Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Autologiczna mikropęknięta i oczyszczona tkanka tłuszczowa do artroskopowego leczenia zmian kostno-chrzęstnych kości skokowej

9.8K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/56395

⸱

23 stycznia 2018

 ,  ,  ,  , 
1IRCCS Istituto Ortopedico Galeazzi - C.A.S.C.O. Piede e Caviglia, 2Dipartimento di Scienze Biomediche per la Salute, Università degli Studi di Milano

W tym artykule

Podsumowanie

Celem tego badania jest przedstawienie protokołu artroskopowego leczenia uszkodzeń kostno-chrzęstnych kości skokowej przy użyciu mikrozłamanych i oczyszczonych komórek macierzystych pochodzących z tkanki tłuszczowej.

Streszczenie

W ostatnich latach techniki regeneracyjne są coraz częściej badane i stosowane w leczeniu uszkodzeń kostno-chrzęstnych kości skokowej. W szczególności kilka badań skupiło swoją uwagę na mezenchymalnych komórkach macierzystych pochodzących z tkanki tłuszczowej. Komórki macierzyste pochodzące z tkanki tłuszczowej (ADSC) wykazują cechy morfologiczne i właściwości podobne do innych komórek mezenchymalnych i są zdolne do różnicowania się w kilka linii komórkowych. Co więcej, komórki te są również szeroko dostępne w tkance podskórnej, stanowiąc 10 - 30% normalnej masy ciała, przy stężeniu 5000 komórek na gram tkanki.

W prezentowanej technice, pierwszym krokiem jest pobranie ADSC z jamy brzusznej oraz proces mikrozłamań i oczyszczenia; następnie, zabieg chirurgiczny jest wykonywany całkowicie artroskopowo, z mniejszą ilością rozwarstwienia tkanek miękkich, lepszą wizualizacją stawu i szybszym powrotem do zdrowia w porównaniu ze standardowymi procedurami otwartymi. Artroskopia charakteryzuje się pierwszą fazą, w której zmiana jest identyfikowana, izolowana i przygotowywana za pomocą mikroperforacji; Drugi etap, wykonywany na sucho, polega na iniekcji tkanki tłuszczowej na poziomie zmiany.

Między styczniem 2016 a wrześniem 2016 czterech pacjentów przeszło artroskopowe leczenie uszkodzenia kości skokowej kości skokowej z mikrozłamaniami i oczyszczoną tkanką tłuszczową. Wszyscy pacjenci zgłosili poprawę kliniczną sześć miesięcy po operacji bez zgłaszanych powikłań. Wyniki funkcjonalne w ostatniej obserwacji są zachęcające i potwierdzają, że technika zapewnia niezawodną ulgę w bólu i poprawę u pacjentów z uszkodzeniem kości kostno-chrzęstnej.

Wprowadzenie

Artroskopia jest złotym standardem w leczeniu uszkodzeń kostno-chrzęstnych kości skokowej (OLTs) w celu uśmierzenia bólu, przywrócenia funkcjonalności i poprawy jakości życia, szczególnie u młodych i aktywnych pacjentów.

Obecnie techniki artroskopowe można klasyfikować na trzy sposoby. Technika naprawcza stymuluje komórki pochodzące ze szpiku kostnego poprzez oczyszczenie i mikroperforacje na poziomie zmiany. Technika rekonstrukcyjna polega na zastąpieniu zmiany za pomocą autologicznego lub heterologicznego przeszczepu ostechondralnego. Technika regeneracyjna wykorzystuje zdolność komórek multipotencjalnych do różnicowania się i replikacji w celu rekonstrukcji uszkodzonej tkanki1,2,3,4,5,6.

W ostatnich latach techniki regeneracyjne były przedmiotem licznych badań in vitro i in vivo dotyczących leczenia OLTs, a w szczególności mezenchymalnych komórek macierzystych pochodzących z tkanki tłuszczowej (ADSC)7,8,9. Te mezenchymalne komórki macierzyste wykazują cechy morfologiczne i funkcjonalne podobne do innych komórek multipotencjalnych, wyizolowanych z innych tkanek; Mają również zdolność różnicowania się w kilka różnych linii komórkowych zarówno in vitro, jak i in vivo10,11,12,13. Nacisk na badania dotyczące tych komórek wynika głównie z ich lokalizacji, w rzeczywistości stanowią one od 10% do 30% normalnej masy ciała przy stężeniu 5 000 komórek na gram tkanki13,14. Z drugiej strony czynnik ograniczający wykorzystanie tych komórek jest związany z obchodzeniem się z nimi podczas procedur laboratoryjnych. Lipoaspirat zawierający agregaty adipocytów, włókien kolagenowych i normalnych składników naczyniowych jest przetwarzany enzymatycznie z kolagenem A typu I i poddawany hemolizie przed hodowlą. Celem pracy jest opisanie protokołu postępowania w przypadku zmian kostno-chrzęstnych kości skokowej z wykorzystaniem mikrozłamanej i oczyszczonej tkanki tłuszczowej.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie procedury przeprowadzone w badaniach z udziałem ludzi były zgodne ze standardami etycznymi instytucjonalnego i/lub krajowego komitetu badawczego, a także z Deklaracją Helsińską z 1964 roku i jej późniejszymi poprawkami lub porównywalnymi standardami etycznymi.

1. Historia medyczna

  1. Rozpocznij badanie kliniczne od szczegółowego wywiadu z pacjentem.
    UWAGA: OLT należy zawsze podejrzewać w przypadku niestabilności stawu skokowego z powtarzającymi się skręceniami związanymi z obrzękiem, sztywnością, bólem i zablokowaniem stawu. Co więcej, w wielu przypadkach OLT może być związany z historią chorób ogólnoustrojowych, takich jak choroby zapalne lub naczyniowe, neuropatia lub choroba neurologiczna oraz cukrzyca. Stosowanie leków lub problemy medyczne, które mogą wpływać na gojenie, muszą być ocenione i wzięte pod uwagę.

2. Badanie kliniczne

  1. Oceń pacjenta w pozycji ortostatycznej, aby podkreślić deformację kostki lub tylnej stopy. Oceń funkcję mięśni i ścięgien oraz zakres ruchu kostki (ROM). Często występuje rozlana tkliwość, zwłaszcza podczas maksymalnego zgięcia i wyprostu, a nierzadko spotyka się obszar wrażliwy na dotyk na poziomie stawu stawowego.
  2. Wykonaj test przedniej i tylnej szuflady, aby zidentyfikować współistniejącą niestabilność boczną kostki.
  3. Podczas konsultacji przedoperacyjnej zapisz następujące wyniki kliniczne i funkcjonalne: American Orthopaedic Foot & Ankle Society (AOFAS) wyniki kostki i tylnej stopy 15, Visual analogue scale (VAS) pain score16 oraz 12-Item Short Form Health Survey (SF-12)17.

3. Ocena radiologiczna

  1. Wykonaj obustronne zdjęcie rentgenowskie stopy i kostki. Składa się to z konwencjonalnego wpuszczania przednio-tylnego (AP) z obciążeniem i bocznego widoku kostki z obciążeniem. Wykonaj wpust AP w pozycji neutralnej i z 15-stopniowym obrotem wewnętrznym, aby uzyskać lepszą wizualizację kości skokowej.
    UWAGA: Tylko 50% OLT można zdiagnozować za pomocą zdjęcia rentgenowskiego; W przypadku dużych zmian można zauważyć obszar oderwanej kości otoczony przeziernością promieniowania18.
  2. Wykonaj konwencjonalną tomografię komputerową (tomografię komputerową) stawu skokowego. Tomografia komputerowa pozwala na precyzyjną lokalizację i wielkość zmiany, identyfikując również fragmenty kości w przypadku odwarstwienia. Słabym punktem tomografii komputerowej jest możliwość pokazania stanu chrząstki. Poprzednie badanie wykazało czułość i swoistość odpowiednio 0,81 i 0,99 w wykrywaniu OLT w CT19,20.
  3. Wykonaj rezonans magnetyczny (MRI) stawu skokowego. Rezonans magnetyczny ma fundamentalne znaczenie w ocenie chrząstki i kości podchrzęstnej. Co więcej, rezonans magnetyczny nie wiąże się z promieniowaniem jonizującym i pozwala na lepszą wizualizację tkanek miękkich. W literaturze podawana jest czułość i swoistość na poziomie 96% w wykrywaniu OLTs21,22.

4. Technika chirurgiczna

  1. Pobieranie i przetwarzanie tkanki tłuszczowej
    1. Przygotuj roztwór Kleina: 1 l soli fizjologicznej 9 g/l, 50 ml 1% lidokainy, 1 ml epinefryny 1:1000, 10 ml 8,4% wodorowęglanu sodu i 0,1 ml 10 mg/ml acetonidu triamcynolonu.
    2. Wykonaj dwa nacięcia okołopępowinowe o długości około 0,5 cm za pomocą ostrza skalpela. Wstrzyknąć około 300 ml roztworu Kleina do podskórnej tkanki tłuszczowej brzucha przez nacięcia za pomocą strzykawek o pojemności 60 ml z igłą 18G (Rycina 1).
    3. Zbierz 40 - 45 ml ADSC za pomocą kaniuli 13G podłączonej do strzykawki o pojemności 20 ml i wprowadzonej do zestawu do przetwarzania (Rysunek 2). Zazwyczaj zbiór należy wykonywać w okolicy okołopępowinowej.
    4. Wprowadzić 100 - 130 ml lipoaspiratu do systemu zamkniętego. Wepchnij lipoaspirat do urządzenia przez duży filtr, aby uzyskać pierwszą redukcję klastra; W tym samym czasie odpowiednia ilość roztworu soli fizjologicznej wydostaje się w kierunku worka do marnowania. Kluczową rolę odgrywają marmury ze stali nierdzewnej w celu uzyskania tymczasowej emulsji między olejem, krwią i solą fizjologiczną. Usunąć pozostałości oleju i zanieczyszczoną krew za pomocą grawitacyjnego przeciwprądu roztworu soli fizjologicznej.
    5. Po tym etapie płukania (płynący roztwór wydaje się przezroczysty, a lipoaspirat żółty), zatrzymaj strumień soli fizjologicznej i odwróć urządzenie (szara nakrętka do góry), co prowadzi do redukcji drugiego skupiska tłuszczu. Uzyskaj redukcję, przepychając pływające skupiska tłuszczu przez drugi sześciokątny filtr tnący, wypychając płyn od dołu za pomocą strzykawki o pojemności 10 ml. Zebrać produkt końcowy do strzykawki o pojemności 10 ml podłączonej do górnego otworu urządzenia.
      UWAGA: Zestaw do przetwarzania tkanki tłuszczowej poprawia standardową technikę lipofillingu: w rzeczywistości system składa się z zamkniętego, w pełni zanurzonego, niskociśnieniowego systemu cylindrycznego, w celu uzyskania płynnego i jednolitego produktu zawierającego dużą liczbę perycytów. Procedura ta pozwala na przetwarzanie komórek tłuszczowych wyłącznie za pomocą łagodnych sił mechanicznych i zachowanie integralności zrębu niszy naczyniowej. Proces ten jest możliwie najmniej traumatyczny i sprawia, że produkt końcowy jest dostępny w krótkim czasie (15 - 20 min), bez zabiegów enzymatycznych czy ekspansji. Nieuszkodzone nisze naczyniowo-ostrzowe wspomagają proces gojenia.
    6. Po pobraniu ADSC nałóż bandaż uciskowy na brzuch.
  2. Zabieg chirurgiczny i iniekcja tkanki tłuszczowej
    1. Ułóż pacjenta w pozycji leżącej w znieczuleniu podpajęczynówkowym z opaską uciskową, pod ciśnieniem 250 mmHg, na poziomie uda, aby zmniejszyć krwawienie i umożliwić lepszą wizualizację artroskopową1.
    2. Zaznacz anatomiczne punkty orientacyjne na skórze pisakiem dermograficznym. Punkty orientacyjne są niezbędne, aby uniknąć urazów jatrogennych.
      Zaznacz następujące elementy (Rysunek 3):
      zarówno kostki (boczne (LM), jak i przyśrodkowe (MM))
      linia stawu przedniego (JL), identyfikowana ze zgięciem grzbietowym i podeszwowym stawu skokowego
      ścięgno piszczelowe przednie (TAT) i ścięgno Achillesa
      żyła odpiszczelowa wielka, która biegnie tuż przed kostką przyśrodkową
      nerw strzałkowy powierzchowny (SPN)
    3. Najpierw wykonaj portal przednio-przyśrodkowy tylko przyśrodkowo do ścięgna piszczelowego przedniego, zbiegając się z miękkim miejscem. Ten portal reprezentuje portal podejścia. W większości przypadków wgłębienie z kostką w zgięciu grzbietowym jest widoczne i wyczuwalne.
      1. Przeciąć tylko skórę ostrzem, a następnie przebić kapsułkę rozwarstwieniem. Uważaj, aby ominąć nerw odpiszczelowy i żyłę odpiszczelową wielką. Żyła odpiszczelowa znajduje się 9 mm bocznie do portalu, podczas gdy nerw jest około 7,4 mm bocznie do portalu. Jest to jeden z dwóch głównych portali do przeglądania.
    4. Sprawdź linię stawu, umieść portal przednio-boczny, przyśrodkowy do kostki bocznej i boczny do ścięgna prostownika palca.
      UWAGA: Podczas wykonywania portalu przednio-bocznego należy zapobiec urazom pośredniego grzbietowego nerwu skórnego (boczna gałąź powierzchownego nerwu strzałkowego); Z tego powodu po cięciu po skórze należy wykonać rozwarstwienie.
    5. Sprawdź chrząstkę stawową, aby ocenić rozmiar i położenie. Oceń stan i jakość chrząstki za pomocą palpatora. Zmiany kostno-chrzęstne kości skokowej są zwykle zlokalizowane tylno-przyśrodkowo lub przednio-bocznie.
      1. Leczenie artroskopowe należy wykonać za pomocą szerokokątnych artroskopów 2,7 mm o kącie widzenia 30°, chociaż niektórzy chirurdzy używają większego artroskopu 4 mm i utrzymują instrument w przednim zakątku stawu. Nieinwazyjne techniki rozpraszania stawów i zgięcie podeszwowe mogą być stosowane w celu uzyskania dostępu do większości kopuły skokowej.
      2. W przypadku zmiany w odcinku tylnym należy przezskórnie umieścić rozsiewacz Hintermann, aby odwrócić uwagę stawu i umożliwić odsłonięcie zmiany. Rozsiewacz Hintermann posiada ramię dźwigni otwierającej umieszczone na dwóch drutach K umieszczonych wcześniej w kości piszczelowej i skokowej przyśrodkowo lub bocznie, w zależności od strony zmiany. W przypadku zmiany bocznej należy zwrócić uwagę na wprowadzenie proksymalnego drutu K do kości piszczelowej, omijając kość strzałkową, aby uzyskać lepsze rozproszenie stawu.
    6. Przygotować zmianę za pomocą łyżeczki, usuwając uszkodzoną i niestabilną chrząstkę, zwapniałą warstwę oraz martwiczą i sklerotyczną kość w celu stworzenia zamkniętej zmiany o regularnym kształcie z brzegami barkowymi. Na tym etapie użyj standardowej kirety artroskopowej (Rysunek 4).
    7. Stymuluj komórki macierzyste szpiku kostnego z kości podchrzęstnej, wykonując mikroperforacje okrągło od zewnątrz do wnętrza zmiany.
      1. Wykonaj perforacje w odstępach około 3 mm między nimi. Wywołaj mikrozłamania za pomocą kilofa chrzęstnego na zdrowej kości podchrzęstnej pod ubytkiem (Rysunek 5).
        UWAGA: Krwotok powoduje powstanie skrzepu fibrynowego. Produkty krzepnięcia krwi, poprzez aktywację kaskady zapalnej, uwalniają mediatory wazoaktywne, czynniki wzrostu i cytokiny. Czynniki te mają moc stymulowania inwazji naczyniowej i migracji mezenchymalnych komórek macierzystych do chrzęstnej części zmiany. Te pluripotencjalne komórki są stymulowane do różnicowania się w fibroblasty, chondrocyty i osteoblasty i odgrywają ważną rolę w stymulacji naprawy zmiany. Parakrynne czynniki wzrostu w środowisku stawowym sprzyjają tworzeniu macierzy zewnątrzkomórkowej i produkcji chrząstki włóknistej. W tym samym czasie komórki kostnej części zmiany wytwarzają niedojrzałą tkankę kostną, która jest stopniowo zastępowana dojrzałą kością.
    8. Usuń wodę dostawową za pomocą golarki w trybie zasysania, a pozostały płyn za pomocą bawełnianej gąbki, aż staw całkowicie wyschnie.
  3. Iniekcja komórek macierzystych pochodzących z tkanki tłuszczowej
    1. Wstrzyknąć 5 - 7 ml komórek macierzystych pochodzących z tkanki tłuszczowej, przygotowanych wcześniej w kroku 4.1.3, do stawu skokowego za pomocą jednego z dwóch portali (przednio-przyśrodkowego lub przednio-bocznego).
    2. Zwolnij opaskę uciskową.

5. Opieka pooperacyjna

  1. Unikaj ruchów kostki przez 15 dni, gdy operowana kończyna jest w pełnym rozładowaniu.
  2. 15 dni po zabiegu pozwól na aktywne i bierne ruchy kostki, aż do osiągnięcia pełnego wyzdrowienia i zakresu ruchu.
  3. Pozwól na ładowanie 30 dni po zabiegu.

6. Obserwacja kliniczna i radiologiczna

  1. Oceniaj pacjentów klinicznie i radiologicznie po sześciu i dwunastu miesiącach, a następnie co roku. Protokół kontrolny składa się z wyników AOFAS dotyczących stawu skokowego i tylnej stopy, oceny bólu VAS i SF-12 w każdym punkcie końcowym15,16,17. Badanie radiologiczne obejmuje rezonans magnetyczny i tomografię komputerową operowanej stawu skokowego.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

W okresie od stycznia 2016 do września 2016 roku czterech pacjentów przeszło artroskopowe leczenie uszkodzenia chrzęstno-kostnego kości skokowej z zastosowaniem mikroperforacji i oczyszczonej tkanki tłuszczowej. Wszyscy pacjenci zgłosili poprawę kliniczną sześć miesięcy po operacji. Wstępne wyniki kliniczne przedstawiono w Tabeli 1. Nie odnotowano żadnych powikłań.

W ostatnich latach zwiększyło się wykorzystanie...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

W ostatnich latach badania kliniczne i przedkliniczne skupiły się na wpływie ADSC w leczeniu różnych patologii układu mięśniowo-szkieletowego. Celem artykułu jest opisanie protokołu postępowania w uszkodzeniach kostno-chrzęstnych kości skokowej z wykorzystaniem mikrozłamanej i oczyszczonej tkanki tłuszczowej w połączeniu z artroskopowymi mikroperforacjami. Protokół obejmuje kilka krytycznych kroków o wysokim ryzyku powikłań. Podczas zbierania tłuszczu powikłania można podzielić na powikłania miejscowe lub ogólnoustrojowe...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Dr Federico Giuseppe Usuelli informuje o honorariach osobistych od firm Integra i Geistlich oraz o grantach i honorariach osobistych od firmy Zimmer, poza zgłoszoną pracą.

Podziękowania

Procedury są wykonywane przy użyciu systemu Lipogems.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
PROCESS KIT - ZESTAW DO OBRÓBKI LIPOGEMÓW TKANKI TŁUSZCZOWEJLG PK 60Lipogems Zestaw do uzyskania mikropękniętych i oczyszczonych ADSC
HINTERMANN SPREADERINTEGRARozsiewacz umożliwia dostęp do większości kopuły skokowej, w szczególności w przypadku zmian w odcinku bocznym
CUP CURETTEARTHREXAR-8655-02Do usuwania uszkodzonej chrząstki oraz martwiczej i stwardniałej kości
KUSEC CHRZĘSTNY 30° NAPIWEK / 60° KOŃCÓWKAARTHREXAR-8655-05
AR-8655-06		Do wykonywania mikroperforacji na poziomie zmiany, stymulującej krwawienie z kości podchrzęstnej
GOLARKAARTHREXAR-7300SRDo czyszczenia stawu i zasysania wody
119654

Bibliografia

  1. D'Ambrosi, R., Maccario, C., Serra, N., Liuni, F., Usuelli, F. G. Osteochondral Lesions of the Talus and Autologous Matrix-Induced Chondrogenesis: Is Age a Negative Predictor Outcome? Arthroscopy. 33 (2), 428-435 (2017).
  2. Becher, C., et al. T2-mapping at 3 T after microfracture in the treatment of osteochondral defects of the talus at an average follow-up of 8 years. Knee Surg. SportsTraumatol. Arthrosc. 23 (8), 2406-2412 (2015).
  3. Polat, G., et al. Long-term results of microfracture in the treatment of talus osteochondral lesions. Knee Surg. Sports Traumatol. Arthrosc. 24 (4), 1299-1303 (2016).
  4. van Bergen, C. J., et al. Arthroscopic treatment of osteochondral defects of the talus: outcomes at eight to twenty years of follow-up. J. Bone Joint Surg. Am. 95 (6), 519-525 (2013).
  5. van Eekeren, I. C., et al. Return to sports after arthroscopic debridement and bone marrow stimulation of osteochondral talar defects: a 5- to 24-year follow-up study. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc. 24 (4), 1311-1315 (2016).
  6. D'Ambrosi, R., Maccario, C., Ursino, C., Serra, N., Usuelli, F. G. Combining Microfractures, Autologous Bone Graft, and Autologous Matrix-Induced Chondrogenesis for the Treatment of Juvenile Osteochondral Talar Lesions. Foot Ankle Int. 38 (5), 485-495 (2017).
  7. Usuelli, F. G., D'Ambrosi, R., Maccario, C., Indino, C., Manzi, L., Maffulli, N. Adipose-derived stem cells in orthopaedic pathologies. British Medical Bulletin. , (2017).
  8. Kim, Y. S., et al. Assessment of clinical and MRI outcomes after mesenchymal stem cell implantation in patients with knee osteoarthritis: a prospective study. Osteoarthr Cartilage. 24 (2), 237-245 (2016).
  9. Koh, Y. G., Choi, Y. J., Kwon, S. K., Kim, Y. S., Yeo, J. E. Clinical results and second-look arthroscopic findings after treatment with adipose-derived stem cells for knee osteoarthritis. Knee Surg. Sports Traumatol. Arthrosc. 23 (5), 1308-1316 (2015).
  10. Zuk, P. A., et al. Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells. Mol. Biol. Cell. 13 (12), 4279-4295 (2002).
  11. Taléns-Visconti, R., et al. Human mesenchymal stem cells from adipose tissue: Differentiation into hepatic lineage. Toxicol. In Vitro. 21 (2), 324-329 (2007).
  12. Timper, K., et al. Human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells differentiate into insulin, somatostatin, and glucagon expressing cells. Biochem. Biophys. Res. Commun. 341 (4), 1135-1140 (2006).
  13. Tremolada, C., Palmieri, G., Ricordi, C. Adipocyte transplantation and stem cells: plastic surgery meets regenerative medicine. Cell. Transplant. 19 (10), 1217-1223 (2010).
  14. Keramaris, N. C., et al. Endothelial progenitor cells (EPCs) and mesenchymal stem cells (MSCs) in bone healing. Curr. Stem Cell. Res. Ther. 7 (4), 293-301 (2012).
  15. Leigheb, M., et al. Italian translation, cultural adaptation and validation of the American Orthopaedic Foot and Ankle Society's (AOFAS) ankle-hindfoot scale. Acta Biomed. 87 (1), 38-45 (2016).
  16. Ware, J. Jr, Kosinski, M., Keller, S. D. A 12-Item Short-Form Health Survey: construction of scales and preliminary tests of reliability and validity. Med. Care. 34 (3), 220-233 (1996).
  17. Hawker, G. A., Mian, S., Kendzerska, T., French, M. Measures of adult pain: Visual Analog Scale for Pain (VAS Pain), Numeric Rating Scale for Pain (NRS Pain), McGill Pain Questionnaire (MPQ), Short-Form McGill Pain Questionnaire (SF-MPQ), Chronic Pain Grade Scale (CPGS), Short Form-36 Bodily Pain Scale (SF-36 BPS), and Measure of Intermittent and Constant Osteoarthritis Pain (ICOAP). Arthritis Care (Hoboken). 63, Suppl 11. S240-S252 (2011).
  18. Bergen, C. J., Gerards, R. M., Opdam, K. T., Terra, M. P., Kerkhoffs, G. M. Diagnosing, planning and evaluating osteochondral ankle defects with imaging modalities. World. J. Orthop. 6 (11), 944-953 (2015).
  19. van Dijk, C. N., Reilingh, M. L., Zengerink, M., van Bergen, C. J. Osteochondral defects in the ankle: why painful? Knee Surg. Sports Traumatol. Arthrosc. 18 (5), 570-580 (2010).
  20. Madry, H., van Dijk, C. N., Mueller-Gerbl, M. The basic science of the subchondral bone. Knee Surg. Sports Traumatol. Arthrosc. 18 (4), 419-433 (2010).
  21. Mintz, D. N., Tashjian, G. S., Connell, D. A., Deland, J. T., O'Malley, M., Potter, H. G. Osteochondral lesions of the talus: a new magnetic resonance grading system with arthroscopic correlation. Arthroscopy. 19 (4), 353-359 (2003).
  22. Leumann, A., et al. A novel imaging method for osteochondral lesions of the talus--comparison of SPECT-CT with MRI. Am. J. Sports Med. 39 (5), 1095-1101 (2011).
  23. Kim, Y. S., Park, E. H., Kim, Y. C., Koh, Y. G. Clinical outcomes of mesenchymal stem cell injection with arthroscopic treatment in older patients with osteochondral lesions of the talus. Am. J. Sports Med. 41 (5), 1090-1099 (2013).
  24. Kim, Y. S., Lee, H. J., Choi, Y. J., Kim, Y. I., Koh, Y. G. Does an injection of a stromal vascular fraction containing adipose-derived mesenchymal stem cells influence the outcomes of marrow stimulation in osteochondral lesions of the talus? A clinical and magnetic resonance imaging study. Am. J. Sports Med. 42 (10), 2424-2434 (2014).
  25. Kim, Y. S., Koh, Y. G. Injection of Mesenchymal Stem Cells as a Supplementary Strategy of Marrow Stimulation Improves Cartilage Regeneration After Lateral Sliding Calcaneal Osteotomy for Varus Ankle Osteoarthritis: Clinical and Second-Look Arthroscopic Results. Arthroscopy. 32 (5), 878-889 (2016).
  26. Kim, Y. S., Lee, M., Koh, Y. G. Additional mesenchymal stem cell injection improves the outcomes of marrow stimulation combined with supramalleolar osteotomy in varus ankle osteoarthritis: short-term clinical results with second-look arthroscopic evaluation. J. Exp. Orthop. 3 (1), 12(2016).
  27. Hanke, C. W., Bernstein, G., Bullock, S. Safety of tumescent liposuction in 15,336 patients. National survey results. Dermatol Surg. 21 (5), 459-462 (1995).
  28. Illouz, Y. G. Complications of liposuction. Clin Plast Surg. 33 (1), 129-163 (2006).
  29. Dixit, V. V., Wagh, M. S. Unfavourable outcomes of liposuction and their management. Indian J Plast Surg. 46 (2), 377-392 (2013).
  30. Lehnhardt, M., Homann, H. H., Daigeler, A., Hauser, J., Palka, P., Steinau, H. U. Major and lethal complications of liposuction: review of 72 cases in Germany between 1998 and 2002. Plast Reconstr Surg. 121 (6), 396e-403e (2008).
  31. Usuelli, F. G., de Girolamo, L., Grassi, M., D'Ambrosi, R., Montrasio, U. A., Boga, M. All-Arthroscopic Autologous Matrix-Induced Chondrogenesis for the Treatment of Osteochondral Lesions of the Talus. Arthrosc Tech. 4 (3), e255-e259 (2015).
  32. Simonson, D. C., Roukis, T. S. Safety of ankle arthroscopy for the treatment of anterolateral soft-tissue impingement. Arthroscopy. 30 (2), 256-259 (2014).
  33. Suzangar, M., Rosenfeld, P. Ankle arthroscopy: is preoperative marking of the superficial peroneal nerve important? J. Foot. Ankle Surg. 51 (2), 179-181 (2012).
  34. Kraeutler, M. J., et al. Current Concepts Review Update: Osteochondral Lesions of the Talus. Foot Ankle Int. 38 (3), 331-342 (2017).
  35. Looze, C. A., et al. Evaluation and Management of Osteochondral Lesions of the Talus. Cartilage. 8 (1), 19-30 (2017).
  36. Dragoo, J. L., et al. Healing full-thickness cartilage defects using adipose-derived stem cells. Tissue Eng. 13 (7), 1615-1621 (2007).
  37. Lee, S. Y., Kim, W., Lim, C., Chung, S. G. Treatment of Lateral Epicondylosis by Using Allogeneic Adipose-Derived Mesenchymal Stem Cells: A Pilot Study. Stem Cells. 33 (10), 2995-3005 (2015).
  38. Feisst, V., Meidinger, S., Locke, M. B. From bench to bedside: use of human adipose-derived stem cells. Stem Cells Cloning. 8, 149-162 (2015).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Uszkodzenie kostno chrz stnetechnika mikroz amachirurgia artroskopowamezenchymalne kom rki macierzyste pochodzenia t uszczowegotransplantacja autologicznawizualizacja stawurekonwalescencja pacjentaleczenie uszkodze ko ci skokowejmedycyna regeneracyjna
Autologiczna mikropęknięta i oczyszczona tkanka tłuszczowa do artroskopowego leczenia zmian kostno-chrzęstnych kości skokowej
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.