Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Zoptymalizowany protokół Evans Blue do oceny przecieku naczyniowego u myszy

28.5K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/57037

⸱

12 września 2018

W tym artykule

Podsumowanie

W tym artykule opisany jest ekonomiczny, zoptymalizowany i prosty protokół, który wykorzystuje metodę niebieskiego barwnika Evansa do oceny wynaczynienia osocza w organach myszy FVBN, które mogą być przystosowane do użycia w innych szczepach, gatunkach i innych narządach lub tkankach.

Streszczenie

Wyciek naczyniowy, czyli wynaczynienie osocza, ma wiele przyczyn i może być poważną konsekwencją lub objawem reakcji zapalnej. Badanie to może ostatecznie doprowadzić do nowej wiedzy na temat przyczyn lub nowych sposobów hamowania lub leczenia wynaczynienia osocza. Ważne jest, aby naukowcy dysponowali odpowiednimi narzędziami, w tym najlepszymi dostępnymi metodami, do badania wynaczynienia osocza. W tym artykule opisujemy protokół, wykorzystujący metodę niebieskiego barwnika Evansa, do oceny wynaczynienia osocza w narządach myszy FVBN. Protokół ten jest celowo prosty, w jak największym stopniu, ale zapewnia wysoką jakość danych. Niebieski barwnik Evans został wybrany przede wszystkim dlatego, że jest łatwy w użyciu dla przeciętnego laboratorium. Wykorzystaliśmy ten protokół, aby dostarczyć dowodów i poprzeć hipotezę, że enzym neprylizyna może chronić naczynia krwionośne przed wynaczynieniem osocza. Jednak protokół ten może być eksperymentalnie stosowany i łatwo dostosowany do stosowania u innych szczepów myszy lub u innych gatunków, w wielu różnych narządach lub tkankach, do badań, które mogą obejmować inne czynniki, które są ważne w zrozumieniu, zapobieganiu lub leczeniu wynaczynienia osocza. Protokół ten został znacznie zoptymalizowany i zmodyfikowany w stosunku do istniejących protokołów i łączy w sobie niezawodność, łatwość użycia, oszczędność oraz ogólną dostępność materiałów i sprzętu, dzięki czemu protokół ten jest lepszy dla przeciętnego laboratorium do ilościowego określania wynaczynienia osocza z narządów.

Wprowadzenie

Przeciek naczyniowy w narządach odnosi się do wynaczynienia, czyli wycieku osocza krwi przez szczeliny powstałe w śródbłonku żyłek naczyń włosowatych w narządach. To wynaczynienie osocza lub zwiększona przepuszczalność naczyń, która może wynikać z pewnego rodzaju reakcji zapalnej, może mieć poważne konsekwencje. Dlatego ważne jest, aby to zjawisko, jego przyczyny, modulatory i konsekwencje były badane i rozumiane, a także, aby badacze mieli dobre narzędzia i protokoły, za pomocą których mogą je badać. Luki śródbłonka mogą być wytwarzane przez szereg bodźców, ale zwykle są wytwarzane przez działanie neuroprzekaźników peptydowych i/lub tachykinin na śródbłonek. Jednym z....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie obowiązujące międzynarodowe, krajowe i/lub instytucjonalne wytyczne dotyczące opieki i użytkowania zwierząt (myszy) były przestrzegane w eksperymentach opisanych w tym manuskrypcie.

Ta metoda wykorzystuje dorosłe myszy FVBN w wieku 16 - 20 tygodni, które okazały się optymalne dla celów tego badania. Dzień 1 obejmuje kroki od 1 do 5, a Dzień 2 obejmuje kroki od 6 do 7 (Rysunek 1).

1. Przygotowanie sprzętu

  1. Zapewnić odpowiedni zapas sterylnych, jednorazowych strzykawek i igieł, jeśli ketamina/ksylazyna jest stosowana jako środek znieczulający (zgodnie z zaleceniami)....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Na Rysunku 1 przedstawiono schemat procedury, która zapewnia najbardziej wiarygodne i spójne wartości przesączania osocza indukowanego substancją P w organach myszy FVBN. Procedura ta zazwyczaj zajmuje dwa dni pracy, przedzielone co najmniej 48 h czasu oczekiwania. Jest możliwe dalsze rozciągnięcie tego procesu w czasie, pod warunkiem, że będzie on prowadzony w ten sam sposób dla wszystkich porównywanych eksperymentów. Na przykład po wyizolowaniu organów w dn.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Jak omówiono powyżej, badanie wynaczynienia osocza może ostatecznie doprowadzić do nowej wiedzy na temat przyczyn lub nowych sposobów hamowania lub leczenia wynaczynienia osocza. Skuteczne zastosowanie protokołu wynaczynienia osocza (powyżej), przy użyciu niebieskiego barwnika Evansa, zostało zademonstrowane w obecnym manuskrypcie. Chociaż dane potwierdziły hipotezę, że NEP może chronić naczynia krwionośne przed wynaczynieniem osocza, jest to obecnie cel drugorzędny, a głównym celem jest przedstawienie zoptymalizowanego .......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Autorzy pragną podziękować Andy'emu Poczobuttowi i Dr. Jori Leszczyńskiemu za ich cenną pomoc i zmiany w tym manuskrypcie.  Wspierane przez granty otrzymane od Narodowego Instytutu Serca, Płuc i Krwi (NHLBI RO1 HL078929, PPG HL014985 i RO3 HL095439) oraz Departamentu ds. Weteranów (Przegląd Zasług).

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
izofluranVet One200-070wziewny środek znieczulający
ketaminaVet One200-055iniekcyjne strzykawki znieczulające
ksylazynaLloyd Laboratories139-236
(10,3 i 1 cc)Becton Dickinson309604, 309657, 309659
igieł (20G1,23G1 i 26G1/2)Becton Dickinson305178, 305193, 305111
komora indukcyjna izofluranuVetEquip9414431 litrowe
obwody oddechowe nosa VetEquipRC2Kontroler obwodu gryzoni 2
zbiornik tlenuAirgasUN 1072100% medyczna
poduszka grzewczaCWE Inc.TC-1000regulator temperatury
sonda temperatury doodbytnicyCWE Inc.10-09012waga myszy
(dla gryzoni)OhausCS 2000
narzędzia chirurgiczne-nożyczkiNarzędzia do nauki15000-00Vannas Nożyczki sprężynowe Ostrze proste 3 mm (naczynia do cięcia)   
narzędzia chirurgiczne-kleszczeNarzędzia do nauki pięknej11151-10Bardzo cienkie kleszcze Graefe (izolowanie naczyń myszy)
narzędzia chirurgiczne-hemostatykiNarzędzia do nauki pięknej13009-12Hemostatyki komarów Halsteada (wypreparowanie, trzymanie tkanki)
narzędzia chirurgiczne -sterowniki do szwówNarzędzia do nauki12502-12Sterowniki do szwów Olsen-Hegar (szycie)
narzędzia chirurgiczne-kleszczeGrzywna Narzędzia naukowe11627-12Kleszcze aligatora Adson-Brown (chwytanie tkanek, szycie, szczur)
narzędzia chirurgiczne-nożyczkiNarzędzia do nauki14110-15Nożyczki Mayo do cięcia twardego 15 cm (chirurgia, preparacja, kości, szczur)
narzędzia chirurgiczne-kleszczeNarzędzia Fine Science18025-10kleszcze do wiązania szwów (używane do cewnikowania Millar)
narzędzia chirurgiczne-nożyczkiNarzędzia do nauki pięknej14078-10Nożyczki Lexer Baby proste (chirurgia, mysz)
narzędzia chirurgiczne-kleszczeNarzędzia do nauki11254-20Kleszcze Dumont #5 z cienką końcówką (naczynia szczurów, rozwarstwienie)
narzędzia chirurgiczne-nożyczkiNarzędzia do nauk ścisłych14082-09Nożyczki do dyspreparowania 12 mm (chirurgia, mysz szczura)
narzędzia chirurgiczne-kleszczeNarzędzia do naukipięknej 11051-1010 cm Kleszcze Graefe (chwytanie tkanek, mysz szczura)
narzędzia chirurgiczne-kleszczeNarzędzia do nauk ścisłych11251-35Kleszcze Dumont 5/45 (wprowadzacz do naczyń)
narzędzia chirurgiczne-zwijaczeNarzędzia do nauki pięknej17012-11Retraktory Weitlaner 2/3 zęba (chirurgiczne dla szczurów)
narzędzia chirurgiczne-kleszczeNarzędzia do nauki pięknej11294-00Kleszcze Dumont #4 (szczury do izolacji naczyń, myszy)
narzędzia chirurgiczne-kleszczeGrzywna Narzędzia naukowe11297-00Kleszcze Dumont #7 (chwytanie tkanek, preparowanie)
narzędzia chirurgiczne-nożyczkiNarzędzia do nauki14058-11twarde nożyczki do tęczówki (preparacja myszy, kości)
narzędzia chirurgiczne-kleszczeNarzędzia do nauk ścisłych11009-13ząbkowane, zakrzywione kleszcze Semkena (chwytanie tkanek, szczur myszy)
narzędzia chirurgiczne-hemostatykiNarzędzia do nauki pięknej13003-10Zakrzywione hemostatyki Hartmana (wycięcie, przytrzymanie tkanki)
narzędzia chirurgiczne-kleszczeNarzędzia do nauk ścisłych11006-12Kleszcze ząbkowane Adson (chwytanie tkanek)
maszynki do strzyżeniaTaśma OsterA5
Fisherbrand159015G
sztuczna maść łzowaAkorn Inc13985-600-03
lidokainaHospira0409-4277-01
Cewniki poliwinyloweTygonPV-1
Evans niebieskiSigma AldrichE2129
Substancja PBachem H-1890
heparynaSagent Pharmaceuticals25201-400-101000 U/ml
roztwór soliHospira0409-7138-090,9% chlorek sodu
fenobarbital Vortech0298-9373-68
cytrynian soduFisher ScientificBP327-1
PBSSigma AldrichP4417-50TAB 
Chusteczki do bibułowaniaFisher Scientific06-666A
formamidSigma Aldrich47670
mikrowagaDenver InstrumentAPX-60
rurki do mikrofugFisher Scientific07-200-534
polistyren 96-dołkowa płytkaBecton Dickenson351172
płytka absorbancyjna czytnikBioTekSynergy 2
żele poliakryloamidoweBio-Rad3450014 
wzorzec masy cząsteczkowej białkaBio-Rad1610374
Nitroceluloza na nośniku ProtranAmersham (GE)10600015
żelpudełko Bio-Rad1658005
TrisFisher ScientificBP152-1
Tween20Sigma AldrichP-1379
chlorek soduFisher NaukoweS271-1
NEP R & D SystemsAF1182
doksycyklina chowTeklad (HARLAN)TD.130750 
Myszy typu dzikiego FVB / NJJackson001800
przeciwciało wtórne (koza anty-królik)ZyMed81-6120
Roztwór ECL-Western Lightening PlusPerkinElmerNEL104001EA
filmPierce34091
o sztuce 2% do wstrzykiwań pierwszorzędowe przeciwciało poliklonalne

Bibliografia

  1. Snijdelaar, D. G., Dirksen, R., Slappendel, R., Crul, B. J. Substance P. Eur J Pain. 4 (2), 121-135 (2000).
  2. Rubinstein, I., Iwamoto, I., Ueki, I. F., Borson, D. B., Nadel, J. A. Recombinant neutral endopeptidase attenuates substance P-induced plasma extravasation in the guinea pig s....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

barwnik błękit Evansaekstrawazacja osoczaorgany myszyprotokół kaniulacjiwstrzykiwanie substancji Pnokaut neprilizynyizolacja organówekstrakcja barwnikasól fizjologiczna z heparyną