Artykuł metodologiczny

Reakcja siatki beleczkowej na wzrost ciśnienia w żywym ludzkim oku

DOI:

10.3791/52611

⸱

20 czerwca 2015

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Ophthalmology, UPMC Eye Center, Eye and Ear Institute, Ophthalmology and Visual Science Research Center, University of Pittsburgh School of Medicine, 2Department of Bioengineering, Swanson School of Engineering, University of Pittsburgh, 3The McGowan Institute for Regenerative Medicine, University of Pittsburgh School of Medicine, 4Deptartment of Biostatistics, Graduate School of Public Health, University of Pittsburgh

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Migracja siatki beleczkowej (TM) do przestrzeni kanału Schlemma może być wywołana przez ostre podniesienie ciśnienia przez oftalmodynamometr i obserwowana przez optyczną koherentną tomografię w domenie spektralnej. Celem tej metody jest ilościowe określenie morfometrycznej odpowiedzi żywej drogi odpływu na ostry wzrost ciśnienia w żywych tkankach in situ.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Cechy mechaniczne siatki beleczkowej (TM) są związane z oporem odpływu i regulacją ciśnienia wewnątrzgałkowego (IOP). Uzasadnieniem tej techniki jest bezpośrednia obserwacja mechanicznej odpowiedzi TM na ostre podwyższenie ciśnienia wewnątrzgałkowego. Przed skanowaniem ciśnienie wewnątrzgałkowe jest mierzone na początku badania i podczas jego podwyższenia. Rąbek jest skanowany za pomocą optycznej koherentnej tomografii w domenie spektralnej na początku badania i podczas podnoszenia ciśnienia wewnątrzgałkowego (oftalmodynamometr (ODM) stosowany przy sile 30 g). Skany są przetwarzane w celu poprawy wizualizacji ścieżki odpływu cieczy wodnistej za pomocą ImageJ. Naczyniowe punkty orientacyjne służą do identyfikacji odpowiednich lokalizacji w objętościach skanowania linii podstawowej i wysokości ciśnienia wewnątrzgałkowego. Pole przekroju poprzecznego kanału Schlemma (SC) (SC-CSA) i długość SC od przodu do tyłu wzdłuż jego osi długiej są mierzone ręcznie w 10 miejscach w obrębie 1 mm odcinka SC. Średnia odległość ściany wewnętrznej do zewnętrznej (długość krótkiej osi) jest obliczana jako powierzchnia SC podzielona przez długość jej długiej osi. Aby zbadać udział sąsiednich tkanek w efekcie podwyższenia ciśnienia wewnątrzgałkowego, pomiary powtarza się bez i z rozluźnieniem mięśni gładkich z wkropleniem tropikamidu. Migracja TM do SC jest odporna na sztywność TM, ale jest wzmocniona przez wsparcie jej przyczepu do sąsiednich mięśni gładkich w obrębie ciała rzęskowego. Technika ta jest pierwszą, która mierzy reakcję stawu skroniowo-żużlowego żywego człowieka na wzrost ciśnienia in situ w warunkach fizjologicznych w ludzkim oku.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Jaskra jest drugą najczęstszą przyczyną nieodwracalnej ślepotyna świecie 1. Podwyższone ciśnienie wewnątrzgałkowe (IOP) jest głównym czynnikiem ryzyka obecności i progresji jaskry2-7.  IOP jest regulowany przez równowagę między powstawaniem i odpływem cieczy wodnistej8. Miejscami o największym oporze odpływu są tkanka przyklockowa i wewnętrzna ściana kanału Schlemma (SC), granica między SC a siatką beleczkową (TM) 9-11. Podczas gdy sztywność TM może przyczyniać się do zapobiegania zapadaniu się SC w obliczu podniesienia ciśnienia wewnątrzgałkowego, Overby i wsp. 12 wykazali niedawno, że ekspresja genów w jaskrze jest zmieniona, co skutkuje zwiększonym usztywnieniem śródbłonka SC, utrudniając tworzenie porów, co prowadzi do podwyższenia ciśnienia wewnątrzgałkowego w oczach jaskrowych13. Morfologia i sztywność TM korelują z obiektem odpływu14,15, podkreślając potrzebę pomiaru jego cech biomechanicznych.

Pomiary mikroskopowe TM pokazują podwyższoną sztywność w oczach pobranych przez pacjentów z jaskrą (81 kPa) w porównaniu z oczami dawców bez jaskry (4,0 kPa) 16, ale te pomiary zostały wykonane w wypreparowanych tkankach ex vivo. Tylna TM jest zakotwiczona w mięśniu rzęskowym za pośrednictwem przednich ścięgien podłużnych komórek mięśniowych, które wstawiają się do zewnętrznego blaszkowatego i cribiform TM17. Aktywność mięśnia rzęskowego (CM) może zwiększać napięcie TM, naśladując podwyższoną sztywność TM17. Zdolność do obserwowania zmian w odporności na zapadanie się SC wywołane zaburzeniami mięśni gładkich wykazano w modelu zwierzęcym18. Wykazaliśmy zdolność do nieinwazyjnego obrazowania pierwotnego systemu odpływu cieczy wodnistej w żywych ludzkich oczach dystalnie do SC włącznie przy użyciu optycznej koherentnej tomografii koherentnej w domenie spektralnej (OCT) 19-21. Korzystając z tej techniki, wykazaliśmy zdolność do ilościowego określenia morfometrycznej odpowiedzi TM i SC na ostre podwyższenie ciśnienia wewnątrzgałkowego22.

Ogólnym celem opisanej tutaj metody było ilościowe określenie morfometrycznej odpowiedzi żywego przewodu odpływu na ostre podniesienie ciśnienia wewnątrzgałkowego w żywych tkankach in situ. Technika ta ma tę zaletę, że bada TM w warunkach fizjologicznych, które obejmują wpływ zarówno aktywności włókien kurczliwych w TM, jak i CM na sztywność TM, w porównaniu z opublikowanymi pomiarami wykonanymi w wypreparowanych tkankach. Uzasadnieniem zastosowania tej techniki do obserwacji mechanicznej odpowiedzi TM jest to, że dostarcza nam ona niedostępnych w inny sposób wglądów w mechaniczne zachowanie TM, o którym teraz wiemy, że jest bezpośrednio związane z oporem odpływu i regulacją IOP13. Aby dostrzec wpływ tkanek kurczliwych na ogólną sztywność, zbadano niewielką kohortę badanych bez i z tłumieniem aktywności mięśni gładkich przez podawanie tropikamidu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Oświadczenie etyczne: Przed rozpoczęciem rekrutacji przedmiotów uzyskano zgodę Instytucjonalnej Komisji Rewizyjnej Szkoły Medycznej Uniwersytetu w Pittsburghu. Wszyscy uczestnicy wyrazili pisemną świadomą zgodę przed udziałem w badaniu.

1. Akwizycja danych

  1. Wzrost ciśnienia
    1. Wykonaj pomiary podstawowe (pomiary IOP i OCT), wkraplając jedną kroplę 0,5% proparakainy do oka. Odczekaj 3 minuty na skuteczność.
    2. Delikatnie uciskaj twardówkę skroniową za pomocą oftalmodynamometru, 30 g w kohorcie 1 i 5, a następnie 10 g w kohorcie 2. Następnie wykonaj żądane pomiary (IOP i OCT) w następujący sposób
      1. Pomiary ciśnienia wewnątrzgałkowego
        1. Zmierz bazową liczbę operacji we/wy (IOP). Zwiększyć ciśnienie zgodnie z opisem w sekcji 1.1.
        2. W kohorcie 1 wkraplania jedną kroplę 0,5% proparakainy, odczekaj 3 minuty na skuteczność i zastosuj 30 g nacisku na twardówkę. Podczas wywierania nacisku zmierz ciśnienie IOP za pomocą tonometru, postępując zgodnie z instrukcjami producenta.
        3. W kohorcie 2 wkropl jedną kroplę 0,5% proparakainy, odczekaj 3 minuty na skuteczność i zastosuj 5 g ciśnienia twardówki za pomocą oftalmodynamometru. Zmierz ciśnienie wewnątrzgałkowe podczas wzrostu ciśnienia za pomocą tonometru zgodnie z instrukcjami producenta.
          1. Odczekaj 5 minut po pomiarze 5 g.
          2. Zastosuj 10 g ciśnienia twardówki za pomocą oftalmodynamometru i zmierz ciśnienie wewnątrzgałkowe podczas podnoszenia ciśnienia za pomocą tonometru zgodnie z instrukcjami producenta. Zapisz ciśnienie wewnątrzgałkowe i stan (tj. wartość wyjściową lub 10 g) w protokole badania.
      2. Skanowanie OCT
        1. Umieść obiekt przy skanerze OCT. Wprowadź dane demograficzne pacjentów dla nowych uczestników lub przywołaj dane demograficzne z bazy danych OCT dla wcześniej przeskanowanych uczestników.
        2. Wybierz protokół skanowania przedniego odcinka 512 x 128. Wyśrodkuj oko w oknie obrazu wideo. Zmniejsz odległość między skanerem a okiem, aż w oknie skanowania pojawi się obraz przekroju poprzecznego rogówki
        3. Za pomocą poleceń słownych ustaw rąbek skroniowy na środku okna skanowania, kierując wzrok pacjenta w kierunku nosa
        4. Uzyskaj skan bazowy i przejrzyj go pod kątem jakości. JEŚLI jest to dopuszczalne, zapisz, a jeśli nie jest to dopuszczalne, powtórz ten krok.
          1. Akceptuj skany, jeśli nie ma mrugnięć, a kąt jest wizualizowany w całej objętości bez oddalania się od krawędzi obrazu lub odwracania u góry.
        5. Wlej jedną kroplę 0,5% proparakainy, odczekaj 3 minuty, aby uzyskać skuteczność, i powtórz kroki od 1.3.2 do 1.3.5.
        6. W przypadku kohorty 1 zastosuj 30 g ciśnienia twardówki za pomocą oftalmodynamometru i uzyskaj skan podczas wywierania nacisku. Usuń ciśnienie i przejrzyj skan pod kątem jakości. JEŚLI jest to dopuszczalne, zapisz, a jeśli nie jest to dopuszczalne, powtórz ten krok.
        7. W przypadku kohorty 2 zastosuj 5 g ciśnienia twardówki za pomocą oftalmodynamometru i uzyskaj skan podczas wywierania nacisku. Usuń ciśnienie i przejrzyj skan pod kątem jakości. JEŚLI jest to dopuszczalne, zapisz, a jeśli nie jest to dopuszczalne, powtórz ten krok.
        8. Odczekaj 5 minut, aby oko zregenerowało się po zaburzeniach ciśnienia 5 g.
        9. W przypadku kohorty 2 zastosuj 10 g ciśnienia twardówki za pomocą oftalmodynamometru i uzyskaj skan podczas wywierania nacisku. Usuń ciśnienie i przejrzyj skan pod kątem jakości. JEŚLI jest to dopuszczalne, zapisz, a jeśli nie jest to dopuszczalne, powtórz ten krok.
        10. Zapisz czas skanowania, stan (tj. linię bazową lub 10 g) i lokalizację w protokole badania.

2. Przetwarzanie danych

  1. Podłącz urządzenie pamięci masowej USB o dużej pojemności do OCT. Wybierz "Eksportuj" z menu Rekordy na OCT. Wyznacz lokalizację pliku dla eksportowanych plików na dysku USB. Usuń zaznaczenie opcji ".zip". Wprowadź imię i nazwisko pacjenta, z których mają zostać wyeksportowane skany, a następnie wybierz skany, które mają zostać wyeksportowane. Rozpocznij eksport.
  2. Po zakończeniu eksportu odmontuj dysk USB i wyjmij go z pamięci OCT. Podłącz dysk USB o dużej pojemności zawierający wyeksportowane obrazy do stacji roboczej przetwarzania obrazu.
  3. Uruchom program do przetwarzania obrazu, w tym przypadku ImageJ.
  4. Zaimportuj surowe dane obrazu; wybierz "Plik -> Importuj -> Raw" z menu plików. Wybierz plik z zakończeniem "_cube_raw.img" do przetworzenia z dysku USB.
  5. Zapisz zaimportowany plik pod nową nazwą, tak aby oryginalne dane obrazu zostały zapisane w niezmienionej formie (http://www.ori.dhhs.gov/education/products/RIandImages).
  6. Wprowadź parametry importu w następujący sposób: Typ obrazu: 8 bitów, Szerokość: 512, Wysokość: 1 024, Przesunięcie: 0; Liczba zdjęć: 128.
  7. Wybierz "Plugins -> Registration -> StackReg" z menu wtyczek. A następnie wybierz opcję "Ciało sztywne". Następnie wybierz "Plik -> Zapisz jako -> TIFF", aby zapisać wyrównany stos.
  8. Wybierz "Proces -> Filtry -> Mean 3D" z menu procesu. Wprowadź parametry X = 1, Y = 1 i Z = 1 jako opcje filtrowania. Powtórz ten krok dwukrotnie.
  9. Wybierz "Plik -> Zapisz jako -> TIFF", aby zapisać uśredniony stos. Zakręć kółkiem myszy, aby przejść do klatki 1 aktywnego stosu.
  10. Wybierz "Proces -> Zwiększ kontrast lokalny (CLAHE)" z menu Przetwarzanie. Użyj parametrów rozmiar bloku: 31, przedziały histogramu: 256, Maksymalne nachylenie: 5, Maska: brak i zaznacz opcję "szybko". Użyj strzałki w prawo, aby przejść do następnej klatki.
  11. Przejdź do klatki 2 aktywnego stosu i powtórz proces > Zwiększ kontrast lokalny (CLAHE). Powtarzaj tę czynność, aż wszystkie klatki będą miały zwiększony kontrast.
  12. Wybierz "Plik -> Zapisz jako -> TIFF", aby zapisać stos ze wzmocnionym kontrastem. Następnie wybierz "Obraz -> Dostosuj -> Rozmiar" z menu Obraz. Usuń zaznaczenie opcji "Zachowaj proporcje", a następnie wprowadź wartości Szerokość: 2,048 i Wysokość: 1,024.
  13. Wybierz "Obraz -> Przekształć -> Odwróć w pionie" z menu Obraz. Następnie wybierz "Analizuj -> ustaw skalę" z menu Analizuj. Wprowadź Odległość w pikselach: 2 048, Znana odległość: 4 000 i Współczynnik proporcji pikseli: 1, a następnie kliknij przycisk OK. Wybierz "Plik -> Zapisz jako -> TIFF", aby zapisać skalibrowany stos proporcji 1:1.
  14. Powoli obracaj kółkiem myszy, aby wizualnie zbadać skany w celu zidentyfikowania charakterystycznego skrzyżowania statku, które posłuży jako punkt odniesienia w skanach. Zapisz numer obrazu i numer ramki odniesienia w arkuszu kalkulacyjnym analizy.
  15. Naciśnij strzałki w lewo 15 razy, aby przejść do pierwszej klatki pomiaru. Wybierz narzędzie "Zaznaczanie odręczne" z paska narzędzi.
  16. Umieść mysz na środku SC i naciśnij strzałkę w górę. Powtarzaj ten krok, aż SC wypełni ekran.
  17. Ręcznie podziel SC na segmenty, okrążając granicę za pomocą myszy. Przytrzymaj Control (Ctrl) i naciśnij D, aby wyświetlić bieżącą klatkę obrazu. Przytrzymaj Ctrl i naciśnij M. Dokonaj transkrypcji pomiaru pola przekroju poprzecznego SC i numeru ramki pomiarowej do arkusza kalkulacyjnego analizy. Usuń zaznaczenie obszaru konturu. Naciśnij strzałki w prawo 3 razy. Powtarzaj ten krok, aż SC zostanie zmierzony w 10 klatkach.
  18. Naciśnij strzałki w lewo 30 razy, aby powrócić do pierwszej klatki pomiaru.
  19. Wybierz narzędzie segmentu prostego z paska narzędzi.
  20. Narysuj linię prostą od najbardziej wysuniętego do tyłu miejsca na SC. Przytrzymaj Control i naciśnij D tylko dla bieżącej klatki. Przytrzymaj Control i naciśnij M. Przepisz długość SC i numer klatki do arkusza kalkulacyjnego analizy. Usuń zaznaczenie obszaru konturu. Naciśnij strzałki w prawo 3 razy. Powtarzaj ten krok, aż długość SC zostanie zmierzona w tych samych 10 ramkach, co pole przekroju poprzecznego SC.
  21. Wstaw równanie SC-IOWD = SC-CSA / długość osiowa do arkusza kalkulacyjnego analizy, aby obliczyć średnią odległość SC między ścianą wewnętrzną a zewnętrzną (SC-IOWD), dzieląc pomiary powierzchni przez pomiary długości.
  22. Naciśnij strzałki w lewo 30 razy, aby powrócić do pierwszej klatki pomiaru.
  23. Wybierz narzędzie segmentu prostego z paska narzędzi.
  24. Narysuj linię prostą od najbardziej wysuniętej do przodu części SC do granicy siatki beleczkowej i komory przedniej. Upewnij się, że linia jest prostopadła do granicy. Przytrzymaj Ctrl i naciśnij D, a następnie M.
  25. Narysuj linię od najbardziej wysuniętego do tyłu położenia SC oraz granicy TM i komory przedniej. Upewnij się, że linia jest prostopadła do granicy. Przytrzymaj Control i naciśnij D, a następnie M.
  26. Narysuj linię od środka SC oraz granicy TM i komory przedniej. Upewnij się, że linia jest prostopadła do granicy. Przytrzymaj Control i naciśnij D tylko dla bieżącej klatki.
  27. Dokonaj transkrypcji trzech pomiarów grubości TM i numeru klatki do arkusza kalkulacyjnego analizy. Aby to zrobić, naciśnij strzałki w prawo 3 razy. Powtarzaj ten krok, aż grubość TM zostanie zmierzona w tych samych 10 ramkach, co pole przekroju SC.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Korzystając z tych technik pozyskiwania danych i analizy obrazu, uzyskuje się efekty małych i dużych zmian IOP na parametry morfologiczne drogi odpływu, takie jak pole przekroju poprzecznego SC (Rysunek 1). Widzimy, że wysoki poziom wzrostu ciśnienia wewnątrzgałkowego powoduje obserwowalne załamanie SC, co jest reprezentowane przez duże zmniejszenie pola przekroju poprzecznego. Wydaje się, że oko jest w stanie dostosować się do niewielkich wzrostów ciśnienia wewnątrzgałkowego, o czym świadczy brak zmian ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Obecna technika wykorzystuje nieinwazyjną obserwację mechanicznej reakcji tkanek miękkich w celu ilościowego określenia zapaści SC. Potrzebne są przyszłe prace z wykorzystaniem ludzkich oczu zwłok, aby skalibrować ugięcia tkanek i rzeczywistą sztywność tkanek po sekcji. Jednak takie badania będą miały te same ograniczenia, co poprzednie modele odpływu; W szczególności, że wkład żywych mięśni w napięcie tkanek nie będzie obecny. Dalsza kalibracja w modelu oka żywych ssaków może pozwolić na kalibrację obrazowania i bezpośr...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dr Schuman otrzymał tantiemy za własność intelektualną licencjonowaną przez Massachusetts Institute of Technology i Massachusetts Eye and Ear Infirmary firmie Zeiss, Inc.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Częściowo wspierane przez kontrakty National Institute of Health R01-EY13178 i P30-EY08098 (Bethesda, MD), Eye and Ear Foundation (Pittsburgh, PA), oraz nieograniczone granty z Research to Prevent Blindness (Nowy Jork, NY).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Domena spektralna OCTZeissCirrus
Imaging Workstation AppleiMac
OftalmodynamometrBaillairt Matalene, Instrumenty chirurgiczne CO., Inc. Nowy Jork, NY
Program do przetwarzania obrazówrsb.info.nih.gov/ijImageJ, FIDŻI

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Quigley, H. A., Broman, A. T. The number of people with glaucoma worldwide 2010 and 2020. The British journal of ophthalmolog. 90, 262-267 (2006).
  2. Sommer, A., et al. Relationship between intraocular pressure and primary open angle glaucoma among white and black Americans. The Baltimore Eye Survey. Archives of ophthalmolog. 109, 1090-1095 (1991).
  3. Sommer, A., et al. Racial differences in the cause-specific prevalence of blindness in east Baltimore. The New England journal of medicin. 325, 1412-1417 (1991).
  4. Leske, M. C., Connell, A. M., Wu, S. Y., Hyman, L., Schachat, A. P. Distribution of intraocular pressure. The Barbados Eye Study. Archives of ophthalmolog. 115, 1051-1057 (1997).
  5. Leske, M. C., Wu, S. Y., Hennis, A., Honkanen, R., Nemesure, B. Risk factors for incident open-angle glaucoma: the Barbados Eye Studies. Ophthalmolog. 115, 85-93 (2008).
  6. Mitchell, P., Lee, A. J., Rochtchina, E., Wang, J. J. Open-angle glaucoma and systemic hypertension: the blue mountains eye study. Journal of glaucom. 13, 319-326 (2004).
  7. Mitchell, P., Smith, W., Attebo, K., Healey, P. R. Prevalence of open-angle glaucoma in Australia. The Blue Mountains Eye Study. Ophthalmolog. 103, 1661-1669 (1996).
  8. Gabelt, B., Kaufman, P. Adler's Physiology of the Ey. Kaufman, P. L. , Mosby. 237-289 (2003).
  9. Grant, W. M. Experimental aqueous perfusion in enucleated human eyes). Archives of ophthalmolog. 69, 783-801 (1963).
  10. Jocson, V. L., Sears, M. L. Experimental aqueous perfusion in enucleated human eyes. Results after obstruction of Schlemm's canal. Archives of ophthalmolog. 86, 65-71 (1971).
  11. Maepea, O., Bill, A. Pressures in the juxtacanalicular tissue and Schlemm's canal in monkeys. Experimental eye researc. 54, 879-883 (1992).
  12. Johnstone, M. A., Grant, W. G. Pressure-dependent changes in structures of the aqueous outflow system of human and monkey eyes. American journal of ophthalmolog. 75, 365-383 (1973).
  13. Overby, D. R., et al. Altered mechanobiology of Schlemm's canal endothelial cells in glaucoma. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of Americ. , (2014).
  14. Allingham, R. R., de Kater, A. W., Ethier, C. R. Schlemm's canal and primary open angle glaucoma: correlation between Schlemm's canal dimensions and outflow facility. Experimental eye researc. 62, 101-109 (1996).
  15. Camras, L. J., Stamer, W. D., Epstein, D., Gonzalez, P., Yuan, F. Differential effects of trabecular meshwork stiffness on outflow facility in normal human and porcine eyes. Investigative ophthalmolog., & visual scienc. 53, 5242-5250 (2012).
  16. Last, J. A., et al. Elastic modulus determination of normal and glaucomatous human trabecular meshwork. Investigative ophthalmolog., & visual. 52, 2147-2152 (2011).
  17. Lutjen-Drecoll, E. Functional morphology of the trabecular meshwork in primate eyes. Progress in retinal and eye researc. 18, 91-119 (1999).
  18. Li, G., et al. Pilocarpine-induced dilation of Schlemm's canal and prevention of lumen collapse at elevated intraocular pressures in living mice visualized by OCT. Investigative ophthalmolog., & visual scienc. 55, 3737-3746 (2014).
  19. Francis, A. W., et al. Morphometric analysis of aqueous humor outflow structures with spectral-domain optical coherence tomography. Investigative ophthalmolog., & visual. 53, 5198-5207 (2012).
  20. Kagemann, L., et al. 3D visualization of aqueous humor outflow structures in-situ in humans. Experimental eye researc. 93, 308-315 (2011).
  21. Kagemann, L., et al. Identification and assessment of Schlemm's canal by spectral-domain optical coherence tomography. Investigative ophthalmolog., & visual. 51, 4054-4059 (2010).
  22. Kagemann, L., et al. IOP Elevation Reduces Schlemm's Canal Cross-sectional Area. Investigative ophthalmolog & visual scienc. , (2014).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

ci nienie wewn trzga koweoptyczna koherentna tomografiakana Schlemmdroga odp ywuoftalmodynamometranaliza w programie ImageJrozkurcz mi ni g adkichodpowied morfometrycznahumor wodny

Powiązane artykuły