Artykuł metodologiczny

Skuteczność terapeutyczna suplementu diety w leczeniu halitozy u psów

13.5K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/52717

⸱

6 lipca 2015

 ,  ,  ,  , 
1Department of Surgery and Surgical Specialties, Azienda Ospedaliero-Universitaria Policlinico di Modena, 2Department of Clinical Microbiology, Universtity of Modena and Reggio Emilia, 3Sanypet S.p.a, 4AIRMO Center Milan

W tym artykule

Podsumowanie

Opisujemy proste podejście do diagnozowania cuchnącego oddechu u psów, jak również dietetyczne podejście do jego leczenia. Protokół ten może zostać rozszerzony na leczenie halitozy u ludzi w najbliższej przyszłości.

Streszczenie

Halitoza jest częstą dolegliwością związaną z problemami społecznymi i komunikacyjnymi u ludzi, a także wpływa na relację zwierzę-właściciel. W tej randomizowanej, kontrolowanej placebo ocenie klinicznej oceniliśmy skuteczność dedykowanego suplementu diety w łagodzeniu przewlekłego cuchnącego oddechu u 32 psów różnych ras i w różnym wieku. Protokół ten opisuje, w jaki sposób można ocenić obecność doustnych lotnych składników supurowych, np. merkaptanu metylu, siarkowodoru i siarczku dimetylu, za pomocą przenośnego urządzenia do chromatografu gazowego sprzężonego ze strzykawką, która służyła do pobierania wydychanego powietrza, oraz dedykowanego oprogramowania, które pozwala operatorowi monitorować stężenie każdego związku podczas każdego pomiaru, w stosunkowo krótkim czasie (8 min).

Znaczącą modyfikację parametrów halitozy zaobserwowano po 30 dniach od rozpoczęcia leczenia (p <0,05), podczas gdy długotrwały efekt obserwowano nawet 20 dni po zawieszeniu leczenia. Przenośny chromatograf gazowy, który jest również szeroko stosowany w praktyce klinicznej, może być zatem używany do potwierdzania i kontrolowania halitozy u ludzi i zwierząt. Mimo że gatunki ludzi i zwierząt wykazują pewne różnice, ta innowacyjna i alternatywna terapia w leczeniu cuchnącego oddechu może zostać rozszerzona na praktykę kliniczną u ludzi jako uzupełniające podejście dietetyczne.

Wprowadzenie

Nieprzyjemny zapach z ust, znany również pod terminem cuchnący oddech, jest częstą dolegliwością, która powoduje zakłopotanie w interpersonalnych relacjach społecznych1 tak samo jak nieprzyjemny zapach ciała2. Chociaż większość danych epidemiologicznych dotyczących nieprzyjemnego zapachu w jamie ustnej jest ograniczona pod względem dokładności i wrażliwości ze względu na subiektywną samoocenę, badania donoszą, że 30-50% populacji jest dotknięta tą patologią3-6. Niektóre badania dowiodły również, że występuje częściej u mężczyzn niż u kobiet, niezależnie od wieku, w stosunku 3:1, a stosunek ten jest nieco wyższy u osób powyżej 20 roku życia7.

Halitoza może być etapowana w zależności od jej etiologii: typ 1 (oralny), typ 2 (drogi oddechowe), typ 3 (żołądkowo-przełykowy), typ 4 (przenoszony przez krew) i typ 5 (subiektywny); jednak postawiono hipotezę, że cuchnący oddech może być potencjalnie uważany za sumę tych typów w dowolnej kombinacji, nałożoną na fizjologiczny zapach obecny w zdrowiu (Typ 0)8,9. Scully i wsp., którzy szeroko opisali i scharakteryzowali etiopatogenezę i leczenie halitozy, stwierdzili, że u niektórych pacjentów ma ona etiologię pozaustną, a u kilku z nich w grę wchodzą anomalie metaboliczne10. Autorzy zwrócili uwagę, że za nieprzyjemny zapach odpowiedzialne są głównie lotne związki siarki (VSC) oraz niektóre czynniki predysponujące, np. zła higiena jamy ustnej, hipoślinotok, aparaty stomatologiczne, choroby dziąseł i przyzębia oraz choroby błon śluzowych. Ponadto zaproponowali poprawę zdrowia jamy ustnej, terapie przeciw nieprzyjemnym zapachom i środki przeciwdziałające nieprzyjemnemu zapachowi jako podstawowe konwencjonalne podejście. Co więcej, zaproponowali również stosowanie probiotyków i szczepionek przeciwko bakteriom wywołującym nieprzyjemny zapach.

Ludzcy i zwierzętnicy, tj. koty i psy, mogą być dotknięci niepożądanymi reakcjami związanymi z żywnością, które mogą obejmować kilka układów, takich jak układ pokarmowy, skórny, otologiczny, oczny, moczowy i oddechowy11-13. Jednak kilka badań na zwierzętach wykazało, że komora nosowa jest jednym z najbardziej zaangażowanych układów, w których dość często występuje kamień nazębny14, zapalenie jamy ustnej15 i cuchnący oddech16. Ponadto bakterie wywołujące halitozę mogą być przenoszone ze zwierząt towarzyszących na ludzi17. Iwanicka-Grzegorek określiła ilościowo zawartość związków siarki i amin o niskiej masie cząsteczkowej w ślinie 84 pacjentów cierpiących na cuchnący oddech i 40 zdrowych osób z grupy kontrolnej. Ponad 80% pacjentów należących do grupy cuchnącego oddechu zgłosiło, że miało zwierzęta domowe w dzieciństwie (P <0,001), a ponad 70% nadal posiadało zwierzę domowe (P <0,001).

Dlatego odżywianie może być stosowane do kontrolowania halitozy. Co więcej, odżywianie odgrywa kluczową rolę w rozwoju zębów, integralności tkanek jamy ustnej i dziąseł, odporności kości, a nawet w leczeniu chorób zębów i jamy ustnej18. Opierając się na tych rozważaniach, w Centrum Włoskiego Stowarzyszenia Badań Onkologicznych nad Chorobami (AIRMO) przeprowadzamy randomizowaną, kontrolowaną placebo krzyżową ocenę kliniczną z udziałem 32 psów cierpiących na cuchnący oddech w celu zbadania skuteczności suplementu diety w porównaniu z dostępną na rynku karmą dla zwierząt domowych.

Protokół

Ta ocena kliniczna została zaplanowana zgodnie z prawodawstwem europejskim (86/609/EU), a protokół eksperymentalny został zatwierdzony przez Komitet ds. Etyki i Dobrostanu Zwierząt Centrum Badawczego AIRMO (Mediolan, Włochy).

1. Psy i wybór karmy

  1. Losowo podziel 32 psy różnych ras (7,01 ± 0,20 roku [średnia ± błąd standardowy średniej (SEM)]; 34,05 ± 1,47 kg [średnia ± SEM]; 12 samców i 20 suk) cierpiących na przewlekły cuchnący oddech na 2 grupy, podając im suplement diety lub placebo przez okres 30 dni.
  2. Upewnij się, że każdy pies otrzymuje odpowiednią dawkę suplementu diety lub placebo w zależności od masy ciała zwierzęcia w kilogramach, zgodnie z instrukcjami producenta (Tabela 1).
  3. Po 30-dniowym leczeniu należy upewnić się, że obie grupy mają 10-dniowy okres wypłukiwania, podczas którego wszystkie zwierzęta są karmione placebo. Pod koniec okresu wypłukiwania schemat żywienia dla obu grup jest odwracany w taki sposób, że grupa kontrolna otrzymuje suplement diety przez kolejne 30 dni, a grupa leczona otrzymuje placebo.
  4. Dwie inspekcje weterynaryjne przeprowadzone na psach w obu grupach, jedna przed i jedna po 30-dniowym leczeniu.

2. Chromatograf gazowy

Uwaga: Chromatograf gazowy to przenośne urządzenie, które mierzy lotne związki siarki (VSC), siarkowodór, merkaptan metylu i siarczek dimetylu, które są głównymi czynnikami wywołującymi halitozę, dostarczając informacji o stężeniu każdego mierzonego gazu. Pomiar każdego VSC pomaga zidentyfikować przyczynę halitozy i ocenić skuteczność leczenia.

  1. Stosując procedurę opisaną w punktach 3 i 4, należy zbadać lotne związki siarki (VSC) przed leczeniem suplementem diety (czas 0), 10 dni po leczeniu (czas 10), 20 dni po leczeniu (czas 20) i na końcu leczenia (czas 30).

3. Ustawienie chromatografu gazowego

  1. Włącz wyłącznik główny z tyłu urządzenia. Uwaga: Na ekranie początkowym wyświetla się słowo "MEASUREMENT MODE".
  2. Naciśnij ENTER, aby wybrać TRYB POMIARU.
    Uwaga: Na ekranie wyświetlany jest komunikat WAIT, a obok słowa "COUNTER" wyświetlany jest czas czuwania wymagany do ustabilizowania urządzenia pomiarowego. Po upływie czasu czuwania urządzenie jest automatycznie gotowe do pomiaru i włącza się lampka kontrolna GOTOWOŚĆ.

4. Pobieranie próbek i analiza oddechu psów

  1. Uruchom oprogramowanie Data Manager.
  2. Kliknij "Pomiar" po potwierdzeniu, że "Bieżący status" to "Gotowy do pomiaru"
  3. Wprowadź identyfikator i kliknij "Wybierz". Uwaga: W prawym górnym rogu okna zostanie wyświetlony komunikat.
    1. Jeśli wyświetlany komunikat brzmi "Wstrzyknąć gaz doustny", rozpocznij pomiar.
    2. Jeśli wyświetlany jest komunikat "Urządzenie jest przygotowywane", poczekaj.
  4. Za pomocą jednorazowej strzykawki o pojemności 1 ml zebrać oddech z pyska psa, umieszczając strzykawkę w spoidle wargowym psa, powoli pociągając za tłok i wyjmując strzykawkę z pyska psa.
  5. Zmniejszyć objętość strzykawki do 1 ml.
  6. Przymocuj dołączoną igłę do końca strzykawki i po otwarciu pokrywy wyrzuć próbkę do wlotu jednostki głównej urządzenia, naciskając tłok.
    Uwaga: Pomiary rozpoczynają się automatycznie, a kontrolka READY lamp gaśnie. Pomiar jest zakończony w ciągu 8 minut, a wynik jest automatycznie wyświetlany (wyświetlacz można zmienić na "Chromatogram"). Po zakończeniu pomiaru pojawi się okno Judgment. Można wyświetlić historię pomiarów i dane pomiarowe.
  7. Naciśnij ENTER, aby zapisać wyniki w jednostce.
    Uwaga: Dane są wyrażone w standardowych jednostkach części na miliard (ppb) i/lub ng/10 ml.
  8. Następnie odczekaj 1 minutę, aby ustabilizować urządzenie i wykonać nowy pomiar. Uwaga: Pod koniec tego czasu lampka włącza się, co oznacza, że urządzenie jest gotowe.

Wyniki

Zarówno placebo, jak i suplement diety zostały dostosowane w celu zapewnienia podobnej podaży składników odżywczych i kalorii oraz zaspokojenia zapotrzebowania żywieniowego w szczególności dorosłych psów. Ich skład analityczny wynosił: białko surowe 26%, oleje i tłuszcze surowe 13%, włókno surowe 2.5%, popiół surowy 8% oraz energia metabolizowalna (EM) 3464 kcal/kg. Energię metabolizowalną obliczono zgodnie z wytycznymi żywieniowymi dotyczącymi pełnych i dopełniających karm dla kotów i psów opracowanymi przez Europejską Federację Przemysłu Karm dla Zwierząt Domowych. Placebo składało się z dehydratyzowanego mięsa z kurczaka, ryżu, tłuszczu zwierzęcego, dehydratyzowanych jaj, owsa, suszonego pulpy buraczanej, nasion lnu, hydrolizowanych białek zwierzęcych, oleju rybnego, oleju roślinnego, węglanu wapnia, suszonego ekstraktu drożdżowego, fosforanu jednowapniowego oraz chlorku sodu. Suplement diety różnił się od placebo obecnością substancji aktywnych zawartych w specjalnych tabletkach w kształcie serca tłoczonych na zimno (patent europejski nr EP 2526781), które stanowiły 6-7% pełnej karmy, a także źródłem białka – mączką rybną zamiast mączki z kurczaka. Tabletki zawierały propolis (0.0161%), Salvia officinalis (0.0087%), białko jaja kurzego (lizozym 0.0078%), dehydratyzowany ekstrakt z pomarańczy (bioflawonoidy 0.0077%), Thymus vulgaris (0.0127%) oraz Ribes nigrum (0.0040%).

Dane zostały przeanalizowane, przedstawione jako średnie ± błąd standardowy średniej i sprawdzone pod kątem rozkładu normalnego za pomocą testu normalności D’Agostino-Pearsona. Do porównania zmian w wyniku VSCs w wizycie kontrolnej w stosunku do wartości wyjściowej dla każdej metody leczenia zastosowano wielokrotny test t.

Rycina 1A przedstawia istotny spadek stężenia siarkowodoru u zwierząt leczonych, z wartości wyjściowej 0,43 ng/ml do 0,06 ng/ml po 30 dniach leczenia. Rycina 1B przedstawia istotny spadek stężenia metylomerkaptanu u zwierząt leczonych, z wartości wyjściowej 0,30 ng/ml do 0,06 ng/ml po 30 dniach leczenia. Rycina 1C przedstawia istotny spadek stężenia siarczku dimetylu u zwierząt leczonych, z wartości wyjściowej 0,28 ng/ml do 0,13 ng/ml po 30 dniach leczenia.

Rysunek 2A przedstawia istotny spadek stężenia siarkowodoru, z wartości bazowej 0,37 ng/ml do 0,10 ng/ml, po 20 dniach leczenia. Na Rysunku 2B podobny trend zaobserwowano również w przypadku metylomerkaptanu, który wykazuje istotny spadek stężenia związku, z wartości bazowej 0,24 ng/ml do 0,05 ng/ml, po 30 dniach leczenia. W odniesieniu do siarczku dimetylu, Rysunek 2C, po 30 dniach leczenia zaobserwowano istotny spadek stężenia związku, z wartości bazowej 0,32 ng/ml do 0,11 ng/ml.

MASA CIAŁA (Kg)DZIENNA DAWKA SUPLEMENTU DIETETYCZNEGO (g)
1 - 1030 - 180
11 - 20190 - 300
21 - 35310 - 455
36 - 50465 - 595

Tabela 1: Dzienna ilość pokarmu podawanego psom.

Wykres słupkowy stężeń H2S, CH3SH, (CH3)2S; porównanie przed i po leczeniu; grupy kontrolna i badana.
Rysunek 1: (A) Graficzna reprezentacja trendu stężenia siarkowodoru w grupie badanej (n = 16) vs grupie kontrolnej (n = 16) podczas 30-dniowego okresu leczenia; *p <0.05; (B) Graficzna reprezentacja trendu stężenia metanotiolu w grupie badanej (n = 16) vs grupie kontrolnej (n = 16) podczas 30-dniowego okresu leczenia; *p <0.05; (C) Graficzna reprezentacja trendu stężenia siarczku dimetylu w grupie badanej (n = 16) vs grupie kontrolnej (n = 16) podczas 30-dniowego okresu leczenia; *p <0.05.

Wykresy słupkowe porównujące stężenia H2S, CH3SH, (CH3)2S w grupie kontrolnej i traktowanej po okresie wypłukiwania.
Rycina 2: (A) Przedstawienie graficzne trendów stężenia siarkowodoru w grupie traktowanej (n = 16) vs kontrolnej (n = 16) po 10-dniowym okresie wypłukiwania; *p <0.05; (B) Przedstawienie graficzne trendu stężenia metylomerkaptanu w grupie traktowanej (n = 16) v.s. kontrolnej (n = 16) po 10-dniowym okresie wypłukiwania; *p <0.05; (C) Przedstawienie graficzne trendów stężenia siarczku dimetylu w grupie traktowanej (n = 16) v.s. kontrolnej (n = 16) po 10-dniowym okresie wypłukiwania; *p <0.05.

Dyskusja

Halitoza jest częstym problemem u psów, stanowiącym problem psychospołeczny znacząco wpływający na relację zwierzę-właściciel19. Nieświeży oddech wynika z mikrobiologicznego metabolizmu zarówno egzogennych, jak i endogennych substratów białkowych w jamie ustnej20 , co powoduje produkcję lotnych związków siarki i jest pogarszane przez inne czynniki, w tym ostre martwicze wrzodziejące zapalenie dziąseł, zakażone miejsce ekstrakcji, zanieczyszczenia pod aparatami dentystycznymi, owrzodzenia, migdałki i niską higienę21-23. Głównymi czynnikami odpowiedzialnymi za produkcję nieświeżego oddechu są bakterie Gram-ujemne24 , a ich wzrost związany jest z pogrubieniem płytki nazębnej25. Właściwa higiena jamy ustnej wraz ze specjalną dietą może zmniejszyć obciążenie mikrobiologiczne do poziomu fizjologicznego, zmniejszając halitozę i unikając zapalenia narządów płciowych i chorób przyzębia, które mają nieprzyjemny wpływ na oddech26.

Pogląd ten potwierdza nasze badanie, z którego wynika, że po 10 dniach przyjmowania suplementu diety ogólną poprawę zaobserwowano u 29 z 32 psów (90%) wykazujących umiarkowany lub ciężki nieprzyjemny zapach, a pod koniec oceny 19 z 29 psów (65%), które osiągnęły poprawę, uzyskało stabilny stan fizjologiczny dotyczący stężenia VSC.

Nasze dochodzenie porusza bardzo intrygującą kwestię możliwego podawania suplementu diety psom z nieprzyjemnym zapachem oddechu poprzez wprowadzenie hydrolizowanych białek rybnych, szałwii, Ribes nigrum L., tymianku, lizozymu, propolisu, bioflawonoidów i witaminy C do codziennego harmonogramu żywienia. Związki te, szeroko stosowane w medycynie tradycyjnej, okazały się już skuteczne zarówno in vitro , jak i in vivo.

W szczególności białka ryb zostały wybrane na podstawie wcześniejszych badań chromatograficznych, które wykazały obecność dużych ilości siarkowodoru, metanotiolu, etanotiolu, siarczku dimetylu i siarczku etylenu w białkach wołowych27. Badania literaturowe wykazały również aktywność przeciwdrobnoustrojową szałwii i Ribes nigrum L. przeciwko Streptoccocus mutans , o którym wiadomo, że jest jednym z patogenów jamy ustnej (wraz z Porphyromonas gingivalis i Candida albicans) odpowiedzialnymi za nieprzyjemny zapach jamy ustnej i powstawanie próchnicy28-30. Bioflawonoidy i witamina C zostały uznane zarówno za środki przeciwzapalne, jak i bakteriostatyczne ograniczające wzrost niektórych bakterii związanych z chorobami przyzębia31.

Jeśli chodzi o propolis i tymianek, zmniejszenie produkcji nieprzyjemnego zapachu z inkubowanej całej śliny wykazano Sterer i wsp. 32 Aktywność bakteriostatyczna propolisu została szeroko wykazana w literaturze, począwszy od ograniczenia ilości płytki bakteryjnej33-37 do zmniejszenia tolerancji mikroorganizmów na kwaśne pH38, wykazując większą skuteczność niż roztwory glukonianu chlorheksydyny39. Ponadto udowodniono, że propolis jest skuteczny w zmniejszaniu próchnicy zębów u szczurów, ograniczając liczbę mikroorganizmów, spowalniając syntezę nierozpuszczalnych glukanów i aktywność glukozylotransferazy40.

Nasze badanie przedstawia pewne ograniczenia, takie jak czułość instrumentu w porównaniu z innymi dostępnymi technikami (np. wyboista nanostruktura hemitubowa WO3 wspomagana modyfikacją powierzchni plazmy O2 z funkcjonalizacją materiału na bazie grafenu41, elektroprzędzone nanowłókna SnO2 uczulone zredukowanymi nanoarkuszami tlenku grafenu42, test benzoilo-DL-arginino-naftyloamidu (BANA)43, wysokosprawna chromatografia cieczowa (HPLC)44 oraz chromatografia gazowa z mikroekstrakcją w fazie stałej/spektrometria mas (SPME-GC/MS45). Z drugiej strony, urządzenie zastosowane w tym badaniu może pozwolić na przykład na szybkie zebranie danych w celu szybkiego uzyskania wczesnej diagnozy wirusowego zapalenia wątroby typu B, które charakteryzuje się również podwyższonym poziomem siarczku dimetylu46 lub ustalenia stanu choroby układowej i/lub układu oddechowego (takiej jak zapalenie płuc, rozedma płuc i zapalenie oskrzeli), które charakteryzują się podwyższonym poziomem siarkowodoru. merkaptan metylu i siarczek dimetylu47.

Podczas zabiegu zdaliśmy sobie sprawę, że czas dostępny na zebranie oddechu z pyska psa był nieco krótszy niż wymagany (kilka sekund wobec 30 sekund sugerowanych przez producenta). Problem ten udało się przezwyciężyć poprzez trzykrotne powtórzenie każdego pomiaru. Kluczowym krokiem podczas eksperymentu było zbieranie oddechu. Aby nie zostawiać psa z otwartym pyskiem zbyt długo bez uszkodzenia strzykawki, umieściliśmy strzykawkę w spoidle wargowym psa w celu bezpiecznego zbierania oddechu.

Jak zaobserwowano u ludzi, dalszymi zastosowaniami tej techniki będzie profilaktyka chorób związanych z oddechem, tj. ogólnoustrojowych i oddechowych, u psów i ogólniej u zwierząt domowych. Podsumowując, nasze badanie wykazało, że suplement diety był skuteczny w zmniejszaniu przewlekłego cuchnącego oddechu u psów. Nasze wyniki mogą być również zgodne z tym, co proponują Porter i wsp., którzy wysunęli hipotezę o możliwej interakcji między cuchnącym oddechem a przewodem pokarmowym, sugerując, że terapia cuchnącego oddechu pochodzenia doustnego może również mieć pewien wpływ na skład bakterii jelitowych, o których wiadomo, że są odpowiedzialne, w niektórych przypadkach, za produkcję lotnych związków siarki48. Niemniej jednak, Dysbioza może również wystąpić po masowym stosowaniu antybiotyków49 lub mięsa pochodzącego z intensywnych hodowli zwierząt i powszechnie stosowanego w większości żywności dla zwierząt i ludzi50,51.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Ta recenzja nie była wspierana przez granty. Dziękujemy firmie Sanypet S.p.a. (Padwa, Włochy) za uprzejme udostępnienie suplementu diety i placebo zastosowanych w tym badaniu. Dziękujemy również społeczności San Patrignano, która uprzejmie wzięła udział w badaniu, dostarczając wszystkie psy.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
OralChroma CHM-1FIS Inc.10061285przenośny kromatograf gazowy
FORZA10 Oral ActiveSANYpet . Spółka z ograniczoną odpowiedzialnościąsuplement diety
InJ/Light-100 PCSRays S.p.a.INJ5171112strzykawki jednorazowe 

Bibliografia

  1. Bosy, A. Oral malodor: philosophical and practical aspects. Journal (Canadian Dental Association). 63, 196-201 (1997).
  2. Lee, S. S., Zhang, W., Li, Y. Halitosis update: a review of causes, diagnoses, and treatments). Journal of the California Dental Association. 35, 258-260 (2007).
  3. Tessier, J. F., Kulkarni, G. V. Bad breath: etiology, diagnosis and treatment. Oral Health. 81, 19-22, 24 (1991).
  4. Sanz, M., Roldan, S., Herrera, D. Fundamentals of breath malodour. The journal of Contemporary Dental Practice. 2, 1-17 (2001).
  5. Outhouse, T. L., Al-Alawi, R., Fedorowicz, Z., Keenan, J. V. Tongue scraping for treating halitosis. The Cochrane Database of Systematic Reviews. , (2006).
  6. Liu, X. N., et al. Oral malodor-related parameters in the Chinese general population. Journal of Clinical Periodontology. 33, 31-36 (2006).
  7. Nadanovsky, P., Carvalho, L. B., Ponce de Leon, A. Oral malodour and its association with age and sex in a general population in Brazil. Oral Diseases. 13, 105-109 (2007).
  8. Aydin, M., Harvey-Woodworth, C. N. Halitosis: a new definition and classification. British Dental Journal. 217, E1(2014).
  9. Porter, S., Fedele, S. Summary of: Halitosis: a new definition and classification. British Dental Journal. 217, 32-33 (2014).
  10. Scully, C., Greenman, J. Halitology (breath odour: aetiopathogenesis and management. Oral Diseases. 18, 333-345 (2012).
  11. Gaschen, F. P., Merchant, S. R. Adverse food reactions in dogs and cats. The Veterinary clinics of North America. Small Animal Practice. 41, 361-379 (2011).
  12. Mandigers, P., German, A. J. Dietary hypersensitivity in cats and dogs. Tijdschrift voor Diergeneeskunde. , 135-710 (2010).
  13. Skypala, I. Adverse food reactions--an emerging issue for adults. Journal of the American Dietetic Association. 111, 1877-1891 (2011).
  14. Larsen, J. Oral products and dental disease. Compendium (Yardley, PA). 32, E4(2010).
  15. Addie, D. D., Radford, A., Yam, P. S., Taylor, D. J. Cessation of feline calicivirus shedding coincident with resolution of chronic gingivostomatitis in a cat. The Journal of Small Animal Practice. 44, 172-176 (2003).
  16. Simone, A., Jensen, L., Setser, C., Smith, M., Suelzer, M. Assessment of oral malodor in dogs. Journal of veterinary. 11, 71-74 (1994).
  17. Iwanicka-Grzegorek, E., et al. Is transmission of bacteria that cause halitosis from pets to humans possible. Oral Diseases. 11, Suppl 1. 96-97 (2005).
  18. Logan, E. I. Dietary influences on periodontal health in dogs and cats. The Veterinary Clinics of North America. Small Animal Practice. 36, 1385-1401 (2006).
  19. Rawlings, J. M., Culham, N. Halitosis in dogs and the effect of periodontal therapy. The Journal of Nutrition. 128, 2715s-2716s (1998).
  20. Weinberg, M. A., Wesphal, C., Froum, S. J., Palat, M., Schoor, R. Comprehensive Periodontics for the Dental Hygienist WEINBERG Mea A., WESTPHAL Cheryl, FROUM Stuart J., PALAT Milton, SCHOOR Robert: Librairie Lavoisier. 544, Third Edition, (2009).
  21. Lee, P. P., Mak, W. Y., Newsome, P. The aetiology and treatment of oral halitosis: an update. Hong Kong medical journal = Xianggang yi xue za zhi / Hong Kong Academy of Medicine. 10, 414-418 (2004).
  22. Laine, M. L., Slot, D. E., Danser, M. M. Halitosis. A common problem. Nederlands Tijdschrift voor Tandheelkunde. 118, 607-611 (2011).
  23. Warrick, J. M., Inskeep, G. A., Yonkers, T. D., Stookey, G. K., Ewing, T. H. Effect of clindamycin hydrochloride on oral malodor, plaque, calculus, and gingivitis in dogs with periodontitis. Veterinary Therapeutics : Research in Applied Veterinary Medicine. 1, 5-16 (2000).
  24. Nakano, Y., Yoshimura, M., Koga, T. Methyl mercaptan production by periodontal bacteria. International Dental Journal. 52, Suppl 3. 217-220 (2002).
  25. Ritz, H. L. Microbial population shifts in developing human dental plaque. Archives of Oral Biology. 12, 1561-1568 (1967).
  26. Culham, N., Rawlings, J. M. Oral malodor and its relevance to periodontal disease in the dog. Journal of Veterinary Dentistry. 15, 165-168 (1998).
  27. Qvist, I. H., Von Sydow, E. C. F. Unconventional proteins as aroma precursors. Chemical analysis of the volatile compounds in heated soy, casein, and fish protein model systems. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 22, 1077-1084 (1021).
  28. Sterer, N., et al. Oral malodor reduction by a palatal mucoadhesive tablet containing herbal formulation. Journal of Dentistry. 36, 535-539 (2008).
  29. Greenberg, M., Urnezis, P., Tian, M. Compressed mints and chewing gum containing magnolia bark extract are effective against bacteria responsible for oral malodor. J.Journal of Agricultural and Food Chemistry. 55, 9465-9469 (2007).
  30. Ikuta, K., et al. Anti-viral and anti-bacterial activities of an extract of blackcurrants (Ribes nigrum L). Microbiology and Immunology. 56, 805-809 (2012).
  31. Chatterjee, A., Saluja, M., Agarwal, G., Alam, M. Green tea: A boon for periodontal and general health. Journal of Indian Society of Periodontology. 16, 161-167 (2012).
  32. Sterer, N., Rubinstein, Y. Effect of various natural medicinals on salivary protein putrefaction and malodor production. Quintessence International. 37, 653-658 (2006).
  33. Steinberg, D., Kaine, G., Gedalia, I. Antibacterial effect of propolis and honey on oral bacteria. American Journal of Dentistry. 9, 236-239 (1996).
  34. Koo, H., et al. In vitro antimicrobial activity of propolis and Arnica montana against oral pathogens. Archives of Oral Biology. 45, 141-148 (2000).
  35. Botushanov, P. I., Grigorov, G. I., Aleksandrov, G. A. A clinical study of a silicate toothpaste with extract from propolis. Folia Medica. 43, 28-30 (2001).
  36. Jeon, J. G., Rosalen, P. L., Falsetta, M. L., Koo, H. Natural products in caries research: current (limited) knowledge, challenges and future perspective. Caries Research. 45, 243-263 (2011).
  37. Jafarzadeh Kashi, T. S., et al. Evaluating the In-vitro Antibacterial Effect of Iranian Propolis on Oral Microorganisms. Iranian Journal of Pharmaceutical Research : IJPR. 10, 363-368 (2011).
  38. Duarte, S., et al. The influence of a novel propolis on mutans streptococci biofilms and caries development in rats. Archives of Oral Biology. 51, 15-22 (2006).
  39. Ozan, F., et al. Effect of mouthrinse containing propolis on oral microorganisms and human gingival fibroblasts. European Journal of Dentistry. 1, 195-201 (2007).
  40. Ikeno, K., Ikeno, T., Miyazawa, C. Effects of propolis on dental caries in rats. Caries Research. 25, 347-351 (1991).
  41. Choi, S. J., et al. Fast responding exhaled-breath sensors using WO3 hemitubes functionalized by graphene-based electronic sensitizers for diagnosis of diseases. ACS Applied Materials & Interfaces. 6, 9061-9070 (2014).
  42. Choi, S. J., et al. Selective detection of acetone and hydrogen sulfide for the diagnosis of diabetes and halitosis using SnO(2) nanofibers functionalized with reduced graphene oxide nanosheets. ACS Applied Materials & Interfaces. 6 (2), 2588-2597 (2014).
  43. Aylikci, B. U., Colak, H. Halitosis: From diagnosis to management. Journal of Natural Science, Biology, and Medicine. 4, 14-23 (2013).
  44. Goldberg, S., et al. Cadaverine as a putative component of oral malodor. Journal of Dental Research. 73, 1168-1172 (1994).
  45. Kanu, A. B., et al. Rapid screening of 2-[18F]-fluoro-2-deoxy-D-glucose infusions for volatile organic compound contaminants by solid phase microextraction with gas chromatography-selective ion monitoring mass spectrometry SPME-GC-SIMMS). Applied Radiation and Isotopes : Including Data, Instrumentation and Methods for Use in Agriculture, Industry. 58, 193-200 (2003).
  46. Han, D. H., Lee, S. M., Lee, J. G., Kim, Y. J., Kim, J. B. Association between viral hepatitis B infection and halitosis. Acta Odontologica Scandinavica. 72, 274-282 (2014).
  47. Awano, S., et al. Relationship between volatile sulfur compounds in mouth air and systemic disease. Journal of Breath Research. 2, 017012(2008).
  48. Porter, S. R. Diet and halitosis. Current Opinion in Clinical Nutrition and Metabolic. 14, 463-468 (2011).
  49. Sekirov, I., Russell, S. L., Antunes, L. C., Finlay, B. B. Gut microbiota in health and disease. Physiological Reviews. 90 (3), 859-904 (2010).
  50. Di Cerbo, A., Canello, S., Guidetti, G., Laurino, C., Palmieri, B. Unusual antibiotic presence in gym trained subjects with food intolerance; a case report. Nutr Hosp. 30 (2), 395-398 (2014).
  51. Freeman, L. M., Chandler, M. L., Hamper, B. A., Weeth, L. P. Current knowledge about the risks and benefits of raw meat–based diets for dogs and cats. J Am Vet Med Assoc. 243 (11), 243-2411 (2013).

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Leczenie halitozyprzeno ny chromatograf gazowylotne zwi zki siarkiOral Chromabadanie weterynaryjnepobieranie oddechupomiar VSCokres leczeniaokres wyp ukiwania
Skuteczność terapeutyczna suplementu diety w leczeniu halitozy u psów
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki Korzystania

Zasady

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.