Artykuł metodologiczny

Wykonanie i wizualizacja mostków kapilarnych w geometrii porów szczelinowych

DOI:

10.3791/51143

⸱

9 stycznia 2014

 , 
1Chemical and Biomolecular Engineering Department, Johns Hopkins University

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Przedstawiono procedurę tworzenia i obrazowania mostków kapilarnych w geometrii szczelinowo-porowej. Tworzenie mostków kapilarnych polega na tworzeniu filarów w celu zapewnienia kierunkowej niejednorodności fizycznej i chemicznej w celu przypięcia płynu. Mostki kapilarne są formowane i manipulowane za pomocą mikroetapów i wizualizowane za pomocą kamery CCD.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Przedstawiono procedurę tworzenia i obrazowania mostków kapilarnych w geometrii szczelinowo-porowej. Filary hydrofobowe o wysokim współczynniku kształtu są wytwarzane i funkcjonalizowane tak, aby ich górne powierzchnie były hydrofilowe. Połączenie cechy fizycznej (filaru) z granicą chemiczną (film hydrofilowy na szczycie filaru) zapewnia zarówno fizyczną, jak i chemiczną niejednorodność, która łączy potrójną linię jezdną, co jest cechą niezbędną do tworzenia stabilnych, długich, ale wąskich mostków kapilarnych. Podłoża wraz z filarami są przymocowane do szkiełek szklanych i przymocowane do niestandardowych uchwytów. Uchwyty są następnie montowane na czterech mikrostopniach osiowych i ustawiane tak, aby słupki były równoległe i zwrócone do siebie. Mostki kapilarne są tworzone przez wprowadzenie płynu do szczeliny między dwoma podłożami po zmniejszeniu odległości między filarami licowymi do kilkuset mikrometrów. Niestandardowy mikrostopień jest następnie wykorzystywany do zmiany wysokości mostu kapilarnego. Kamera CCD jest ustawiona tak, aby obrazować długość lub szerokość mostka kapilarnego w celu scharakteryzowania morfologii interfejsu płynu. Tą metodą wykonano słupy o szerokości do 250 μm i długości do 70 mm, co doprowadziło do powstania mostków kapilarnych o proporcjach (długość/szerokość) ponad 1001.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Badanie kształtu i wynikających z niego sił powodowanych przez mostki kapilarne było przedmiotem obszernych badań2-7. Początkowo najwięcej prac skupiało się, ze względu na ich prostotę, na osiowosymetrycznych mostach kapilarnych. Często mostki kapilarne występujące w układach naturalnych, takie jak te występujące w podłożach ziarnistych i porowatych8,9 oraz mostki stosowane w zastosowaniach technologicznych, takich jak samoorganizacja kapilarna w technologiach flip chip10-15 są asymetryczne o niejednorodnych właściwościach zwilżających na współpracujących powierzchniach. Połączenie ulepszonych technik litografii wraz z dostępnością prostych narzędzi numerycznych do modelowania interfejsów płynów pozwala na tworzenie i modelowanie mostków kapilarnych o coraz większej złożoności.

Mostki kapilarne w geometrii szczelinowo-porowej oferują interesujący kompromis: kierunkowe właściwości zwilżania prowadzą do mostków niesymetrycznych osiowo, które zachowują pewne płaszczyzny symetrii (co upraszcza analizę). Zostały one przebadane teoretycznie i numerycznie jako studium przypadku dla ośrodków porowatych. Systematyczne badania eksperymentalne mostków kapilarnych w geometrii szczelinowo-porowej są jednak ograniczone. W niniejszej pracy przedstawiamy metodę tworzenia i charakteryzowania mostków kapilarnych w geometrii porów szczelinowych. Krótko mówiąc, metoda składa się z 1) wytworzenia filarów w celu stworzenia chemicznej i fizycznej niejednorodności, 2) zaprojektowania mikroetapu do wyrównania i manipulowania mostami oraz 3) obrazowania mostów kapilarnych z przodu lub z boków w celu scharakteryzowania ich morfologii. Charakterystyka morfologii mostu wraz z porównaniami z symulacjami ewolutorów powierzchniowych znajduje się w osobnej publikacji1.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tekst protokołu jest podzielony na trzy główne sekcje: 1) produkcja filarów PDMS (polidimetylosiloksan), 2) funkcjonalizacja wierzchołków filarów, oraz 3) tworzenie i charakterystyka mostków kapilarnych.

1. Produkcja filarów PDMS

Ta sekcja szczegółowo opisuje produkcję filarów PDMS przy użyciu odlewu ciśnieniowego z formą silikonową/SU-8.

  1. Produkcja formy silikonowej / SU-8
    1. Umieść czyste 4 w wafli krzemowej na szalce Petriego Pyrex.
    2. Przygotować roztwór kwasu siarkowego z nadtlenkiem wodoru (piranii) w proporcji 4:1 (objętościowo) w oddzielnej zlewce.
      Uwaga: Należy zachować szczególną ostrożność podczas przygotowywania i stosowania roztworu piranii. Reakcja jest wysoce egzotermiczna, a do obsługi zlewek wymagane będą izolowane rękawice. Pirania gwałtownie reaguje z substancjami organicznymi. Pozostaw roztwór piranii do ostygnięcia do temperatury pokojowej przed wylaniem. Przygotuj tylko tyle roztworu, ile potrzeba, aby zanurzyć wafel w naczyniu.
    3. Powoli wlewaj roztwór piranii na płytkę krzemową, aż zostanie całkowicie zanurzony. Odstaw na 15 minut.
    4. Wyjmij wafel z szalki Petriego i płucz pod strumieniem: wody dejonizowanej (DI) przez 2 minuty, etanolu przez 30 sekund, acetonu przez 30 sekund, a następnie suszyć azotem.
      Uwaga: Jeśli pozostałości acetonu stanowią problem, zaleca się dodatkowe płukanie alkoholem izopropylowym
    5. Suszyć wafel na gorącej płycie w temperaturze 150 °C przez 15 minut.
    6. Zdejmij z płyty grzejnej i ostudź do temperatury pokojowej.
    7. Wirować warstwę SU-8 2002 na powierzchni płytki przez 40 sekund z prędkością 500 obr./min.
    8. Odwiruj warstwę SU-8 2050 na płytce za pomocą dwuetapowego programu do powlekania wirowego. Krok 1: 40 sekund przy 500 obr./min. Krok 2: 1 min przy 1 500 obr./min.
    9. Wyjmij wafel z wirówki i umieść na rozgrzanej płycie grzejnej (65 °C) na 10 minut.
    10. Pozostaw do ostygnięcia do temperatury pokojowej, a następnie umieść maskę na wafli.
    11. Umieść pod lampą ultrafioletową i naświetlaj na 30 sekund przy 200 watach.
    12. Zdejmij maskę i umieść wafel na rozgrzanej płycie grzejnej (95 °C) na 10 minut.
    13. Umieścić w roztworze wywoływacza SU-8 i lekko mieszać, aż wszystkie nienaświetlone SU-8 zostaną usunięte. Następnie płucz w strumieniu alkoholu izopropylowego przez 30 sekund, wysusz suszarką azotem.
    14. Umieść na rozgrzanej płycie grzejnej (95 °C) na 30 minut, aby uzyskać końcowe pieczenie na twardo.
  2. Odlewanie ciśnieniowe filarów PDMS
    1. Energicznie wymieszać w zlewce stosunek masowy PDMS sylgard-184 do utwardzacza w stosunku masowym.
    2. Odgazuj PDMS w komorze próżniowej, aż wszystkie pęcherzyki znikną.
    3. Umieść formę wykonaną w sekcji 1.1 w dużym plastikowym naczyniu wagowym o średnicy 4 cali i wlej PDMS.
    4. Umieść naczynie z PDMS i uformuj z powrotem w komorze próżniowej. Odgazowuje ponownie, aż wszystkie bąbelki znikną.
    5. Umieść całe danie w piekarniku (nagrzanym do 75 °C) na co najmniej 2 godziny. Następnie ostudź do temperatury pokojowej.
    6. Odetnij naczynie od PDMS, a PDMS od wafla silikonowego za pomocą prostej żyletki.
    7. Wytnij obszar PDMS z filarami z masy i przechowuj na czystej szalce Petriego.

2. Funkcjonalizacja wierzchołków filarów

Ten trzyetapowy proces obejmuje najpierw odparowanie złotej warstwy na płytce krzemowej, następnie litografię transferową16 złotej warstwy na filary PDMS (wytworzone w sekcji 1), a na końcu funkcjonalizację złotej warstwy za pomocą samoorganizującej się monowarstwy w celu nadania jej hydrofilowości.

  1. Wytwarzanie złota na płytkach krzemowych do litografii transferowej odcisku
    1. Użyj noża do szkła, aby pokroić w kostkę okrągłą płytkę krzemową o średnicy 4 cali na 4 równe kawałki. Uwaga: Wafle można czyścić za pomocą kroków 1.1.2-1.1.4 i ponownie użyć.
    2. Odparuj 20 nm złota bezpośrednio na płytkę krzemową.
    3. Pozostawić wafel w komorze parowania (lub w eksykatorze) do momentu zakończenia sekcji 3 poniżej. Dzięki temu wafel będzie tak czysty, jak to tylko możliwe.
    4. Przygotować roztwór 8 μl:20 ml (3-merkaptopropylo)-trimetoksysilanu (MPTS) : toluenu w czystej szklanej fiolce.
    5. Przygotować 200 ml 16 mM kwasu solnego (HCl) w czystej zlewce.
    6. Umieść płytkę ze złotą folią w reaktorze plazmowym.
    7. Wyczyść płytkę za pomocą plazmy tlenowej pod ciśnieniem 300 mTorr, mocy 50 W przez 10 min.
      Uwaga: Do tej procedury użyto domowego reaktora plazmowego.
    8. Umieść wafel na szalce Petriego Pyrex pełnej 200-procentowego etanolu na co najmniej 10 minut.
      Uwaga: Ten krok ma na celu usunięcie wszelkich niestabilnych tlenków, które tworzą się na złocie z powodu plazmy tlenowej.
    9. Opłucz wafel etanolem, a następnie wysusz go azotem.
    10. Wirować roztwór MPTS na płytce z prędkością 500 obr./min przez 30 sekund, a następnie 2,750 obr./min przez 1 min.
      Uwaga: MPTS jest stosowany jako warstwa adhezyjna między PDMS a złotą warstwą16.
    11. Zdejmij wafel z powlekarki wirowej i spłucz pod strumieniem etanolu. Następnie spłucz wodą DI i wysusz suszarką z azotem.
      Uwaga: Spłucz delikatnie, aby uniknąć złuszczania się warstwy złota z płytki krzemowej.
    12. Umieść wafel na szalce Petriego Pyrex, która zawiera wystarczającą ilość 16 mM roztworu HCl, aby całkowicie zanurzyć wafel. Pozostawić w HCl na co najmniej 5 min.
      Uwaga: Delikatnie umieścić w roztworze, aby zapobiec złuszczaniu się złota.
      Uwaga: Ma to na celu poprawę przyczepności między PDMS a warstwązłota 16.
    13. Wyjmij wafel z roztworu HCl i wysusz go suszarką z azotem.
      Uwaga: wafle należy zużywać nie później niż 15-20 minut po zakończeniu tego kroku.
  2. Litografia transferowa odcisku złota z płytki do filarów PDMS
    1. Przygotuj jedno szkiełko o wymiarach 25 mm x 75 mm dla każdej próbki PDMS, spłukując ją etanolem, wodą demineralizowaną i susząc azotem.
    2. Umieść filary PDMS w komorze plazmowej i wykonaj plazmę tlenową pod ciśnieniem 300 mTorr i mocą 50 W przez 30 sek.
      Uwaga: nadmierna ekspozycja PDMS na plazmę tlenową spowoduje pękanie. Dostosuj odpowiednio warunki plazmy.
    3. Przymocuj tylną część podłoży PDMS do czystych szkiełek podstawowych, wywierając na nie lekki nacisk. Szklany suwak ułatwia manipulowanie słupami PDMS oraz montaż na urządzeniu opisanym w kroku 3.
    4. Odwróć szklane podłoża PDMS i dociśnij filary do złotych folii funkcjonalizowanych przez MPTS (krok 2.1). Początkowo należy wywierać umiarkowany nacisk, a następnie obciążyć szkiełko (około 100 g), aby zapewnić kontakt konforemny.
    5. Pozostawić podłoże w kontakcie z płytką krzemową na co najmniej 12 godzin.
    6. Oddziel podłoże PDMS od płytki. Jeśli podłoże PDMS utknęło, użyj prostej żyletki, aby ostrożnie podważyć krawędź PDMS z płytki.
    7. W tym momencie na szczycie słupków PDMS powinna znajdować się jednolita złota folia. Użyj mikroskopu optycznego, aby sprawdzić, czy złota warstwa nie jest pęknięta lub czy wzdłuż słupka nie brakuje żadnych części.
  3. Funkcjonalizacja złota na szczycie filarów PDMS
    1. Przygotuj wystarczającą ilość 1 mM kwasu merkaptoheksadekanowego (MHA) w dimetylosulfotlenku (DMSO), aby całkowicie zanurzyć złoto na filarach PDMS.
      Uwaga: DMSO jest używany ze względu na niski współczynnik pęcznienia PDMS17.
    2. Umieść substraty PDMS w roztworze MHA i przechowuj je tam przez co najmniej 24 godziny.
    3. Usuń podłoże z roztworu MHA i spłucz wodą DI, a następnie wysusz azotem.
    4. Umieścić w komorze próżniowej (ciśnienie < 100 mTorr w temperaturze 25 °C) na co najmniej 12 godzin.

Uwaga: Aby sprawdzić, czy proces funkcjonalizacji się powiódł, można wykonać krok 2 na masowym kawałku PDMS (bez filarów), a kąt zwilżania można przetestować w goniometrze. Złote folie MHA powinny mieć kąty zwilżania wody wynoszące odpowiednio <15° i ~0°. Rozdział 18

3. Powstawanie i charakterystyka mostków kapilarnych

Ta sekcja szczegółowo opisuje, jak można wprowadzić płynny mostek między dwoma podłożami, a następnie scharakteryzować go poprzez obrazowanie na różnych wysokościach i objętościach płynu.

  1. Używając dwóch podłoży filarowych (wykonanych w krokach 1-2), umieść jeden w górnych, a drugi w dolnych uchwytach. Zabezpiecz podłoża za pomocą bocznych napinających.
    Uwaga: patrz rysunek 1 i reprezentatywne wyniki, aby uzyskać szczegółowe informacje na temat urządzenia.
  2. Zmontuj urządzenie, mocując górny stopień podłoża do płytki stykowej tak, aby górne podłoże znajdowało się mniej więcej nad dolnym podłożem. Zmniejsz wysokość między dwoma przeciwległymi filarami do około 1 mm.
  3. Wyrównanie zgrubne: za pomocą pokręteł x, y i obrotu na dolnym stoliku podłoża wyrównaj (na oko) złote paski dwóch podłoży tak, aby były równoległe (patrząc z góry na dół przez górne podłoże).
  4. Precyzyjne wyrównanie: ustaw kamerę tak, aby patrzyła w dół wzdłuż słupka PDMS. Korzystając z obrazu z kamery na żywo na ekranie komputera, dostosuj położenie dolnego podłoża tak, aby filary były równoległe.
  5. Przesuń aparat na przeciwną stronę urządzenia i powtórz krok 3.4.
  6. Zmniejsz odległość między dwoma filarami, aż górny słupek zetknie się z dolnym słupkiem (za pomocą obrazu na żywo z kamery). Wyzeruj cyfrową mikroscenę. Zostanie to zdefiniowane jako wysokość porów równa zero.
  7. Zwiększ wysokość porów do około 200 μm.
  8. Przygotuj strzykawkę z 1-5 μl 80% roztworu glicerolu i 20% wody. Przymocować igłę 30 G do końca strzykawki, upewniając się, że wewnątrz igły nie dostały się pęcherzyki powietrza.
    Uwaga: mieszanina wody i glicerolu służy do zmniejszenia parowania podczas eksperymentu. Można również korzystać z wody.
  9. Zamontować strzykawkę do stolika translacyjnego strzykawki xyz za pomocą mechanicznego zacisku.
  10. Wyregulować mikrometry na stoliku umiejscowienia strzykawki tak, aby igła mieściła się w porze szczeliny (równolegle do długości słupków).
  11. Zmniejszyć wysokość porów szczeliny tak, aby górna i dolna powierzchnia delikatnie stykały się z igłą. Dzięki temu płyn dotknie obu powierzchni i spontanicznie utworzy mostek kapilarny.
  12. Powoli dozować płyn ze strzykawki do porów szczeliny.
  13. Użyj mikrometrów na stoliku do ustawiania strzykawki, aby usunąć igłę z porów szczelinowych.
    Uwaga: W tym momencie wysokość porów szczelinowych może być zmieniana, a mostek cieczy jest obrazowany.
    Uwaga: Zdjęcia można analizować za pomocą pakietu oprogramowania open source ImageJ.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Opis eksperymentalnego urządzenia

Eksperymentalne urządzenie można podzielić na cztery główne części: 1) górny etap substratu, 2) dolny etap substratu, 3) etap translacji xyz strzykawki/strzykawki oraz 4) kamera/optyka i uchwyt kamery. Poniżej znajdują się szczegółowe informacje na temat każdego z nich:

  1. Górny etap podłoża. Stolik do tłumaczenia cyfrowego jest przymocowany do zacisku montażowego serii P za pomocą niestandardowego złącza obrabianego maszynowo. Zacisk ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Przedstawiona tutaj metoda zapewnia sposób tworzenia mostków kapilarnych w geometrii porów szczelinowych, a także metodę obrazowania tych mostów, dzięki czemu można przeanalizować ich morfologię i porównać ją z symulacją i teorią.

Metoda ta obejmuje fizyczne relief, a także selektywne wzorcowanie chemiczne w celu uzyskania asymetrycznych właściwości zwilżających. Jeśli występuje tylko niejednorodność chemiczna, kropla cieczy pozostanie przytwierdzona do niejednorodności, dopóki kąt zwilżania n...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy są wdzięczni za wsparcie Narodowej Fundacji Nauki w ramach grantu nr. CMMI-00748094 i ONR N000141110629.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
99,999% Złoty drutKurt J. LeskerEVMAU40040
AcetonPharmco-AAPERC1107283
DimetylosulfotlenekFisherD128-500
Etanol (200 proof)Pharmco-AAPER111000200
Kwas solnyEMD HX0603-4
Nadtlenek wodoru (30%)EMDHX0635-3
Alkohol izopropylowyFisherL-13597
Kwas heksadekanowy Mercapto (90%)Sigma-Aldrich448303-1G
Merkapto-propylo-trimetoksysilan (MPTS)GelestSim6476-O-100GM
Mili-Q DI wodaMilliporeMilli-Q
Azot (gaz)Gaz powietrznyUN1066
Tlen (gaz)AirgasUN1072
Wafle krzemowe (4 cale)WRS MateriałyCC8506
SU-8 2002 (ujemny fotorezystancMicroChemSU82002
SU-8 2050 (ujemny fotorezystMicroChemSU82050
SU-8 Rozwiązanie deweloperskieMicroChemY020100 4000L1PE
Kwas siarkowyJ.T. Baker9681-03
Polidimetynosulfotlenek (PDMS)Dow CorningSylgard -184
ToluenOmnisolvTX0737-1

))

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Broesch, D. J., Frechette, J. From Concave to Convex: Capillary Bridges in Slit Pore Geometry. Langmuir. 28, 15548-15554 (2012).
  2. Orr, F. M., Scriven, L. E., Rivas, A. P. Pendular rings between solids - meniscus properties and capillary force. J. Fluid Mech. 67, 723-742 (1975).
  3. Rose, W. Volumes and surface areas of pendular rings. J. Appl. Phys. 29, 687-691 (1958).
  4. Erle, M. A., Dyson, D. C., Morrow, N. R. Liquid bridges between cylinders, in a torus, and between spheres. Aiche J. 17, 115-121 (1971).
  5. Lambert, P., Chau, A., Delchambre, A., Regnier, S. Comparison between two capillary forces models. Langmuir. 24, 3157-3163 (2008).
  6. Mason, G., Clark, W. C. Liquid Bridges Between Spheres. Chem. Eng. Sci. 20, 859-866 (1965).
  7. De Souza, E. J., Brinkmann, M., Mohrdieck, C., Arzt, E. Enhancement of capillary forces by multiple liquid bridges. Langmuir. 24, 8813-8820 (2008).
  8. Hornbaker, D. J., Albert, R., Albert, I., Barabasi, A. L., Schiffer, P. What keeps sandcastles standing. Nature. 387, 765-765 (1997).
  9. Scheel, M., et al. Morphological clues to wet granular pile stability. Nat. Mater. 7, 189-193 (2008).
  10. Mastrangeli, M., Ruythooren, W., Celis, J. -P., Van Hoof, C. Challenges for Capillary Self-Assembly of Microsystems. IEEE T. Compon. Pack. 1, 133-149 (2011).
  11. Josell, D., Wallace, W. E., Warren, J. A., Wheeler, D., Powell, A. C. Misaligned flip-chip solder joints: Prediction and experimental determination of force-displacement curves. J. Electron. Pack. 124, 227-233 (2002).
  12. Lin, W., Patra, S. K., Lee, Y. C. Design of Solder Joints for Self-Aligned Optoelectronic Assemblies. IEEE T. Compon. Pack. B. 18, 543-551 (1995).
  13. Berthier, J., et al. Capillary self-alignment of polygonal chips: a generalization for the shift-restoring force. Microfluid. Nanofluid. 14, 845-858 (2013).
  14. Lambert, P., Mastrangeli, M., Valsamis, J. B., Degrez, G. Spectral analysis and experimental study of lateral capillary dynamics for flip-chip applications. Microfluid. Nanofluid. 9, 797-807 (2010).
  15. Mastrangeli, M., Valsamis, J. B., Van Hoof, C., Celis, J. P., Lambert, P. Lateral capillary forces of cylindrical fluid menisci: a comprehensive quasi-static study. J. Micromech. Microeng. 20, 10-1088 (2010).
  16. Childs, W. R., Nuzzo, R. G. Large-area patterning of coinage-metal thin films using decal transfer lithography. Langmuir. 21, 195-202 (2005).
  17. Lee, J. N., Park, C., Whitesides, G. M. Solvent compatibility of poly(dimethylsiloxane)-based microfluidic devices. Anal. Chem. 75, 6544-6554 (2003).
  18. Olivier, G. K., Shin, D., Gilbert, J. B., Monzon, L. A. A., Frechette, J. Supramolecular Ion-Pair Interactions To Control Monolayer Assembly. Langmuir. 25, 2159-2165 (2009).
  19. Ferraro, D., et al. Morphological Transitions of Droplets Wetting Rectangular Domains. Langmuir. 28, 13919-13923 (1021).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Capillary BridgesSlit Pore GeometryPDMS PillarsMicrostage AlignmentFluid Interface ImagingSelf Assembled MonolayersHydrophilic FunctionalizationCCD Camera ImagingSyringe Fluid IntroductionGold Film Transfer

Powiązane artykuły