szybkiego oczyszczania COL1 z ograniczonych ilości tkanek pochodzących autologicznie pozwoliłaby obejść wiele z tych problemów; Jednak standardowe protokoły izolacji są długotrwałe i często wymagają dużych ilości tkanek kolagenowych. Tutaj demonstrujemy skuteczną metodę ekstrakcji COL1, która skraca czas potrzebny do wyizolowania i oczyszczenia tego białka z około 10 dni do mniej niż 3 godzin. Wybraliśmy skórę właściwą jako źródło tkanek ze względu na jej dostępność podczas wielu zabiegów chirurgicznych. Metoda ta wykorzystuje tradycyjne ekstrakcyjne w połączeniu z wymuszonym mieszaniem i filtracją odśrodkową w celu uzyskania wysoce czystego, rozpuszczalnego COL1 z niewielkich ilości korium. Krótko mówiąc, biopsje skóry są dokładnie myte w lodowatym dH2O po usunięciu tłuszczu, tkanki łącznej i włosów. Próbki skóry są pozbawiane niekolagenowych białek i polisacharydów za pomocą 0,5 M octanu sodu i wysokoobrotowego homogenizatora laboratoryjnego. Kolagen z pozostałości ciał stałych jest następnie ekstrahowany za pomocą 0,075 M buforu cytrynianu sodu za pomocą homogenizatora. Ekstrakty te są oczyszczane przy użyciu filtrów odśrodkowych o mocy 100 000 MW, które dają preparaty COL1 o jakości porównywalnej lub wyższej do produktów komercyjnych lub otrzymywanych przy użyciu tradycyjnych procedur. Przewidujemy, że ta metoda ułatwi wykorzystanie autologicznie pochodzącego COL1 do wielu zastosowań badawczych i klinicznych.

Wprowadzenie

Przez dziesięciolecia, badacze i komercyjni sprzedawcy izolowali rozpuszczony COL1 z różnych źródeł tkanek, w tym skóry i ścięgien, używając pewnej odmiany prostego protokołu ekstrakcji kwasem, po którym następuje neutralizacja, co skutkuje ponownym zawieszeniem matrycy zorganizowanych włókienek COL1, które mogą być używane do wielu zastosowań biomedycznych 1-4Chociaż istnieje wiele przykładów klinicznych zastosowań COL1, niewiele z nich wykorzystuje autologicznie uzyskany COL1, ponieważ przygotowanie tego białka wymaga długich ekstrakcji trwających dni lub tygodnie, aby przeprowadzić5-7. W rezultacie, badacze i lekarze na ogół używają drogich, k....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Tutaj pokażemy izolację COL1 ze skóry jagnięcej. Jak napisano, ten protokół może być również wykorzystany do skutecznego izolowania COL1 ze skóry królika i człowieka.

1. Przygotuj próbkę skórną

  1. Przed użyciem zrównoważyć wszystkie odczynniki do 4 °C.
  2. Spłucz próbkę skórną (25-50 g) w lodowatym dH2O i usuń wełnę, sierść lub włosy kremem do depilacji.
  3. Użyj jednoostrzowej żyletki, aby zeskrobać próbkę z tkanki łącznej i tłuszczu.
  4. Przepłukać próbkę w lodowatym dH2O.
  5. Pokrój próbkę skóry na kawałki o wymiarach 1 cm x 1 cm za pomocą jednoostrzowej żyletki.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Niniejszy protokół izolacji COL1 wymaga około 2 hr i 15 min do ukończenia. Rysunek 1 przedstawia schemat obrazujący główne etapy tej procedury. Przygotowanie próbki oraz przeprowadzenie 7 cykli szybkich wytrząsów i płukania octanem sodu zajmuje około 35 min (Rysunki 1A-C). Przeprowadzenie jednego cyklu wytrząsania i płukania dH2O zajmuje około 5 min (Rysunki 1D i 1E). Dodanie cytrynianu sodu i poddanie próbki jednemu cyklowi wytrząsania i płukania, a następnie.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Kluczowym elementem tej metody jest wielokrotne skuteczne ściskanie próbki skórnej w celu usunięcia nadmiaru płynu. Bardzo ważne jest, aby usunąć jak najwięcej octanu sodu w kroku 2.5 poprzez ściskanie próbki. Używamy szpatułki, aby zagęścić skórę przy boku tubki; Można jednak również użyć gazy, chociaż wymagałoby to usunięcia próbki z probówki i wydłużyłoby czas potrzebny na wykonanie tych czynności. Podobnie ważne jest, aby skompresować próbkę w kroku 3.1, tak aby objętość cytrynianu sodu była dokładna w kolejnych etap.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają żadnych konkurencyjnych interesów finansowych do ujawnienia.

Podziękowania

Ta praca była wspierana przez grant badawczy z National Institutes of Health (HL068915 do DBC), New Researcher Award z Thrasher Research Fund (do CAP), Grant-in-Aid od American Heart Association (12GRNT11910008 do DBC), grant badawczy od Children's Heart Foundation (do DBC) oraz darowizny na rzecz Boston Children's Hospital Cardiac Conduction Fund, Ryan Family Endowment oraz przez Davida Pullmana.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
FastPrep-24 SystemMP Biomedicals116004500
WirówkaBeckmanJ6-MIObrotowy wirnik kubełkowy do przechowywania stożkowych probówek o pojemności 50 ml o pojemności 3,200 x g.

Bibliografia

  1. Nageotte, J. Coagulation fibrillaire in vitro du collagène dissous dans un acide dilué. CR hebd. séances Acad. Sei. 184, 115 (1927).
  2. Schmitt, F. O., Hall, C. E., Jakus, M. A. Electron microscope investigation of the structure of collagen. <....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Kolagen typu Ipróbka skóryoctan soducytrynian sodufiltracja odśrodkowahomogenizator laboratoryjnyekstrakcja kolagenuprzygotowanie tkankioczyszczanie białekpróg odcięcia masy cząsteczkowej