Artykuł metodologiczny

Trening podejścia warunkowego Pawłowa u szczurów

DOI:

10.3791/53580

⸱

4 lutego 2016

 , 
1Neuroscience Graduate Program, University of Michigan, 2Department of Psychiatry, University of Michigan

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tutaj prezentujemy protokół wywołujący u szczurów zachowania warunkowe oparte na podejściu Pawłowa. Procedura ta może być wykorzystana do pomiaru indywidualnych różnic w tendencji do zbliżania się i przypisywania istotności bodźców sygnałom związanym z nagrodą oraz badania podatności na uzależnienie.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wskazówki, które są przypadkowo sparowane z bezwarunkowymi, nagradzającymi bodźcami, mogą same nabrać satysfakcjonujących właściwości poprzez proces znany jako przypisywanie istotności bodźców, czyli przekształcanie neutralnych bodźców w atrakcyjne, "pożądane" bodźce zdolne do motywowania zachowania. Podejście warunkowe Pawłowa (PCA) rozwija się po niezależnej od odpowiedzi prezentacji bodźca warunkowego (CS; np. dźwignia), która przewiduje dostarczenie bodźca bezwarunkowego (US; np. granulka żywności) i może być wykorzystana do pomiaru istotności zachęty. Podczas treningu mogą rozwinąć się trzy wzorce reakcji warunkowych (CR): zachowanie związane ze śledzeniem znaków (CR kierowane przez CS), zachowanie ze śledzeniem celów (CR kierowane przez US) i reakcja pośrednia (obie CR). Osoby śledzące znaki przypisują znaczenie zachęt sygnałom związanym z nagrodą i są bardziej podatne na wywołane przez wskazówki przywrócenie poszukiwania narkotyków, a także innych zachowań związanych z uzależnieniem, co sprawia, że PCA jest potencjalnie cenną procedurą badania podatności na uzależnienie. W tym miejscu opisujemy materiały i metody wykorzystywane do wywoływania zachowań PCA u szczurów, a także analizujemy i interpretujemy zachowanie PCA w poszczególnych eksperymentach.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Przejście od zażywania narkotyków do uzależnienia wiąże się ze złożonymi interakcjami między Pawłowskim a instrumentalnym uczeniem się1,2. Podczas zażywania narkotyków i zachowań związanych z poszukiwaniem narkotyków, działania i wyniki są uczone poprzez procesy instrumentalne; jednak relacje między bodźcami (np. sygnałami związanymi z narkotykami) a nagrodami są również uczone poprzez procesy Pawłowa. Wskazówki Pawłowa nabierają wartości predykcyjnej, ale mogą również nabierać motywacyjnej wartościmotywacyjnej3, dzięki czemu stają się atrakcyjne, pożądane oraz zdolne do promowania i utrzymywania zachowań związanych z poszukiwaniem nagrody4.

Wiele procedur badających uczenie się nagrody u zwierząt, jednak nie pozwala na rozdzielenie uczenia się predykcyjnego od motywacyjnego motywacyjnego. Na przykład w procedurach samodzielnego podawania leków zwykle stosuje się zarówno sytuacje instrumentalne, jak i Pawłowa, tak że szczury uczą się wykonywać czynność (np. szturchanie nosem, naciskanie dźwigni itp.) w celu uzyskania wyniku (tj. dożylnego wlewu leku). Satysfakcjonujący wynik jest również połączony z bodźcami Pawłowa (np. oświetlenie portu do szturchania nosa, prezentacja światła wskazującego, dźwięk pompy infuzyjnej, interoceptywne uczucie dostarczania płynu do krwiobiegu itp.). W tych procedurach często nie jest jasne, czy wskazówki wspierają działania ukierunkowane na cel po prostu ze względu na ich predykcyjny związek z nagrodą, czy też wskazówki nabrały własnych właściwości motywacyjnych motywacyjnych.

Aby eksperymentalnie oddzielić motywacyjną wartość motywacyjną od wartości predykcyjnej bodźców Pawłowa, nasze laboratorium stosuje procedurę podejścia warunkowanego Pawłowa (PCA) w celu identyfikacji szczurów, które przypisują istotność motywacyjną sygnałom związanym z nagrodą. Podczas sesji treningowej bodziec warunkowy (CS; np. dźwignia) niezależnie od odpowiedzi przewiduje dostarczenie bodźca bezwarunkowego (US; np. granulka spożywcza). W trakcie wielu sesji treningowych rozwijają się trzy fenotypy: śledzenie znaków (reakcja warunkowa kierowana przez CS [CR]), śledzenie celów (CR kierowana przez US) i odpowiedź pośrednia (obie CR). W przypadku trackerów celów (GT) CS jest wykorzystywany jako predyktor dostarczania nagród; jednak w przypadku osób śledzących znaki (ST) CS przypisuje się znaczenie motywacyjne, stając się atrakcyjnym i pożądanym. W tej recenzji przedstawiamy sprzęt, konfigurację i przetwarzanie danych niezbędne do przeprowadzenia procedury PCA. Ponadto przedstawiamy reprezentatywne wyniki treningu PCA, nakreślamy ważne rozważania eksperymentalne i omawiamy przypuszczalną użyteczność procedur PCA w badaniu uzależnień i innych zaburzeń neuropsychiatrycznych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury zostały zatwierdzone przez Uniwersytecką Komisję ds. Wykorzystywania i Opieki nad Zwierzętami (UCUCA; Uniwersytet Michigan, Ann Arbor, Michigan).

1. Sprzęt i oprogramowanie

  1. Zaopatrz się w komercyjne komory operacyjne i urządzenia. Zobacz tabelę materiałów.
  2. Przeprowadzenie szkolenia w komorach kondycjonowania szczurów (24,1 cm szerokości × 20,5 cm głębokości x 29,2 cm wysokości), umieszczonych w szafach wyciszających z wentylatorami zapewniającymi hałas otoczenia.
  3. Wyposaż każdą komorę w magazynek na pelety (gniazdo), umieszczony centralnie w przedniej ścianie komory operacyjnej o szerokości 21,6 cm, 3 cm nad podłogą kratki ze stali nierdzewnej. Upewnij się, że magazyn na pelety zawiera czujnik podczerwieni, który jest w stanie wykryć wejście głowicy do urządzenia.
  4. Podłącz magazynek na pelety do dozownika pelletu, który dostarcza granulki spożywcze o smaku bananowym (45 mg).
  5. W sposób przeciwwagi umieść jedną wysuwaną dźwignię (CS) około 2.5 cm po obu stronach pojemnika na pelety (po lewej lub prawej stronie) 3 cm nad podłogą kratki ze stali nierdzewnej.
  6. Upewnij się, że dźwignia zawiera w sobie diodę LED, aby wysunięta dźwignia była bardziej widoczna wizualnie.
  7. Jeśli używasz wysuwanej dźwigni, skalibruj dźwignię, umieszczając odważnik kalibracyjny 10 g na górze dźwigni, a następnie wyreguluj kalibracyjną (znajdującą się na górze urządzenia) za pomocą klucza do nakrętek sześciokątnych, aż ciężarek sam będzie w stanie wcisnąć dźwignię.
  8. Wyposaż się w czerwoną lampę domową w górnej części komory na ścianie naprzeciwko gniazda magazynka.
    Uwaga: Czerwone światło domu służy do zwiększenia widoczności podświetlanej dźwigni.

2. Szkolenie PCA

  1. Po przyjeździe należy dobierać w pary dorosłe samce szczurów Sprague Dawley (250-300 g) i pozostawić je w spokoju przez co najmniej dwa dni w kolonii inwentarskiej, która jest utrzymywana w 12-godzinnym cyklu światła/ciemności.
  2. Delikatnie dotykaj każdego szczura przez co najmniej 1 minutę dziennie przez dwa dni, aby przyzwyczaić szczury do kontaktu z ludźmi. Zapewnij szczurom ad libitum dostęp do pożywienia i wody w kolonii inwentarskiej.
  3. Zapoznaj szczury z granulkami pokarmowymi o smaku bananowym, umieszczając granulki pokarmowe w ich domowych klatkach (około 15 granulek na szczura) na dwa dni, zaczynając trzy dni przed szkoleniem PCA.
    Uwaga: Jeśli szczury są trzymane w parach, przydatne jest równomierne podzielenie granulek po dwóch stronach klatki domowej.
  4. Program przedtreningowy
    Uwaga: Całe nasze programowanie odbywa się przy użyciu notacji MEDState (dla oprogramowania Med Associates), a instrukcja jest dostępna online (mednr.com/pdf/doc003_MedPCProgramr.pdf). Programy są pisane jako niesformatowane dokumenty tekstowe (np. tekst ASCII lub DOS) przy użyciu Notacji MedState, zapisywane z odpowiednim rozszerzeniem (np. [nazwa pliku].mpc), a następnie tłumaczone za pomocą programu MED-PC, Trans IV. Wszystkie te kroki są opisane bardziej szczegółowo we wspomnianej wcześniej instrukcji programowania.
    1. Stwórz program przedtreningowy, który dostarcza pięćdziesiąt granulek żywności w zmiennym czasie (VT) 30 sekund 5 minut po rozpoczęciu programu (tj. jedna granulka żywności jest dostarczana średnio co 30 sekund, ale rzeczywista dostawa zmienia się losowo w zakresie 0-60 sekund).
    2. Napisz program przedtreningowy w taki sposób, aby świeciło się czerwone światło w domu, ale dźwignia pozostawała schowana przez czas trwania programu (około 25 minut).
    3. Wykonaj trening wstępny i wszystkie późniejsze eksperymenty podczas cyklu świetlnego.
    4. Dzień przed treningiem PCA umieść każdego szczura w komorze operacyjnej, zamknij i zatrzaśnij drzwi komory oraz zamknij drzwi szafki tłumiącej dźwięk
      5. .
    5. Rozpocznij program przedtreningowy tak szybko, jak to możliwe po umieszczeniu każdego szczura w jego komorze.
    6. Usuń każdego szczura z jego komory tak szybko, jak to możliwe po zakończeniu programu.
    7. Zapisz liczbę spożytych granulek i wyklucz szczury, które nie spożyją wszystkich granulek z dalszych testów.
  5. Utwórz program szkoleniowy PCA, który obejmuje 25 prób w ciągu około 40 minut, rozpoczynając 1 minutę po rozpoczęciu programu.
    1. Napisz program tak, aby podczas każdej próby dźwignia była wysuwana do komory i podświetlana przez 8 sekund.
    2. Zaprogramuj wycofanie dźwigni tak, aby natychmiast po niej nastąpiło niezależne od odpowiedzi dostarczenie jednego granulatu spożywczego do magazynu peletów.
    3. Oddziel każdą próbę zgodnie z harmonogramem VT 90 sekund (tj. wysunięcie dźwigni i późniejsze dostarczanie granulatu spożywczego następuje średnio co 90 sekund, ale rzeczywiste dostarczanie zmienia się losowo w zakresie 30-150 sekund).
    4. Umieść każdego szczura w komorze kondycjonującej, zamknij i zatrzaśnij drzwi komory oraz zamknij drzwi szafy tłumiącej dźwięk
      5. .
    5. Rozpocznij program treningowy PCA tak szybko, jak to możliwe po umieszczeniu każdego szczura w jego komorze.
    6. Usuń każdego szczura z jego komory tak szybko, jak to możliwe po zakończeniu programu.
    7. Wyklucz szczury, które nie spożyją wszystkich granulek z dalszych testów.

3. Przetwarzanie danych

  1. Przenieś informacje wyjściowe do arkusza kalkulacyjnego (np. dokumentu arkusza kalkulacyjnego).
  2. Utwórz profil, który wyodrębnia informacje identyfikujące (numer tematu, datę rozpoczęcia, godzinę rozpoczęcia i numer pudełka), a także informacje wyjściowe (liczbę i opóźnienie naciśnięć dźwigni i wpisów w magazynie).
    Uwaga: W eksperymentach wpisy w czasopismach innych niż CS są również wyodrębniane przez profil. Zdefiniuj wpisy magazynka inne niż CS jako wejścia do magazynka, które mają miejsce poza okresem 8 sekund CS i podczas okresu VT 90 sekund (tj. 60-120 sekund), podczas których dźwignia nie jest wysunięta.
  3. Dalsze przetwarzanie danych poprzez ograniczenie opóźnień naciśnięcia dźwigni i wejścia magazynka do 8 sekund (tj. czas trwania prezentacji CS). Można to osiągnąć w arkuszu kalkulacyjnym za pomocą funkcji JEŻELI: JEŻELI(X >8,8,X).
  4. Oblicz wyniki dla błędu odpowiedzi (tj. całkowitej liczby naciśnięć dźwigni i wpisów w magazynie podczas sesji; [Naciśnięcia dźwigni - Wpisy magazynka] / [Naciśnięcia dźwigni + Wpisy magazynka]), Wynik opóźnienia (tj. średnie opóźnienie do wykonania naciśnięcia dźwigni lub wejścia do magazynka podczas sesji; [opóźnienie wejścia do magazynka - opóźnienie naciśnięcia dźwigni]/8) oraz różnicy prawdopodobieństwa (tj. proporcji naciśnięć dźwigni lub wejść do magazynka; [Prawdopodobieństwo naciśnięcia dźwigni - prawdopodobieństwo wejścia do magazynka])5.
    Uwaga: W przypadku tych formuł wszystkie wyniki powinny mieścić się w zakresie od 1,0 do -1,0.
  5. Oblicz wynik indeksu PCA dla każdego szczura, uśredniając jego odchylenie odpowiedzi, wynik opóźnienia i różnicę prawdopodobieństwa w każdej indywidualnej sesji.
    Uwaga: Wynik indeksu PCA powinien mieścić się w zakresie od 1,0 do -1,0.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ustaliliśmy, że 5-7 codziennych sesji treningu PCA jest wystarczających do fenotypowania szczurów jako ST, GT oraz responderów pośrednich (IR), choć zwierzęta mogą być trenowane dłużej, w zależności od potrzeb konkretnego laboratorium lub eksperymentu. Fenotypowanie opiera się na wynikach indeksu PCA, które oblicza się poprzez uśrednienie błędu reakcji (response bias), wyniku latencji oraz różnicy prawdopodobieństwa dla poszczególnych sesji, zgodnie z opisem w protokole. Fenotypy określa ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Trening PCA może być wykorzystany do określenia indywidualnej zmienności tendencji do przypisywania istotności bodźców sygnałom warunkowym, co zostało uznane za ważny składnik podatności na uzależnienie. Na przykład wcześniej wykazano, że ST przypisują istotność bodźców zarówno sygnałom żywieniowym, jak i lekowym6, a zarówno sygnały związane z jedzeniem, jak i narkotykami aktywują podobne obszary mózgu w obwodzie migdałowato-prążkowiowo-wzgórzowym w STs7. Co więcej, ST są bardziej impulsywne8

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca została sfinansowana przez Wydział Psychiatrii Uniwersytetu Michigan (U032826; JDM), Narodowy Instytut ds. Nadużywania Narkotyków (NIDA; K08 DA037912-01; JDM) oraz stypendium Departamentu Obrony (DoD) National Defense Science and Engineering Graduate (NDSEG) Fellowship (CJF).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Standardowa modułowa komora testowa z modyfikowaną górą dla RatMed Associates, Inc.ENV-008CTTop ma otwór dostępowy na smycze do dostarczania leków lub inne systemy uprzęży; w zestawie ENV-008CTC (Cover Insert) do gniazda dostępu
Kabina tłumiąca dźwięk z rozszerzonego PVCMed Associates, Inc.ENV-022V
PCI dla maksymalnie szesnastu izb ChambersMed Associates, Inc.MED-SYST-16W zależności od liczby komór operacyjnych, dostępny jest również MED-SYST-8 (PCI Operating Package for to Eight Chambers)
SmartCtrlMed Associates, Inc.DIG-716P2
uniwersalny, 25′ (7,6 mln)Med Associates, Inc.SG-210CBW oparciu o indywidualne potrzeby, SG-210CB-50 (uniwersalny, 50′ [15,2 mln]) jest również dostępny
18″ (45,7 cm) 3-stykowy mini-MolexMed Associates, Inc.SG-216AW oparciu o indywidualne potrzeby, SG-216A-2 (2′ [61.0 cm] 3-Pin Mini-Molex) dostępny jest również
zasilający, 25′ (7,6 m) Med Associates, Inc.SG-210CP-25
Podłoga ze stali nierdzewnej dla RatMed Associates, Inc.ENV-005W zależności od preferencji, dostępna jest również ENV-005A (podłoga z siatki ze stali nierdzewnej do myszy 
Odpady wielokrotnego użytku PanMed Associates, Inc.ENV-007-P3
Pakiet panelu wypełniającego do standardowej modułowej komory testowejMed Associates, Inc.ENV-008-FP
Modułowy dozownik pelletu dla szczurów, 45 mgMed Associates, Inc.ENV-203M-45
Pojemnik na pelety, koryto typuMed Associates, Inc.ENV-200R2MW zależności od preferencji, dostępny jest również ENV-200R1M (pojemnik na pellet, typ kubka) 
Wysuwana dźwigniaMed Associates, Inc.ENV-112CMKalibrowany do 25 g; musi być dostosowany do 10 g przed treningiem podejścia warunkowego Pawłowa
Chowana dźwignia Cue LightMed Associates, Inc.ENV-112CML
Oświetlenie domowe dla RatMed Associates, Inc.Żarówki zamienne ENV-215M
100 mA, zestaw 10 sztukMed Associates, Inc.SG-800RCzerwony; do użytku z ENV-215M (House Light for Rat)
Pellets, 45 mg, Dieta oczyszczona z naczelnych, Smak bananowyBio-ServF005950 000/pudełko 
Pakiet operacyjny

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Everitt, B. J., Robbins, T. W. Neural systems of reinforcement for drug addiction: from actions to habits to compulsion. Nature Neurosci. 8 (11), 1481-1489 (2005).
  2. Everitt, B. J. Neural and psychological mechanisms underlying compulsive drug seeking habits and drug memories--indications for novel treatments of addiction. Eur J Neurosci. 40 (1), 2163-2182 (2014).
  3. Robinson, T. E., Berridge, K. C. The neural basis of drug craving: an incentive-sensitization theory of addiction. Brain Res Brain Res Rev. 18 (3), 247-291 (1993).
  4. Milton, A. L., Everitt, B. J. The psychological and neurochemical mechanisms of drug memory reconsolidation: implications for the treatment of addiction. Eur J Neurosci. 31 (12), 2308-2319 (2010).
  5. Meyer, P. J., et al. Quantifying individual variation in the propensity to attribute incentive salience to reward cues. PloS One. 7 (6), e38987(2012).
  6. Yager, L. M., Robinson, T. E. A classically conditioned cocaine cue acquires greater control over motivated behavior in rats prone to attribute incentive salience to a food cue. Psychopharmacology (Berl). 226 (2), 217-228 (2013).
  7. Yager, L. M., Pitchers, K. K., Flagel, S. B., Robinson, T. E. Individual variation in the motivational and neurobiological effects of an opioid cue. Neuropsychopharmacology. 40 (5), (2015).
  8. Lovic, V., Saunders, B. T., Yager, L. M., Robinson, T. E. Rats prone to attribute incentive salience to reward cues are also prone to impulsive action. Behav Brain Res. 223 (2), 255-261 (2011).
  9. Saunders, B. T., Robinson, T. E. Individual variation in the motivational properties of cocaine. Neuropsychopharmacology. 36 (8), 1668-1676 (2011).
  10. Saunders, B. T., Yager, L. M., Robinson, T. E. Cue-evoked cocaine 'craving': role of dopamine in the accumbens core. J Neurosci. 33 (35), 13989-14000 (2013).
  11. Kearns, D. N., Gomez-Serrano, M. A., Weiss, S. J., Riley, A. L. A comparison of Lewis and Fischer rat strains on autoshaping (sign-tracking), discrimination reversal learning and negative auto-maintenance. Behav Brain Res. 169 (2), 193-200 (2006).
  12. Fitzpatrick, C. J., et al. Variation in the form of Pavlovian conditioned approach behavior among outbred male Sprague-Dawley rats from different vendors and colonies: sign-tracking vs. goal-tracking. PloS One. 8 (10), e75042(2013).
  13. Anderson, R. I., Spear, L. P. Autoshaping in adolescence enhances sign-tracking behavior in adulthood: impact on ethanol consumption. Pharmacol Biochem Behav. 98 (2), 250-260 (2011).
  14. Pitchers, K. K., et al. Individual variation in the propensity to attribute incentive salience to a food cue: Influence of sex. Behav Brain Res. 278, 462-469 (2015).
  15. Anderson, R. I., Bush, P. C., Spear, L. P. Environmental manipulations alter age differences in attribution of incentive salience to reward-paired cues. Behav Brain Res. 257, 83-89 (2013).
  16. Beckmann, J. S., Bardo, M. T. Environmental enrichment reduces attribution of incentive salience to a food-associated stimulus. Behav Brain Res. 226 (1), 331-334 (2012).
  17. Burns, M., Domjan, M. Topography of spatially directed conditioned responding: effects of context and trial duration. J Exp Psychol Anim Behav Process. 27 (3), 269-278 (2001).
  18. Christie, J. Spatial contiguity facilitates Pavlovian conditioning. Psychon Bull Rev. 3 (3), 357-359 (1996).
  19. Meyer, P. J., Cogan, E. S., Robinson, T. E. The form of a conditioned stimulus can influence the degree to which it acquires incentive motivational properties. PloS One. 9 (6), e98163(2014).
  20. Beckmann, J. S., Chow, J. J. Isolating the incentive salience of reward-associated stimuli: value, choice, and persistence. Learn Mem. 22 (2), 116-127 (2015).
  21. Flagel, S. B., et al. A selective role for dopamine in stimulus-reward learning. Nature. 469 (7328), 53-57 (2011).
  22. Saunders, B. T., Robinson, T. E. The role of dopamine in the accumbens core in the expression of Pavlovian-conditioned responses. Eur J Neurosci. 36 (4), 2521-2532 (2012).
  23. Clark, J. J., Collins, A. L., Sanford, C. A., Phillips, P. E. Dopamine encoding of Pavlovian incentive stimuli diminishes with extended training. J Neurosci. 33 (8), 3526-3532 (2013).
  24. Anselme, P., Robinson, M. J., Berridge, K. C. Reward uncertainty enhances incentive salience attribution as sign-tracking. Behav Brain Res. 238, 53-61 (2013).
  25. Robinson, M. J., Anselme, P., Fischer, A. M., Berridge, K. C. Initial uncertainty in Pavlovian reward prediction persistently elevates incentive salience and extends sign-tracking to normally unattractive cues. Behav Brain Res. 266, 119-130 (2014).
  26. Gallistel, C. R., Gibbon, J. Time, rate, and conditioning. Psychol Rev. 107 (2), 289-344 (2000).
  27. Morrow, J. D., Maren, S., Robinson, T. E. Individual variation in the propensity to attribute incentive salience to an appetitive cue predicts the propensity to attribute motivational salience to an aversive cue. Behav Brain Res. 220 (1), 238-243 (2011).
  28. Morrow, J. D., Saunders, B. T., Maren, S., Robinson, T. E. Sign-tracking to an appetitive cue predicts incubation of conditioned fear in rats. Behav Brain Res. 276, 59-66 (2015).
  29. Saunders, B. T., O'Donnell, E. G., Aurbach, E. L., Robinson, T. E. A cocaine context renews drug seeking preferentially in a subset of individuals. Neuropsychopharmacology. 39 (12), 2816-2823 (2014).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Komory warunkowania instrumentalnegozachowanie ledzenia sygna uzachowanie ledzenia celupodawanie peletu pokarmowegorejestracja naciskania d wignianaliza wej do zasobnikawyniki indeksu PCAfenotypy behawioralne szczur wpomiar istotno ci bod ca zach ty

Powiązane artykuły