Artykuł metodologiczny

Szczurzy model zmęczenia centralnego przy użyciu zmodyfikowanej metody wieloplatformowej

DOI:

10.3791/57362

⸱

14 sierpnia 2018

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1School of Traditional Chinese Medicine, Beijing University of Chinese Medicine, 2Department of Integrated Traditional Chinese and Western Medicine, West China Hospital, Sichuan University, 3Institute of Tibetan Medicine, Tibetan Traditional Medical College

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tutaj prezentujemy protokół wprowadzający szczurzy model zmęczenia centralnego przy użyciu zmodyfikowanej metody wieloplatformowej (MMPM).

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

W tym artykule przedstawiliśmy szczurzy model zmęczenia centralnego przy użyciu zmodyfikowanej metody wieloplatformowej (MMPM). Skrzynka wieloplatformowa została zaprojektowana jako zbiornik na wodę z wąskimi platformami na dnie. Modelowe szczury umieszczono w zbiorniku i starano na platformach przez 14 godzin (18:00 - 8:00) dziennie przez kolejne 21 dni, z pustą grupą kontrolną ustawioną dla kontrastu. Pod koniec modelowania szczury w grupie modelowej wykazywały wyraźny zmęczony wygląd. Aby ocenić model, przeprowadziliśmy kilka testów behawioralnych, w tym test otwartego pola (OFT), test podwyższonego labiryntu plus (EPM) oraz test wyczerpującego pływania (ES). Wyniki wykazały, że lęk, upośledzenie funkcji poznawczych, słaba wydajność mięśni i zmniejszona dobrowolna aktywność prezentowane u szczurów modelowych potwierdzają diagnozę zmęczenia centralnego. Zmiany w centralnych neuroprzekaźnikach również zweryfikowały wynik. Podsumowując, model z powodzeniem symulował zmęczenie centralne, a przyszłe badania z wykorzystaniem modelu mogą pomóc w ujawnieniu patologicznego mechanizmu choroby.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zmęczenie jest jednym z głównych czynników zagrażających zdrowiu ludzkiemu1. W ostatnich dziesięcioleciach różne badania dowiodły, że zmęczenie jest wywoływane obwodowo, ale centralnie napędzane i zawsze towarzyszą mu zaburzenia emocjonalne i poznawcze. Włoski fizjolog A. Mosso jako pierwszy zaproponował słowo Central Fatigue2. Jest ogólnie definiowany jako ograniczona dobrowolna aktywność i upośledzenie funkcji poznawczych spowodowane dysfunkcją przekazywania impulsów w ośrodkowym układzie nerwowym (OUN)3. W porównaniu ze zmęczeniem mięśni obwodowych, zmęczenie centralne podkreśla zmiany w OUN, a także wynikające z nich zaburzenia emocjonalne/behawioralne, w tym depresję, lęk, upośledzenie funkcji poznawczych i utratę pamięci. Jedno z badań pokazuje, że wiele czynników może wywoływać centralne zmęczenie, wśród których niezbędna jest nadmierna aktywność fizyczna i stres psychiczny4. Jeśli chodzi o patogenezę, teorie takie jak hipoteza szlaku tryptofan-kinurenina5 wyjaśniają zmiany w niektórych szlakach; Jednak nadal potrzebne są bardziej dogłębne badania, aby ujawnić centralno-obwodowe korelacje zmęczenia centralnego.

Ponieważ mechanizm leżący u podstaw zmęczenia centralnego jest nadal niejasny, skuteczny model zwierzęcy jest dość ważny dla dalszych badań. Istniejące modele zmęczenia są w większości wywoływane przez nadmierne ćwiczenia, takie jak bieżnie6 i pływanie z obciążeniem ciężarem7, bez większego zainteresowania czynnikami psychicznymi. Aby lepiej symulować rozwój zmęczenia centralnego, nasza grupa opracowała model szczura z MMPM. Podczas procesu modelowania szczury pozostają stojące na wąskich platformach w pudełku wieloplatformowym przez długie godziny, w tym przez część czasu snu. W odróżnieniu od modeli nadmiernych ćwiczeń, model MMPM wykorzystuje częściową deprywację snu jako czynnik psychiczny z uwzględnieniem złożonej patogenezy zmęczenia ośrodkowego.

Do oceny modelu używamy testów OFT i EPM, aby określić nastrój lęku i aktywność wolontariacką. Test ES jest wykonywany w celu zmierzenia wydajności mięśni obwodowych. Ponadto bierzemy mózg szczura i wykrywamy zawartość dopaminy (DA) / serotoniny (5-HT) w obu podwzgórzach, aby zaobserwować różnice w ośrodkowym neuroprzekaźniku.

Protokół przedstawiony poniżej ma na celu modelowanie centralnego zmęczenia wywołanego powtarzającą się aktywnością fizyczną i brakiem snu, naśladując powszechny stan w życiu człowieka. Jednak dostosowując czas trwania modelu, można go wykorzystać w wielu innych dziedzinach, takich jak obserwacja snu i badania stresu. Mamy nadzieję, że w przyszłych badaniach model ten pomoże odkryć więcej zmian w OUN i ich związku z układem obwodowym, aby ujawnić mechanizm patogenezy zmęczenia ośrodkowego.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie zwierzęta były utrzymywane zgodnie z wytycznymi chińskiego ustawodawstwa dotyczącego etycznego użytkowania i opieki nad zwierzętami laboratoryjnymi.

1. Przygotowanie do wstępnego modelowania

  1. Przygotowanie laboratoryjne
    1. Uruchom lampę UV na co najmniej 30 minut przed eksperymentem.
    2. Kontroluj temperaturę w laboratorium na poziomie 25 ± 3 °C, a wilgotność względną około 30%.
    3. Włącz światło laboratoryjne o 6:00 i wyłącz je o 18:00, aby ustawić cykl 12 h/12 h światło/ciemność.
  2. Konstrukcja skrzynkowa z wieloma platformami
    1. Zbuduj nieprzezroczysty zbiornik z tworzywa sztucznego bez pokrywy o wymiarach 110 × 60 × 40 cm3.
    2. Zamocuj piętnaście okrągłych platform (h = 8 cm, d = 6,5 cm) na dnie zbiornika, które są uporządkowane w trzech rzędach i pięciu kolumnach. Pozostaw wystarczająco dużo miejsca między każdą platformą, około 10 cm między kolumnami i 13 cm między rzędami.
    3. Ustaw odpływ wody po bocznej stronie zbiornika i zainstaluj kran.
    4. Zrób osłonę z siatki z drutu żelaznego do zbiornika z wiszącym na nim pudełkiem na żywność.
  3. Grupowanie i trzymanie szczurów
    UWAGA: W eksperymencie wykorzystano samce szczurów rasy Wistar w wieku 8 tygodni, o wadze około 200 - 210 g. Szczury żyją w grupach podczas procesu modelowania.
    1. Ponumeruj korzenie ogonów szczurów markerem.
    2. Zważ szczury, wyklucz te wyjątkowo lekkie lub ciężkie, a resztę podziel losowo na grupę modelową i kontrolną.
    3. Delikatnie umieść szczury w czystych klatkach i pozwól im zaaklimatyzować się w laboratorium przez co najmniej 3 dni. Zapewnij wystarczające zaopatrzenie w wodę i żywność.

2. Modelowanie za pomocą MMPM

UWAGA: Proces zaczyna się o 18:00 i kończy o 8:00 następnego dnia, co daje w sumie 14 godzin dziennie, przez 21 dni. Aby uniknąć czynników zakłócających, ta sama osoba jest zobowiązana do przeprowadzenia całego eksperymentu, mając na sobie ten sam fartuch laboratoryjny. W eksperymencie wykorzystano 10 szczurów rasy Wistar.

  1. Zbiornik należy postawić na płaskiej powierzchni, np. na podłodze. Następnie napełnij zbiornik około 7 cm ciepłej (25 ± 3 °C) wody, około 1 cm poniżej płaskiej platformy.
  2. Przygotuj wystarczającą ilość jedzenia i picia dla wszystkich szczurów w zbiorniku na 1 dzień. Wlej paszę i wodę do pojemnika na żywność i zawieś go na pokrywie.
    UWAGA: Niektóre inteligentne szczury uczą się odpoczywać na pudełku z jedzeniem. Jeśli tak, wbij je z powrotem do zbiornika.
  3. Wyjmij szczury z grupy modelowej z klatki, chwyć je za ogon i delikatnie włóż do zbiornika. Wystrzel wszystkie szczury w wodzie zamiast na platformy, aby zmotywować ich strach przed wodą. Upewnij się, że każdy szczur ma platformę, na której może stanąć, podczas gdy szczury z grupy kontrolnej pozostają w swoich oryginalnych klatkach z wystarczającą ilością pożywienia i wody.
  4. Przykryj zbiornik. Monitoruj szczury, aby uniknąć przypadkowych obrażeń. Jeśli szczur pozostaje w wodzie dłużej niż 1 godzinę bez wspinania się na platformę, wyjmij go ze zbiornika i usuń z testu.
  5. Po 14 godzinach wyjmij modelowe szczury ze zbiornika i wysusz ich włosy suszarką. Ponownie zaznacz ogony szczurów, jeśli znikną. Wróć szczury do ich pierwotnych klatek i zapewnij im wystarczającą ilość pożywienia i wody.
  6. Przepłucz każdy róg zbiornika. Podnieś jedną stronę zbiornika i otwórz kran, aby odprowadzić ścieki.
  7. Wysterylizuj zbiornik za pomocą sprayu 75% etanolu i wystaw go na działanie światła UV.

3. Ocena modelu: Test behawioralny

UWAGA: Wszystkie testy są wykonywane w laboratorium behawioralnym. Hałas i dodatkowe światło nie są dozwolone podczas testu, aby uniknąć zakłóceń. Jeśli to możliwe, użyj tej samej osoby (osób) do przeprowadzenia każdego testu. Ciemny płaszcz i rękawice są wymagane do rozpoznawania skali szarości podczas przetwarzania obrazu. Najpierw wykonaj OFT, ponieważ ma to najmniejszy wpływ na zachowanie szczurów.

  1. Często
    1. Sprawdź rejestrator nad skrzynką Open Field Box, aby upewnić się, że jest prawidłowo podłączony do stacji roboczej i zakrywa każdy róg skrzynki. Dostosuj oświetlenie, aby wyeliminować cienie w pudełku.
    2. Przenieś szczury do laboratorium behawioralnego w ich oryginalnych klatkach. Pozwól im się zaaklimatyzować przez co najmniej 1 godzinę przed badaniem.
    3. Wyczyść i zdezynfekuj pudełko 75% etanolem, aby upewnić się, że nie pozostały żadne ekskrementy ani zapach z poprzedniego eksperymentu.
    4. Wyjmij szczura z klatki za grzbiet i delikatnie umieść go w środkowej części pudełka. Szybko wycofaj ręce z pudełka, aby nie blokować strzału.
    5. Wprowadź numer szczura i rozpocznij nagrywanie. Policz i zapisz częstotliwość pionowych czynności szczura, w tym odchowu i wspinaczki.
    6. Po 5 minutach przerwij nagrywanie, wyjmij szczura z pudełka i włóż go z powrotem do klatki.
    7. Powtarzać kroki 3.1.3 - 3.1.6, aż wszystkie szczury zakończą badanie.
  2. EPM (Piec Stabil
    1. Wykonać kroki kontroli wstępnej i aklimatyzacji jak w przypadku OFT (kroki 3.1.1 - 3.1.2).
    2. Wyjmij szczura z klatki za grzbiet i delikatnie połóż go na części łączącej dwa ramiona. Wyląduj szczurem w kierunku lewego otwartego ramienia i szybko odejdź, aby nie zablokować strzału.
    3. Wprowadź numer szczura i rozpocznij nagrywanie. Policz i zapisz częstotliwość wejść różnych ramion. Jeśli szczur wypadnie z labiryntu w teście, podnieś go i wyślij z powrotem do labiryntu. Rejestruj szczegółowe informacje na potrzeby analizy danych.
    4. Po 5 minutach przerwij nagrywanie, wyjmij szczura i włóż go z powrotem do klatki.
    5. Usuń odchody i przetrzyj labirynt 75% etanolem, aby wyeliminować zapach byłego szczura.
    6. Powtarzać kroki 3.2.2 - 3.2.5, aż wszystkie szczury zakończą badanie.
  3. Próba ES
    1. Napełnij zbiornik pływacki (70 × 30 × 110 cm3) 80 cm ciepłej (25 ± 3 °C) wody.
      UWAGA: Jeśli w zbiorniku znajduje się termostat, temperaturę wody należy ustawić na około 37 °C, co jest zbliżone do temperatury ciała szczura. Jeśli nie, ustaw temperaturę pokojową, aby utrzymać ją na stałym poziomie.
    2. Zrób ładunek dla każdego szczura za pomocą pęczków szpilek i delikatnie przywiąż go do nasady ogona. Ładunek waży 10% wagi szczura.
    3. Chwyć szczura za ogon i wrzuć go do zbiornika do pływania. Jeśli szczury kulą się lub przylegają do ściany, rozłóż je i wrzuć z powrotem do wody.
    4. Rozpocznij odmierzanie czasu w momencie, gdy szczur zostanie włożony do wody i przestań odmierzać czas, gdy jest wyczerpany, co objawia się brakiem walki z wyjściem z wody z ustami i nosem pod wodą przez ponad 10 s.
      UWAGA: Czasami wyczerpanie i utonięcie pojawiają się nagle. Upewnij się, że masz wystarczającą liczbę eksperymentatorów, aby nagrać i uratować zwierzę w tym samym czasie.
    5. Wyjmij wyczerpane szczury z wody, nie przerywając innym. Wysusz ich włosy, ponownie zaznacz ich numery i wyślij je z powrotem do klatki.
    6. Wymień wodę w zbiorniku po zakończeniu jednej grupy. Po zakończeniu wszystkich szczurów opróżnij zbiornik pływacki, wyczyść go i wysterylizuj etanolem i światłem UV.

4. Ocena modelu: Centralne wykrywanie neuroprzekaźników

  1. Znieczulić szczura wstrzyknięciem dootrzewnowym 10% wodzianu chloralu (3 ml/kg) do utraty przytomności.
  2. Odetnij głowę szczurowi.
  3. Wykonaj podłużne nacięcie wzdłuż linii post-środkowej, otwórz czaszkę po obu stronach i odsłoń mózg. Odwróć czaszkę, usuń mózg i umieść mózg na worku z lodem.
  4. Oddziel i usuń podwzgórze, które jest obszarem w kształcie rombu w centralnej części podstawy mózgu, który ma wyraźną granicę z otaczającymi tkankami. Umieść go w sterylnej probówce i zamroź ciekłym azotem. Przechowywać wszystkie próbki w lodówce o temperaturze -80 °C.
  5. Wykryj zawartość DA i 5-HT w podwzgórzu za pomocą wysokosprawnej chromatografii cieczowej (HPLC)8.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Opisujemy szczurzy model centralnego zmęczenia za pomocą MMPM. 24 szczury Wistar są losowo podzielone na grupę kontrolną i grupę modelową, po 12 szczurów w każdej grupie. Model aparatu został zaprojektowany jako zbiornik na wodę z wąskimi platformami na dnie (Rysunek 1). Modelowe Szczury stoją na platformach przez 14 godzin dziennie, wliczając w to częściowy czas snu, przez 21 dni (Rysunek 2).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

MMPM jest pierwotnie zaprojektowany do deprywacji snu9. Szczury są wystrzeliwane do zbiornika na wodę z platformami zamocowanymi na dnie. Kierując się instynktownym strachem przed wodą, szczury nadal stoją na platformach i nie zasypiają. Badanie pokazuje, że różne godziny braku snu prowadzą do różnych zmian w zachowaniu i nastroju szczurów, w tym upośledzenia rozpoznawania10, negatywnych emocji11 i zmęczenia centralnego. Niektórzy badacze udowadniają...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca była wspierana przez Fundację Nauk Przyrodniczych w Pekinie (No.7162124) oraz Fundację Xin-ao dla Pekińskiego Uniwersytetu Medycyny Chińskiej.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
wieloplatformowy zbiornik na wodę do deprywacji snuDostosowywanie, jest dostarczany przez laboratorium neuroimmunologiczne Pekińskiego Uniwersytetu Medycyny Chińskiej 110cm x 60 cm x 40 cm. Na dole znajduje się 15 plastikowych małych platform. Mała platforma ma 6,5 cm średnicy i 8 cm wysokości
Szczury WistarBeijing Weitong Lihua Experimental Animal Technology Companynumer licencji SYXK (Pekin) 2016-0011Użyj 32 zdrowych samców szczurów Wistar, 8 tygodni (200-210 g)
Wysokosprawny chromatograf cieczowy Agilent 1100LC Agilent  G1379A, G1311A, G1313A , G1316A   G1379A, pompa chromatograficzna typu G1311A, automatyczny próbnik G1313A, skrzynka temperatury kolumny G1316A
Detektor elektrochemiczny DECADE II SDCHolenderskaelektroda szklisto-węglowa firmy ANTEC, elektroda referencyjna Ag/AgCl, stacje robocze (Clarity CHS)
Rozwój technologii Phos w skali elektronicznej ACS-ZEAS, Pekin.Waga ważących szczurów może być dokładna do 0,1 g.
Dostosowywanie pudełka Open Field, zapewnia je laboratorium neuroimmunologiczne Beijing University of Chinese Medicinedrewniane pudełko z otwartym polem  100 cm na 100 cm x 40 cm, wewnętrzna ściana i spód jako szary. Dno jest podzielone na 25 kwadratów o równej powierzchni, z których każdy ma wymiary 20 cm x 20 cm, a 16 siatek wzdłuż ściany zewnętrznej to siatki zewnętrzne, a pozostałe 9 siatek jest centralnych. Kamera jest zamontowana powyżej mediany.
Podwyższony labirynt Plus-Beijingzhongshi dechuang technology development co., LTD.Otwarte ramiona i zamknięte ramiona krzyża składają się z 30 cm x 5 cm x 15 cm, a centralna część ma wymiary 5 cm x 5 cm, z kamerą zamontowaną nad środkiem i wysokością 45 cm.
wiadro do pływania dla szczurów.Zhenhua biological instrument equipment co., LTD. Anhui, Chiny.Objętość plastikowego bębna wynosi 70 cm x 30 cm x 110 cm, który służy do pływania u szczurów.
TermometrShiya instrument co., LTD., Changzhou, Chiny.Kontroluj temperaturę wody
Mała pompa wodnaXincheng technology co., LTD., Chengdu, Chiny.Używany do zbiornika na wodę i zachowania podczas pływania.
Oprogramowanie behawioralne Ethovition3.0.Nuldus,HolandiaAnaliza pomiarowa filmów z zachowaniem szczurów.
Wirówka chłodnicza Biofuge Stratos HERAEUS VCX130 ultradźwiękowy instrument do szczelinowania SONICS

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Ishii, A., Tanaka, M., Yamano, E., Watanabe, Y. The neural substrates of physical fatigue sensation to evaluate ourselves: a magnetoencephalography study. Neuroscience. 261, 60-67 (2014).
  2. Dalsgaard, M. K., Secher, N. H. The Brain at Work: A Cerebral Metabolic Manifestation of Central Fatigue? Journal of Neuroscience Research. 85 (15), 3334-3339 (2007).
  3. Chaudhuri, A., Behan, P. O. Fatigue in neurological disorders. The Lancet. 363, 978-988 (2004).
  4. Baston, G. Exercise-induced central fatigue: a review of the literature with implications for dance science research. Journal of Dance Medicine & Science. 17 (2), 53-62 (2013).
  5. Yamashita, M., Yamamoto, T. Tryptophan and Kynurenic Acid May Produce an Amplified Effect in Central Fatigue Induced by Chronic Sleep Disorder. International Journal of Tryptophan Research. 7, 9-14 (2014).
  6. Lee, S. W., et al. The impact of duration of one bout treadmill exercise on cell proliferation and central fatigue in rats. Journal of Exercise Rehabilitation. 9 (5), 463-469 (2013).
  7. Su, kY., et al. Rutin, a flavonoid and principal component of saussurea involucrata, attenuates physical fatigue in a forced swimming mouse model. International Journal of Medical Sciences. 11 (5), 528-537 (2014).
  8. Hashemi, F., Laufer, R., Szegi, P., Csomor, V., Kal ász, H., Tekes, K. HPLC determination of brain biogenic amines following treatment with bispyridinium aldoxime K203. Acta Physiologica Hungarica. 101 (1), 40-46 (2014).
  9. Machado, R. B., Hipo'lide, D. C., Benedito-Silva, A. A., Tufik, S. Sleep deprivation induced by the modified multiple platform technique: quantification of sleep loss and recovery. Brain Research. 1004 (1-2), 45-51 (2004).
  10. Alzoubi, K. H., Khabour, O. F., Tashtoush, N. H., AI-Azzam, S. I., Mhaidat, N. M. Evaluation of the Effect of Pentoxifylline on Sleep-Deprivation Induced Memory Impairment. Hippocampus. 23 (9), 812-819 (2013).
  11. Pires, G. N., Tufik, S., Andersen, M. L. Grooming analysis algorithm: Use in the relationship between sleep deprivation and anxiety-like behavior. Progress in Neuro-Psychopharmacology and Biological Psychiatry. 41, 6-10 (2013).
  12. Yamashita, M., Yamamoto, T. Establishment of a rat model of central fatigue induced by chronic sleep disorder and excessive brain tryptophan. Japanese Journal of Cognitive Neuroscience. 15, 67-74 (2013).
  13. Arai, M., Yamazaki, M., Inoue, K., Fushiki, T. Effects of intracranial injection of transforming growth factor-beta relevant to central fatigue on the waking electroencephalogram of rats Comparison with effects of exercise. Progress in Neuro-Psychopharmacology and Biological Psychiatry. 26 (2), 307-312 (2002).
  14. Han, C. X., et al. Distinct behavioral and brain changes after different durations of the modified multiple platform method on rats: An animal model of central fatigue. PloS One. 12 (5), e0176850(2017).
  15. Tang, X., Yang, L., Sanford, L. D. Individual variation in sleep and motor activity in rats. Behavioural Brain Research. 180 (1), 62-68 (2007).
  16. Stanford, S. C. The Open Field Test: reinventing the wheel. Journal of Psychopharmacology. 21 (2), 134-135 (2007).
  17. Ahn, S. H., et al. Basal anxiety during an open field test is correlated with individual differences in contextually conditioned fear in mice. Animal Cells and Systems. 17 (3), 154(2013).
  18. Costa, A. A., Morato, S., Roque, A. C., Tin ós, R. A computational model for exploratory activity of rats with different anxiety levels in elevated plus-maze. Journal of Neuroscience Methods. 236, 44-50 (2014).
  19. Liu, Z., Wu, Y., Liu, T., Li, R., Xie, M. Serotonin regulation in a rat model of exercise-induced chronic fatigue. Neuroscience. 349, 27-34 (2017).
  20. Foley, T. E., Fleshner, M. Neuroplasticity of dopamine circuits after exercise: implications for central fatigue. NeuroMolecular Medicine. 10 (2), 67-80 (2008).
  21. Leite, L. H., Rodrigues, A. G., Soares, D. D., Marubayashi, U., Coimbra, C. C. Central fatigue induced by losartan involves brain serotonin and dopamine content. Medicine & Science in Sports & Exercise. 42 (8), 1469-1476 (2010).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Central Fatigue ModelRat Model ConstructionOpen Field TestElevated Plus MazeExhaustive Swimming TestNeurotransmitter AnalysisSleep Deprivation ProtocolBehavioral AssessmentWater Tank Setup

Powiązane artykuły