Artykuł metodologiczny

Oznaczanie karbonylowych grup funkcyjnych w bioolejach metodą miareczkowania potencjometrycznego: metoda Faixa

DOI:

10.3791/55165

7 lutego 2017

W tym artykule

Podsumowanie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tutaj prezentujemy technikę miareczkowania potencjometrycznego do dokładnego ilościowego oznaczania związków karbonylowych w bio-olejach pirolitycznych.

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wiadomo, że związki karbonylowe obecne w bio-olejach są odpowiedzialne za zmiany właściwości biooleju podczas przechowywania i podczas uszlachetniania. W szczególności karbonylki powodują wzrost lepkości (często określany jako "starzenie") podczas przechowywania bioolejów. W związku z tym zawartość karbonylu była wcześniej stosowana jako metoda śledzenia reakcji starzenia się i kondensacji biooleju z mniejszą zmiennością niż pomiary lepkości. Dodatkowo karbonylki są również odpowiedzialne za tworzenie koksu w procesach uszlachetniania biooleju. Biorąc pod uwagę znaczenie karbonylków w bioolejach, dokładne metody analityczne do ich ilościowego oznaczania są bardzo ważne dla społeczności zajmującej się bioolejami. Metody miareczkowania potencjometrycznego oparte na oksymacji karbonylowej są od dawna stosowane do oznaczania zawartości karbonylu w bioolejach pirolitycznych. W tym miejscu przedstawiamy modyfikację tradycyjnych procedur oksymacji karbonylu, która skutkuje krótszym czasem reakcji, mniejszym rozmiarem próbki, większą precyzją i dokładniejszymi oznaczeniami karbonylu. Podczas gdy tradycyjne metody oksymacji karbonylowej zachodzą w temperaturze pokojowej, przedstawiona tutaj metoda Faix zachodzi w podwyższonej temperaturze 80 °C.

Wprowadzenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Chociaż bio-oleje pirolityczne składają się z dużej różnorodności związków i chemicznych grup funkcyjnych, kwantyfikacja grup karbonylowych jest szczególnie ważna. Wiadomo, że karbonylki są odpowiedzialne za niestabilność biooleju zarówno podczas przechowywania1, jak i processingu2. Przedstawiona tutaj metoda miareczkowania jest prostą techniką, która pozwala wiarygodnie określić ilościowo całkowitą zawartość karbonylu w bioolejach. Tą metodą określa się ilościowo tylko aldehydowe i ketonowe grupy funkcyjne; Kwas karboksylowy i grupy laktonowe nie są oznaczane ilościowo.

Do analizy bioolejów, kwantyfikacja grup karbonylowych metodą miareczkowania tradycyjnie odbywa się przy użyciu metody Nicolaides3. Metoda ta jest powszechnie stosowana w literaturze dotyczącej bioolejów4,5,6,7. Jest to prosta procedura, w której karbonylki są przekształcane w odpowiadający im oksym (patrz rysunek 1). Uwolniony HCl reaguje z pirydyną, aby wymusić równowagę do końca. Sprzężony kwas pirydyny miareczkuje się znaną ilością NaOH (titranta zasadowego). Liczba użytych ekwiwalentów NaOH jest stechiometrycznie równoważna molom karbonylu obecnego w biooleju.

Metoda Nicolaidesa ma jednak kilka ograniczeń. Może wymagać czasu reakcji przekraczającego 48 godzin, aby osiągnąć zakończenie. To poważnie ogranicza przepustowość próbek. Wykorzystuje pirydynę, która jest toksyczna. Wymagana jest masa próbki od 1 do 2 g. Masa użytej próbki zależy od ilości obecnego chlorowodorku hydroksyloaminy i zawartości karbonylu w próbce. Jeżeli wstępne oszacowania masy użytej próbki są nieprawidłowe, miareczkowanie należy powtórzyć.

Faix et al.8 opracował metodę, która została tutaj zmodyfikowana, aby rozwiązać problemy związane z metodą Nicolaidesa. Reakcję przeprowadza się w temperaturze 80 °C przez 2 godziny, zwiększając w ten sposób przepustowość próbki. Pirydyna została zastąpiona trietanoloaminą, która jest mniej toksyczną substancją chemiczną. Wielkość próbki można zmniejszyć do 100 do 150 mg. Trietanoloamina zużywa uwolniony HCl, doprowadzając reakcję do zakończenia, a niespożyta trietanoloamina jest miareczkowana bezpośrednio. Wtórne miareczkowanie hydroksyloaminy nie jest konieczne. Porównanie tych metod miareczkowania wykazało, że metoda Nicolaidesa znacznie zaniża zawartość karbonylu w bioolejach9.

Opisana tutaj metoda została zmodyfikowana w stosunku do oryginalnej metody8, aby była bardziej przydatna do analizy bioolejów pirolitycznych. Metoda ta została opracowana do analizy surowych bioolejów pirolitycznych, ale z powodzeniem stosuje się ją do innych rodzajów olejów pochodzących z biomasy, w tym bioolejów hydrorafinowanych. Ponadto metoda ta została wykorzystana do monitorowania zmian zawartości karbonylu zarówno podczas starzenia, jak i uszlachetniania.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Uwaga: Proszę przejrzeć wszystkie istotne karty charakterystyki substancji niebezpiecznej (MSDS) przed rozpoczęciem. Etanol jest łatwopalny. Należy przestrzegać wszystkich obowiązujących procedur postępowania z chemikaliami, a także wszystkich obowiązujących procedur utylizacji odpadów i postępowania z nimi.

1. Roztwory odczynników

  1. Przygotować roztwór chlorowodorku hydroksyloaminy (roztwór A): Dodać 7,7 g chlorowodorku hydroksyloaminy i 50 ml wody dejonizowanej do kolby miarowej o pojemności 250 ml. Gdy wszystkie ciała stałe się rozpuszczą, rozcieńczyć do znakowania etanolem. W ten sposób powstaje 0,55 M roztwór chlorowodorku hydroksyloaminy w 80% (v/v) etanolu.
  2. Przygotować roztwór trietanoloaminy (roztwór B): Dodać 17,4 ml trietanoloaminy do kolby miarowej o pojemności 250 ml. Dodaj 10 ml wody, a następnie rozcieńczyć do kreski etanolem. 95% etanol może być również użyty, jeśli pominięto dodawanie wody. W ten sposób otrzymujemy 0,48 M roztwór trietanoloaminy w 96 % (v/v) etanolu
  3. Przygotować roztwór kwasu solnego. Kup roztwór 0,1 N lub przygotuj go z 10 ml stężonego HCl i 1 l wody.

2. Pobieranie próbek i obchodzenie się z bioolejem

  1. Upewnij się, że próbka oleju ma temperaturę pokojową przed pobraniem próbki. Dokładnie homogenizować (mieszać energicznie wstrząsając przez co najmniej 1 minutę i wizualnie sprawdzić próbkę, aby upewnić się, że jest jednorodna. Niektóre biooleje mogą wymagać dłuższego czasu wstrząsania) bio-oleju w celu uzyskania reprezentatywnej próbki.
  2. Do próbki biooleju użyj od 100 do 150 mg biooleju.
  3. Zminimalizuj narażenie na tlen i ciepło, aby zapobiec degradacji próbki przed analizą.

3. Procedura analityczna

  1. Standaryzacja rozwiązania bazowego
    1. Suszyć Na2CO3 podstawowy wzorzec w piecu w temperaturze 105 °C przez noc, aby zapewnić suchą próbkę. Poczekaj, aż Na2CO3 ostygnie do temperatury pokojowej przed ważeniem.
    2. Odważyć od 100 do 150 mg węglanu sodu do naczynia do miareczkowania, zapisać rzeczywistą masę, dodać mieszadło i dodać tyle wody, aby przykryć bańkę elektrody pH i złącze.
    3. Przenieść próbkę do naczynia do miareczkowania, przemłukując fiolkę reakcyjną kilkakrotnie oddzielnie etanolem i wodą w proporcjach do uzyskania końcowego 80% roztworu etanolu/wody. Miareczkować roztworem kwasu za pomocą automatycznego titratora do punktu końcowego. Zapisz punkt końcowy. Punkt końcowy definiuje się jako punkt przegięcia na krzywej miareczkowania.
    4. Powtórz proces dwukrotnie, aby uzyskać trzy punkty.
    5. Użyj wartości średniej jako normalności roztworu kwasu.
  2. Przygotowanie ślepych prób miareczkowania
    1. Dla ślepej próby A: dodać 0,5 ml dimetylosulfotlenku (DMSO) do 5 ml fiolki z łopatką wirującą.
    2. Dodać 2 ml roztworu chlorowodorku hydroksyloaminy (roztwór A).
    3. Dodać 2 ml roztworu trietanoloaminy (roztwór B).
    4. Szczelnie zakręcić, umieścić w nagrzanym (80 °C) bloku grzewczym lub łaźni wodnej i mieszać przez 2 godziny.
    5. Miareczkować roztworem kwasu za pomocą automatycznego titratora do punktu końcowego i rejestrować punkt końcowy.
    6. Dla ślepej próby B: Jeśli podejrzewa się, że w próbce znajduje się kwas mineralny, dodać 0,5 ml DMSO do 5 ml fiolki za pomocą łopatki wirowej.
    7. Dodać 2 ml roztworu trietanoloaminy (roztwór B).
    8. Szczelnie zakręć i mieszaj w temperaturze 80 °C przez 2 godziny.
    9. Przenieść próbkę do naczynia do miareczkowania, przemłukując fiolkę reakcyjną kilkakrotnie oddzielnie etanolem i wodą w proporcjach do uzyskania końcowego 80% roztworu etanolu/wody. Miareczkować roztworem kwasu za pomocą automatycznego titratora do punktu końcowego. Zapisz punkt końcowy.
    10. Powtórz proces trzy razy, aby uzyskać trzy punkty.
  3. Walidacja metody z zastosowaniem znanego karbonylu
    1. Zważyć ~ 100 mg 4-(benzyloksy)benzaldehydu (4-BBA) do fiolki o pojemności 5 ml, zanotować rzeczywistą wagę, dodać łopatkę wirującą.
    2. Dodaj 0,5 ml DMSO.
    3. Rozpuścić próbkę w 2 ml roztworu chlorowodorku hydroksyloaminy (roztwór A).
    4. Dodać 2 ml roztworu trietanoloaminy (roztwór B).
    5. Zamknij szczelnie pokrywkę i mieszaj w temperaturze 80 °C przez 2 godziny.
    6. Przenieść próbkę do naczynia do miareczkowania, przemłukując fiolkę reakcyjną kilkakrotnie oddzielnie etanolem i wodą w proporcjach do uzyskania końcowego 80% roztworu etanolu/wody. Miareczkować roztworem kwasu za pomocą automatycznego titratora do punktu końcowego. Zapisz punkt końcowy.
    7. Powtórz proces trzy razy, aby uzyskać trzy punkty.
  4. Analiza biooleju przy użyciu metody
    1. Zważyć blisko 100 mg biooleju na 5 ml fiolki, zanotować rzeczywistą wagę i dodać łopatkę wirującą.
    2. Dodaj 0,5 ml DMSO.
    3. Rozpuścić próbkę w 2 ml roztworu chlorowodorku hydroksyloaminy (roztwór A).
    4. Dodać 2 ml roztworu trietanoloaminy (roztwór B).
    5. Zamknij szczelnie pokrywkę i mieszaj w temperaturze 80 °C przez 2 godziny.
    6. Przenieść próbkę do naczynia do miareczkowania, przemłukując fiolkę reakcyjną kilkakrotnie oddzielnie etanolem i wodą w proporcjach do uzyskania końcowego 80% roztworu etanolu/wody. Miareczkować roztworem kwasu za pomocą automatycznego titratora do punktu końcowego. Zapisz punkt końcowy.
    7. Powtórz proces trzy razy, aby uzyskać trzy punkty.
    8. Ślepa próba C: Jeśli podejrzewa się, że w próbce znajduje się kwas mineralny, należy zważyć blisko 100 mg biooleju do fiolki o pojemności 5 ml, zanotować masę i dodać łopatkę wirującą.
    9. Dodaj 0,5 ml DMSO.
    10. Dodać 2 ml roztworu trietanoloaminy (roztwór B).
    11. Szczelnie zakręć i mieszaj w temperaturze 80 °C przez 2 godziny.
    12. Przenieść próbkę do naczynia do miareczkowania, przemłukując fiolkę reakcyjną kilkakrotnie oddzielnie etanolem i wodą w proporcjach do uzyskania końcowego 80% roztworu etanolu/wody. Miareczkować roztworem kwasu za pomocą automatycznego titratora do punktu końcowego. Zapisz punkt końcowy.
    13. Powtórz proces trzy razy, aby uzyskać trzy punkty.

4. Obliczenia

  1. Standaryzacja rozwiązania bazowego
    1. Obliczyć stężenie roztworu kwasu (mol/l), stosując następujące równanie. Masa suchego węglanu sodu w gramach wynosi w1, czystość jest zapisana jako ułamek (tj. 99% to 0,99), a punkt końcowy to mL.
      figure-protocol-1
  2. Walidacja metody z zastosowaniem znanego karbonylu
    1. Obliczyć stężenie 4BBA (mol/l) w próbce, stosując następujące równanie. Masa 4BBA w gramach wynosi w2, czystość 4BBA jest zapisana jako ułamek (tj. 99% to 0,99), stężenie roztworu kwasu (mol/l) wynosi [kwas], punkt końcowy ślepej próby trietanoloaminy/hydroksyloaminy•HCl wynosi EPBA (średnia wartość trzech ślepych prób w ml), a punkt końcowy to EP (w ml).
      figure-protocol-2
  3. Analiza biooleju
    1. Obliczyć stężenie karbonylków w bioolejach [CO] (mmol/g-bio olej) za pomocą następującego równania. Masa biooleju w gramach wynosi w3, stężenie roztworu kwasu (mol/l) wynosi [kwas], punkt końcowy ślepej próby trietanoloaminy/hydroksyloaminy•HCl wynosi EPBA (średnia wartość trzech ślepych prób w ml), a punkt końcowy wynosi EP (w ml).
      figure-protocol-3
  4. Korekcja kwasowości
    UWAGA: Obecność kwasów mineralnych lub kwasów organicznych o pKa < 2 może powodować sztucznie zaniżone wartości karbonylowe w wyniku reakcji kwasu z trietanoloaminą.
    1. W przypadku podejrzenia takiego stanu rzeczy należy wykonać ślepe próby wyszczególnione w sekcjach 3.2.6 i 3.4.8. Masa biooleju w próbce w gramach wynosi w3, EP jest punktem końcowym próbki, a EPBA jest ślepą próbą trietanoloaminy/hydroksyloaminy. EPBB jest punktem końcowym ślepej próby B, EPBC jest punktem końcowym ślepej próby C, a waga (g) oleju użytego w ślepej próbie C wynosi wBC:
      figure-protocol-4
      W przypadku próbek biooleju, które zawierają głównie kwas octowy, jest to zbędny krok.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Typowa krzywa miareczkowania składa się z pojedynczego punktu końcowego, jak pokazano na rysunku 2. Przedstawiono typowe miareczkowanie zarówno dla surowej próbki biooleju, jak i dla miareczkowania ślepej próby. Ponieważ punkt końcowy leży w punkcie przegięcia krzywej miareczkowania; punkt końcowy można łatwo zidentyfikować, wykreślając pierwszą pochodną krzywej miareczkowania (pokazaną na prawej osi, dpH/dV, na rysunku 2). Wiele automatycznych systemów m...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Reprezentatywne krzywe miareczkowania przedstawiono na rysunku 2. Pokazano miareczkowanie ślepej próby, a także miareczkowanie próbki oleju pirolitycznego. Ponadto pokazano pierwszą pochodną krzywej miareczkowania (dpH/dV), co pozwala na łatwe rozpoznanie punktu końcowego miareczkowania. Tabela wstawkowa na rysunku 2 przedstawia potrójne dane zarówno dla oleju pirolitycznego, jak i ślepej próby, z wartościami średnimi i odchyleniami standardowymi. Wartości końcowe podane (w ml) stosuje s...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca była wspierana przez Departament Energii Stanów Zjednoczonych na podstawie umowy nr. DE-AC36-08GO28308 z Narodowym Laboratorium Energii Odnawialnej. Finansowanie zapewnione przez Biuro Efektywności Energetycznej i Technologii Bioenergetycznych Energii Odnawialnej Departamentu Energii Stanów Zjednoczonych. Rząd Stanów Zjednoczonych zachowuje, a wydawca, przyjmując artykuł do publikacji, przyjmuje do wiadomości, że rząd Stanów Zjednoczonych zachowuje niewyłączną, opłaconą, nieodwołalną, ogólnoświatową licencję na publikację lub powielanie opublikowanej formy tego dzieła lub zezwalanie na to innym osobom do celów rządu Stanów Zjednoczonych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Wagaz dokładnością do 0,1 mg
Suchy podgrzewacz blokowy z mieszadłem magnetycznym lub kąpiel w gorącej wodzie z mieszadłem
Automatyczny titratorUżyliśmy automatycznego titratora Metrohm Titrando 809, chociaż dopuszczalne są inne równoważne systemy
Woda
Etanol (klasa odczynnika)CAS # 64-17-5
Chlorowodorek hydroksyloaminy CAS # 5470-11-1
Trietanoloamina CAS #102-71-6
Kwas solny (37%) CAS # 7647-01-0
Węglan sodu (podstawowy wzorzec) SigmaAldrich223484
4-(benzyloksy)benzaldehyd CAS # 4397-53-9
DimetylosulfotlenekCAS # 67-68-5
Szklane fiolki Reacti 5 ml z solidną pokrywką i teflonową przędząThermoscientificTS-13223
Kolba
Pipety
analityczna magnetycznymdejonizowanamiarowa 200 ml wolumetryczne lub mechaniczne

Bibliografia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Oasmaa, A., Kuoppala, E., Solantausta, Y. Fast pyrolysis of forestry residue. 2. physicochemical composition of product liquid. Energy Fuels. 17 (2), 433-443 (2003).
  2. Olarte, M., et al. Stabilization of Softwood-Derived Pyrolysis Oils for Continuous Bio-oil Hydroprocessing. Top. Catal. 59 (1), 55-64 (2016).
  3. Nicolaides, G. The chemical characterization of pyrolytic oils. , Dept. of Chemical Engineering., University of Waterloo. Waterloo, Ontario, Canada. MASc Thesis (1984).
  4. Oasmaa, A., Korhonen, J., Kuoppala, E. An approach for stability measurement of wood-based fast pyrolysis bio-oils. Energy Fuels. 25 (7), 3307-3313 (2011).
  5. Chen, C. L. Methods in Lignin Chemistry. Lin, S. Y., Dence, C. W. , Springer-Verlag. Berlin, Heidelberg, New York. 446-457 (1992).
  6. Scholze, B., Hanser, C., Meier, D. Characterization of the water-insoluble fraction from fast pyrolysis liquids (pyrolytic lignin) Part II. GPC, carbonyl groups, and 13C-NMR. J. Anal. Appl. Pyrolysis. 58-59, 387-400 (2001).
  7. Bayerbach, R., Meier, D. Characterization of the water-insoluble fraction from fast pyrolysis liquids (pyrolytic lignin). Part IV: Structure elucidation of oligomeric molecules. J. Anal. Appl. Pyrolysis. 85 (1-2), 98-107 (2009).
  8. Faix, O., Andersons, B., Zakis, G. Determination of Carbonyl Groups of Six Round Robin Lignins. Holzforschung. 52, 268-272 (1998).
  9. Black, S., Ferrell, J. Determination of Carbonyl Groups in Pyrolysis Bio-oils Using Potentiometric Titration: Review and Comparison of Methods. Energy Fuels. 30 (2), 1071-1077 (2016).
  10. Ferrell, J., et al. Standardization of Chemical Analytical Techniques for Pyrolysis Bio-oil: History, Challenges, and Current Status of Methods. Biofuels, Bioprod. Biorefin. 10, 496-507 (2016).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Oznaczanie grup karbonylowychanaliza bio olejuchlorowodorek hydroksyloaminyautomatyczny miareczkownikpunkt ko cowy miareczkowaniaoleje pirolitycznezawarto grup karbonylowychprzygotowanie odczynnik w

Powiązane artykuły