Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Indukcja i walidacja starzenia się komórek w pierwotnych komórkach ludzkich

18K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/57782

⸱

20 czerwca 2018

 ,  , 

W tym artykule

Podsumowanie

Tutaj omawiamy szereg protokołów do indukcji i walidacji starzenia się komórek w hodowanych komórkach. Skupiamy się na różnych bodźcach wywołujących starzenie i opisujemy kwantyfikację powszechnych markerów związanych ze starzeniem się. Przedstawiamy szczegóły techniczne na przykładzie fibroblastów, ale protokoły można dostosować do różnych modeli komórkowych.

Streszczenie

Starzenie się komórek to stan permanentnego zatrzymania cyklu komórkowego aktywowany w odpowiedzi na różne szkodliwe bodźce. Aktywacja starzenia się komórek jest cechą charakterystyczną różnych stanów patofizjologicznych, w tym supresji guza, przebudowy tkanek i starzenia się. Induktory starzenia się komórek in vivo są nadal słabo scharakteryzowane. Jednak szereg bodźców może być wykorzystywanych do promowania starzenia się komórek ex vivo. Wśród nich najczęstszymi induktorami starzenia się są wyczerpanie replikacyjne, promieniowanie jonizujące i niejonizujące, leki genotoksyczne, stres oksydacyjny oraz środki demetylujące i acetylujące. W tym miejscu przedstawimy szczegółowe instrukcje, jak wykorzystać te bodźce do wywołania starzenia się fibroblastów. Protokół ten można łatwo dostosować do różnych typów komórek pierwotnych i linii komórkowych, w tym komórek rakowych. Opisano również różne metody walidacji indukcji starzenia. W szczególności koncentrujemy się na pomiarze aktywności enzymu lizosomalnego β-galaktozydazy związanej ze starzeniem się (SA-β-gal), szybkości syntezy DNA za pomocą testu inkorporacji 5-etynylo-2'-deoksyurydyny (EdU), poziomach ekspresji inhibitorów cyklu komórkowego p16 i p21 oraz ekspresji i wydzielaniu członków fenotypu wydzielniczego związanego ze starzeniem się (SASP). Na koniec podajemy przykładowe wyniki i omawiamy dalsze zastosowania tych protokołów.

Wprowadzenie

W 1961 roku Hayflick i Moorhead stwierdzili, że pierwotne fibroblasty w kulturze tracą swój potencjał proliferacyjny po kolejnych przejściach1. Proces ten jest spowodowany sekwencyjnym skracaniem telomerów po każdym podziale komórki. Kiedy telomery osiągają krytycznie krótką długość, są rozpoznawane przez odpowiedź na uszkodzenie DNA (DDR), która aktywuje nieodwracalne zatrzymanie proliferacji - definiowane również jako starzenie replikacyjne. Starzenie replikacyjne jest obecnie jednym z wielu bodźców, o których wiadomo, że wywołują stan trwałego zatrzymania cyklu komórkowego, który sprawia, że komórki stają się niewrażliwe zarówno na mitogeny,....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Ogólne przygotowanie

  1. Przygotować podłoże D10. Suplement DMEM medium-Glutamax z 10% FBS i 1% penicyliny/streptomycyny (Końcowe stężenie: 100 U/mL).
  2. Przygotuj sterylny PBS. Tabletki należy rozpuścić w wodzie zgodnie z instrukcjami producenta. Sterylizuj w autoklawie.
  3. Przygotuj 1x trypsynę. Rozcieńczyć 5 ml Trypsyny-Versene EDTA/10x 1:10 w 45 ml sterylnego PBS.
    Uwaga: W całym protokole stosujemy warunki hodowli komórek, które są bliższe warunkom fizjologicznym dla pierwotnych fibroblastów. Oznacza to, że inkubujemy komórki w temperaturze 37 °C i 5% CO2 , jak to się zwykle robi, ale przy użyciu 5% O2

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Wzmocnienie barwienia SA-β-gal w starzejących się fibroblastach

Ββ-galaktozydaza (β-gal) jest enzymem lizosomalnym, który wykazuje ekspresję we wszystkich komórkach i posiada optimum pH wynoszące 4,025,26Jednakże podczas starzenia się lizosomy zwiększają swoją objętość, co w konsekwencji prowadzi do akumulacji komórek starzejących się β-gal. Zwiększone ilości.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Opisane tutaj protokoły zostały zoptymalizowane pod kątem ludzkich pierwotnych fibroblastów, w szczególności komórek BJ i WI-38. Protokoły starzenia replikacyjnego, promieniowania jonizującego i doksorubicyny zostały z powodzeniem zastosowane do innych typów fibroblastów (HCA2 i IMR90) oraz do innych typów komórek (a mianowicie melanocytów i keratynocytów noworodków lub kardiomiocytów pochodzących z iPSC) w naszym laboratorium. Jednak adaptacje dla dodatkowych typów komórek można zoptymalizować, dostosowując niektóre szc.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Podziękowania

Dziękujemy członkom laboratorium Demaria za owocne dyskusje, a Thijmenowi van Vlietowi za udostępnienie danych i protokołu na temat starzenia się wywołanego promieniowaniem UV.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
DMEM Media - GlutaMAXGibco31966-047
Hyklon surowicy bydlęcej płoduSV30160.03
Penicylina-Streptomycyna (P/S; 10 000 U/ml)LonzaDE17-602E
Dimetylosulfotlenek (DMSO)Sigma-AldrichSC-202581
Woda wolna od nukleaz (nie poddawana działaniu DEPC)AmbionAM9937
Kolba T75Sarstedt833911002
Roztwór trypsyny/EDTALonzaCC-5012
Tabletki PBSGibco18912-014
Probówki do mikrowirówek 1,5 mlSigma-AldrichT9661-1000EA
Corning  Probówki wirówkowe 15 mlSigma-AldrichCLS430791
6-dołkowa płytkaSarstedt83.3920
24-dołkowa płytkaSarstedt83.3922
Szkiełka nakrywkowe okrągłe 13 mmSarstedt83.1840.002
SteriflipMerck ChemicalsSCGP00525
Cez137-źródłoIBL 637 Cez-137γ-ray maszyna
KomoraOpsytec, Dr. Gö bel BS-02
Dichlorowodorek doksorubicyny BioAustralis Fine ChemicalsBIA-D1202-1
Roztwór nadtlenku wodoruSigma-Aldrich7722-84-1
5-aza-2'-deoksycytydynaSigma-AldrichA3656
SAHASigma-AldrichSML0061
Maślan sodu Sigma-AldrichB5887
X-gal (5-bromo-4-chloro-3-indolilo-β-D-galaktopyranozyd)Fisher Scientific7240-90-6
Kwas cytrynowyjednowodny Sigma-Aldrich5949-29-1
Fosforan dwuzasadowy soduAcros organics7782-85-6
Żelazocyjanek potasu Fisher Scientific14459-95-1
Żelazocyjanek potasuFisher Scientific13746-66-2
Chlorek soduMerck Millipore7647-14-5
Chlorek magnezuFisher Chemicals7791-18-6
25% aldehydu glutarowegoFisher Scientific111-30-8,7732-18-5
16% formaldehydu (w/v)Thermo-Fisher Scientific28908
EdU (5-etynylo-2'-deoksyurydyna)Lumiprobe10540
Azydek sulfo-cyjaniny3 (Sulfo-Cy3-azydek)LumiprobeD1330
Askorbinian soduSigma-AldrichA4034
Siarczan miedzi(II) pentahydrat (Cu(II)SO4,5H2O)Sigma-Aldrich209198
Triton X-100Acros organics215682500
bazie TRISRoche11814273001
LightCycler 480 Multiwell Plate 384, biały Folia
Lightcycler 480 Sonda Roche4729757001
Sensifast Lo-ROX kit BiolineBIO-84020
Biblioteka sond UPLSigma-AldrichRóżne
ludzkie IL-6 DuoSet ELISAR& DD6050
Bio-Rad TC20Bio-Rad
Szkiełka zliczająceBio-Rad145-0017
Suchy inkubatorThermo-Fisher ScientificHeratherm
DimethylformamideMerck Millipore1.10983
Parafilm 'M' folia laboratoryjnaBemis 
Igły
do pęsety
promieniowania UV uszczelniająca Roche 4729749001 #PM992

Bibliografia

  1. Hayflick, L., Moorhead, P. S. The serial cultivation of human diploid cell strains. Experimental Cell Research. 25, 585-621 (1961).
  2. Muñoz-Espín, D., Serrano, M. Cellular senescence: from physiology to pathology. Nature reviews. Molecular cell biology. 15, 482-496 (2014).
  3. Sharpless, N. E., Sherr, C. J.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Indukcja starzeniabarwienie SA-beta-galtest wbudowywania EdUekspresja p16 i p21analiza SASPpierwotne fibroblastytraktowanie doksorubicynąpodwojenie populacjimikroskopia fluorescencyjna