Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Przyłóżkowe, z pojedynczym otworem do monitorowania multimodalnego w ciężkim uszkodzeniu mózgu

9.3K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/58993

⸱

26 marca 2019

 ,  ,  , 

W tym artykule

Podsumowanie

Opisano metodę rejestrowania sygnałów monitorowania multimodalności u pacjentów z ciężkimi urazami mózgu przy użyciu techniki pojedynczego otworu przy łóżku pacjenta.

Streszczenie

Monitorowanie ciśnienia śródczaszkowego (ICP) jest podstawą leczenia intensywnej terapii pacjentów z ciężkimi ostrymi uszkodzeniami mózgu, w tym urazowym uszkodzeniem mózgu. Chociaż zwiększenie ICP jest powszechne, dane dotyczące pomiaru i leczenia tych wzrostów ICP są sprzeczne. Coraz częściej uznaje się, że zmiany w równowadze między podażą a popytem na tkankę mózgową są niezwykle ważne i dlatego wymagany jest pomiar wielu modalności. Podejścia nie są standardowe, dlatego ten artykuł zawiera opis podejścia do monitorowania multimodalnego z pojedynczym otworem przy łóżku, które umożliwia przejście sond zaprojektowanych do pomiaru nie tylko ICP, ale także tlenu w tkance mózgowej, przepływu krwi i elektroencefalografii wewnątrzczaszkowej. Opisano kryteria wyboru pacjentów, procedury operacyjne i praktyczne względy dotyczące zabezpieczania sond podczas intensywnej terapii. Metoda ta jest łatwa do wykonania, bezpieczna, pewna i elastyczna w zakresie przyjmowania różnych podejść do monitorowania multimodalnego mających na celu wykrywanie lub zapobieganie wtórnym urazom mózgu.

Wprowadzenie

Poważne urazy mózgu, takie jak urazowe uszkodzenie mózgu (TBI) lub krwotok podpajęczynówkowy, mogą prowadzić do śpiączki, stanu klinicznego, w którym pacjenci nie reagują na otoczenie. Neurochirurdzy i neurointensywiści w dużym stopniu polegają na klinicznym badaniu neurologicznym, ale poważne urazy mózgu mogą uniemożliwić wykrycie zmian związanych ze środowiskiem fizjologicznym mózgu: wzrost ciśnienia śródczaszkowego (ICP), zmniejszenie przepływu krwi w mózgu lub niedrgawkowe napady padaczkowe i rozprzestrzeniające się depolaryzacje. Te zaburzenia fizjologiczne mogą prowadzić do dalszych urazów, określanych jako wtórne uszkodzenie mózgu.

Po ciężkim urazowym uszkodzeniu mózgu, wzrost ICP jest częsty i może skutkować zmniejszonym przepływem krwi, a tym samym wtórnym uszkodzeniem mózgu i neurodeterioracją. Wzrost ICP został udokumentowany nawet u 89% pacjentów1, a pogorszenie neurodewizacji występuje w jednej czwartej, zwiększając śmiertelność z 9,6% do 56,4%2. W związku z tym pomiar ICP jest najczęściej stosowanym biomarkerem rozwoju wtórnego uszkodzenia mózgu i posiada rekomendację poziomu IIb od Brain Trauma Foundation3.

Pomiar ICP został zapoczątkowany ponad 50 lat temu4 przy użyciu cewników, które zostały wprowadzone przez kraniostomię wiertła krętego (często nazywaną zamiennie otworem w zadziorach), zwykle tworzoną w kości czołowej na środkowej linii źrenic, tuż przed szwem koronalnym i przechodzącą do komór. Jednak te cewniki do drenażu komór zewnętrznych (EVD) wymagają anatomii linii środkowej, która nie zawsze występuje po poważnych urazach mózgu, a niewłaściwe umieszczenie może potencjalnie uszkodzić głębokie struktury, takie jak wzgórze. Chociaż EVD pozwalają na drenaż płynu mózgowo-rdzeniowego jako potencjalną opcję leczenia, wskaźniki krwotoków z EVD wynoszą średnio 6–7%5,6.

Monitory ciśnienia śródmiąższowego są wprowadzane przez otwór żarnowy i są powszechną alternatywą i uzupełnieniem EVD ze wskaźnikiem krwotoków 3-5%7,8. Są to mniejsze sondy, które znajdują się 2-3 cm pod wewnętrznym stołem czaszki i pozwalają na ciągły pomiar ciśnienia, ale bez opcji odpływu płynu mózgowo-rdzeniowego, jak to ma miejsce w przypadku EVD. Istniejące badania kohortowe9 i meta-analizy10,11 sugerują, że ukierunkowanie na ICP jako marker wtórnego uszkodzenia mózgu może poprawić przeżywalność; jednak randomizowane, kontrolowane badanie porównujące leczenie ICP na podstawie samego badania neurologicznego z mierzonym ICP nie wykazało korzyści12.

Postępy w neurochirurgii i intensywnej terapii neurologicznej doprowadziły do zrozumienia, że fizjologia mózgu jest bardziej skomplikowana niż sama ICP. Wykazano, że funkcja autoregulacyjna w mózgu jest upośledzona po urazie mózgu13, co prowadzi do zmian w regulacji regionalnego przepływu krwi w mózgu (rCBF). Co więcej, obciążenie napadami niekonwulsyjnymi14 i rozprzestrzeniającymi się depolaryzacjami15 są rozpoznawane za pomocą zapisów z elektrod elektroencefalografii wewnątrzczaszkowej (iEEG). Wykazano, że strategie mające na celu poprawę tlenu w tkance mózgowej (PbtO2) są celem terapii i okazały się wykonalne w dużym, wieloośrodkowym badaniu klinicznym fazy II16.

Ten artykuł opisuje technikę, która pozwala na jednoczesny pomiar wielu modalności - w tym ICP, PbtO2, rCBF i iEEG - za pomocą prostego, pojedynczego otworu umieszczonego przy łóżku pacjenta z ciężkimi ostrymi uszkodzeniami mózgu wymagającymi intensywnej terapii. Uwzględniono dobór pacjenta i chirurgiczne podejście do tej techniki. Technika ta pozwala w szczególności na umieszczenie wielu sond w celu zapewnienia ukierunkowanego monitorowania wielu parametrów fizjologicznych, które mogą zapewnić bardziej czuły i specyficzny system wczesnego ostrzegania w przypadku wtórnych uszkodzeń mózgu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Ten protokół został opracowany jako standard opieki. Retrospektywne wykorzystanie danych zebranych w trakcie opieki zostało zatwierdzone poprzez zrzeczenie się świadomej zgody przez Instytucjonalną Komisję Rewizyjną Uniwersytetu w Cincinnati.

1. Wybór pacjenta

  1. Zidentyfikuj pacjenta z ostrym uszkodzeniem mózgu (urazowe uszkodzenie mózgu, udar).
    UWAGA:
    Wspólna dyskusja między zespołami chirurgicznymi i intensywnej terapii ma kluczowe znaczenie dla zapewnienia konsensusu co do tego, które procesy ostrego uszkodzenia mózgu wymagają monitorowania.
    1. Wyklucz czynniki zakłócające, które mogą zaciemnić badanie kliniczne, w tym podwyższony poziom alkoholu lub narażenie na toksyny.
    2. Należy wykluczyć przeciwwskazania do zabiegów neurochirurgicznych, w tym między innymi płytek krwi <100 g/dl, międzynarodowego znormalizowanego współczynnika >1,5, niedawne podanie antykoagulantów niebędących antagonistami witaminy K; należy zachować ostrożność w przypadku leków przeciwpłytkowych z podwójnym lekiem przeciwpłytkowym (np. zarówno aspiryna, jak i klopidogrel).
  2. Wykonaj partyturę w skali śpiączki Glasgow. Pacjenci są wykluczeni, jeśli wykazują podążanie za poleceniami lub jeśli nie mogą wykonywać poleceń z powodu afazji i mają spontaniczne otwieranie oczu lub głos.
  3. Gdy pacjent zostanie uznany za kwalifikującego się do zaawansowanego neuromonitoringu, należy uzyskać zgodę operacyjną po omówieniu ryzyka i korzyści związanych z zabiegiem.
    nuta: Ryzyko obejmuje ogólne ryzyko znacznego krwotoku 1,9% i teoretyczne ryzyko infekcji. Korzyści obejmują możliwość monitorowania parametrów wewnątrzczaszkowych w terapiach celowanych, chociaż nie ma dowodów klasy I na stosowanie jakiejkolwiek metody monitorowania wewnątrzczaszkowego.

2. Przygotowanie strony i skóry

  1. Zidentyfikuj prawidłowe położenie. Będzie to 11 cm od nasiona lub 1 cm przed szwem koronalnym i 2–3 cm bocznie mniej więcej na linii źrenicy.
  2. Przypnij włosy w obszarze skóry głowy, przez który zostanie umieszczony śruba, jak określono w kroku 2.1. Następnie ponownie zidentyfikuj właściwą lokalizację i zaznacz ją długopisem lub markerem.
  3. Unieruchomić głowę za pomocą taśmy lub innej strategii zabezpieczenia, aby upewnić się, że głowa nie porusza się podczas umieszczania otworu na zadziory.
  4. Wysterylizuj obszar za pomocą roztworu betadyny, pozwalając przygotowanemu obszarowi całkowicie wyschnąć.
    nuta: Dostępne w handlu roztwory chlorheksydyny mogą zawierać oznaki, że nie są one przeznaczone do stosowania w kontakcie z płynem mózgowo-rdzeniowym ze względu na neurotoksyczność.
  5. Używając 10 ml 1% lidokainy z epinefryną, zapewnij odpowiednią analgezję w miejscu zaznaczonym w kroku 2.2. Zacznij od skóry, tworząc duży bąbel, a następnie przesuń igłę do powierzchni okostnej i wstrzyknij kilka cc, gdy igła powoli cofa się do powierzchni skóry.

3. Przygotowanie sprzętu

  1. Ustaw sterylny stół z następującym sprzętem.
    1. Przygotuj zestaw dostępu do czaszki lub porównywalny zestaw instrumentów, który zawiera ostrze skalpela, hemostat, kleszcze, gazę i ręczne wiertło kręte.
    2. Otwórz monitory wewnątrzczaszkowe na sterylne pole (Tabela 1 i Tabela materiałów), w tym (i) zestaw o poczwórnym prześwicie i nakrętki zabezpieczające (do 4); zestaw ten będzie również zawierał wiertło czaszkowe 5,3 mm do użytku z ręcznym wiertłem krętym (krok 3.1.1); (ii) sonda ICP/PbtO2; (iii) sondę rCBF; (iv) elektroda wgłębna ze sztyftem; (v) opcjonalnie (nie pokazano), 70 cewnik śrubowy do mikrodializy lub inna sonda wewnątrzczaszkowa.
    3. Przełóż każdą sondę przez nakrętkę zabezpieczającą, a następnie włóż przez jeden z lumenów. Sonda ICP/PbtO2, najgrubsza sonda, jest umieszczana preferencyjnie w najwyższym świetle, podczas gdy inne sondy mogą zmieścić się w pozostałych lumenach.
    4. Zmierz odległość od końca do końcówki każdej sondy na 2,5–3 cm. Przesuń elektrodę wgłębną, aż najbardziej proksymalna elektroda znajdzie się tuż poza końcem.
    5. Po umieszczeniu sondy w odpowiedniej odległości od końca, dokręć nakrętkę zabezpieczającą na świetle, a następnie samą sondę, blokując ją na sondzie.
    6. Po dokręceniu nakrętki zabezpieczającej poluzuj nakrętkę ze światła i wyjmij każdą sondę z założoną nakrętką zabezpieczającą. Umieść na sterylnym stole obok.

4. Wiercenie otworu na zadziory

  1. Za pomocą skalpela wykonaj 1–2 cm nacięcie w znieczulonym obszarze (krok 2.5). Użyj narzędzia z końcówką, aby oddzielić tkanki podgalejowe, odsłaniając okostną.
  2. Włóż i użyj wiertła sześciokątnego, aby dokręcić wiertło 5.3 mm do wiertła czaszkowego.
  3. Umieść wiertło czaszkowe prostopadle do czaszki. Używaj ciągłego nacisku podczas obracania wiertła. Kontynuuj wiercenie, aż nastąpi wyczuwalna zmiana nacisku. Gdy wiercenie staje się trudniejsze, dociera się do wewnętrznej powierzchni czaszki. Kontynuuj wiercenie z podparciem skierowanym do góry, aby uniknąć zanurzenia wiertła w korze
  4. mózgowej.
  5. Wyjmij wiertło i oczyść otwór w zadziorach z wszelkich wiórów kostnych lub zanieczyszczeń za pomocą kiretu lub hemostatu.
  6. Użyj ostrza skalpela, aby naciąć oponę twardą w sposób krzyżowy. Upewnij się, że opona twarda jest całkowicie otwarta.
    nuta: Niektórzy lekarze mogą stosować alternatywne podejścia, takie jak użycie igły 18 G do perforacji opony twardej za pomocą dotykowego sprzężenia zwrotnego, aż opona twarda zostanie wystarczająco otwarta. Odpowiednia durotomia ma kluczowe znaczenie niezależnie od techniki, a niepełna durotomia może prowadzić do trudności w wprowadzaniu cienkich, elastycznych cewników lub nieprawidłowego ustawienia cewników.

5. Wkładanie czaszkowej

  1. Trzymając za plastikowe skrzydełka, przeciągnij przez otwór zadziorów mocnym, zgodnie z ruchem wskazówek zegara. Uważaj, aby nie dokręcić zbyt mocno, co może uciskać przylegającą skórę i tkanki miękkie.
    nuta: Płyn mózgowo-rdzeniowy może unosić się ze świateł, szczególnie w przypadku zwiększonego ciśnienia śródczaszkowego.
  2. Włóż każdą wstępnie zmierzoną sondę, aż nakrętka zabezpieczająca zetknie się ze światłem.
    1. Opona twarda może zapewniać odporność, szczególnie na cieńsze sondy. Najpierw włóż najcieńszą sondę, co może pomóc uniknąć oporu przejścia.
    2. Włożyć elektrodę wgłębną ze wskazanym trzpieniem. Po umieszczeniu i dokręceniu w świetle delikatnie poluzuj nakrętkę blokującą sondy na tyle, aby zdjąć trzpień, a następnie ponownie dokręć.
      nuta: Gdy wszystkie sondy zostaną zablokowane na światłach, przez które przechodzą, sterylna część procedury jest zakończona.

6. Zabezpieczanie sond

  1. Poproś dostępny personel o podłączenie sondy ICP/PbtO2 do monitora przyłóżkowego w celu oceny ciśnienia śródczaszkowego i tlenu w tkance mózgowej.
  2. Używając jedwabiu lub innej trwałej taśmy, delikatnie zapętl każdą sondę i przyklej ją taśmą do jej światła. Stwarza to odporność na odkształcenia. Należy zachować ostrożność, aby nie tworzyć "załamania" w sondach, ponieważ mają one cienkie elementy, które mogą się złamać.
  3. Opcjonalnie użyj dużego tegadermu o wymiarach 6 "x 2" lub cienkiego paska okluzyjnej gazy wazelinowej do owinięcia podstawy, zmniejszając odsłonięcie interfejsu skóra i otwór zadziorowy. Okluzyjna gaza wazelinowa pełni również funkcję bakteriostatyczną.
  4. Przed transportem użyj tkanej gazy, aby owinąć całą, obejmując każdą z odłączonych sond w rolce, a następnie zaklej koniec jedwabną taśmą. Gwarantuje to, że luźne końce odłączonych sond nie zostaną przypadkowo pociągnięte podczas przemieszczania do i z łóżek operacyjnych lub radiologicznych.

7. Weryfikacja danych sondy

  1. Po zarejestrowaniu początkowego ICP, jeśli jest to klinicznie właściwe, zleć tomografię komputerową głowy bez kontrastu (CT) w celu sprawdzenia położenia i sond, które powinny znajdować się w przedniej podkorowej istocie białej. Ujawni to również wszelkie zdarzenia niepożądane, takie jak krwotok podtwardówkowy lub śródmiąższowy, które rzadko występują podczas umieszczania.
  2. Po sprawdzeniu położenia sond podłącz wszystkie sondy do lokalnego systemu rejestracji danych (sprzęt będzie się różnił). Wykonaj kilka prostych kroków weryfikacji danych, które można zastosować dla każdej modalności, aby upewnić się, że sygnał jest nagrywany zgodnie z planem:
    1. W przypadku ciśnienia śródczaszkowego sprawdź, czy występuje przebieg pulsacyjny. Dane ICP mierzone przez sondę ICP/PbtO2 generują przebieg widoczny na lokalnym systemie rejestrującym.
    2. W przypadku tlenu w tkance mózgowej najpierw zbadaj temperaturę mózgu i sprawdź, czy temperatura jest podobna do tej, której można by oczekiwać dla temperatury głębokiej ciała mierzonej w innym miejscu (pęcherz moczowy, przełyk). Po drugie, sprawdź reakcję monitora, przejściowo zwiększając frakcję wdychanego tlenu (FiO2) pacjenta do 1,0 (100%).
      nuta: W ciągu 15 minut PbtO2 powinno wzrosnąć o co najmniej 10 mmHg. Jeśli tak się nie dzieje, dyfuzja rozpuszczonego tlenu jest utrudniona albo przez małego krwiaka (patrz tomografia komputerowa z kroku 7.1), albo przez miejscowy mikrouraz wywołany umieszczeniem samej sondy. Rozważ lekkie poluzowanie nakrętki zabezpieczającej i obrócenie sondy zgodnie z ruchem wskazówek zegara o 90° i ponowne dokręcenie nakrętki zabezpieczającej w przypadku, gdy na powierzchni wlotu tlenu sondy nagromadziła się niewielka ilość zakrzepłej krwi.
    3. W przypadku przepływu krwi w mózgu najpierw poczekaj na wstępny pomiar, który może potrwać do 6 minut, aby sonda wytworzyła stabilne pole termiczne.
      1. Upewnij się, że temperatura sondy przepływu krwi mieści się w zakresie 0.7 °C od temperatury tkanki mózgowej.
        nuta: Jeśli jest niższa, sonda przepływu krwi jest prawdopodobnie zbyt płytka i będzie musiała zostać wysunięta.
      2. Upewnij się, że numer asystenta umieszczania sondy (PPA), który jest generowany jednocześnie z temperaturą sondy przepływu krwi w 7.2.3.1, wskazuje <2.
        nuta: Pomiar ten jest wykonywany przez sondę mechaniczną, która wykrywa przemieszczenie sondy związane z pulsacją, a wartości wahają się od 0,0 (stabilne pole termiczne) do 10,0 (pobliskie pulsacyjne naczynie krwionośne sprawia, że pole termiczne jest zbyt niestabilne, aby wytworzyć rCBF). Jeśli PPA wynosi >2, rozważ cofnięcie sondy o 0,25–0,5 cm.
    4. W przypadku elektroencefalografii głębokościowej (EEG) należy sprawdzić wzrokowo sygnał.
      nuta: Elektrody wgłębne wymagają elektrody uziemiającej i elektrody odniesienia. Lokalny technik elektrodiagnostyki będzie w stanie pomóc w umieszczeniu tych elektrod. Prawidłowo zarejestrowane EEG powinno wykazywać mieszaninę częstotliwości w skali 15 μV/mm o zakresie dynamiki ± 200–400 μV przy filtrze górnoprzepustowym 0,5 Hz i filtrze dolnoprzepustowym 50 Hz. Jeśli tego nie widać, warto zweryfikować umiejscowienie odniesienia lub gruntu.

8. Opieka nad pacjentem

UWAGA: Po zabiegu nie jest konieczne dalsze kontrolowanie bólu i nie są wymagane żadne profilaktyczne antybiotyki.

  1. Pod koniec okresu monitorowania klinicznego odkręć, wyjmując najpierw każdą z sond z osobna. Następnie przekręć w kierunku przeciwnym do ruchu wskazówek zegara, aż poluzuje się z czaszki i będzie można ją wyjąć.
  2. Użyj sterylnej techniki, aby zszyć otwór skórny i monitorować, czy nie ma wycieku płynu mózgowo-rdzeniowego, krwawienia lub obrzęku w tym miejscu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Doświadczenia w stosowaniu tego podejścia u 43 pacjentów z ciężkim TBI zostały niedawno opublikowane17. Kryteria wyboru pacjentów ograniczają liczbę osób kwalifikujących się do badania, jednak skupienie się wyłącznie na pacjentach z TBI w centrum urazowym poziomu I pozwoliło na objęcie opieką około 2 pacjentów miesięcznie. Liczba ta zależy od liczby pacjentów w szpitalu i może wzrosnąć, jeśli do monitorowania zostaną włączone dodatkowe ostre uszkodzenia mózgu, taki...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Niniejszy artykuł zawiera praktyczne elementy metody wprowadzania wielu sond do mózgu po ostrym uszkodzeniu mózgu, aby ułatwić multimodalne podejście do zrozumienia fizjologii leżącej u podstaw wtórnego uszkodzenia mózgu. Istniejące wytyczne Brain Trauma Foundation sugerują stosowanie monitorowania ciśnienia śródczaszkowego u określonych pacjentów po urazie (poziom IIb)3, chociaż istnieją dowody sugerujące, że jest to różnie praktykowane nawet w centrach urazowych I poziomu o dużej objętości

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Prace te były częściowo wspierane przez Narodowy Instytut Zaburzeń Neurologicznych i Udaru Mózgu Narodowych Instytutów Zdrowia w ramach nagrody numer K23NS101123 (BF). Wyłączną odpowiedzialność za treść ponoszą autorzy i niekoniecznie reprezentują one oficjalne poglądy National Institutes of Health (NIH/NINDS).

Podziękowania

Autorzy pragną podziękować za przywództwo dr Norberto Andaluza (University of Louisville) za jego rolę w promowaniu tej techniki. Pragniemy również wyrazić uznanie dla ciężkiej pracy rezydentów neurochirurgii, którzy udoskonalili tę technikę, oraz personelu pielęgniarskiego zajmującego się opieką neurokrytyczną, który przyjął tę nową technikę z korzyścią dla swoich pacjentów.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Zestaw dostępu do czaszki NatusMedical Inc.NAZestaw dostępu do czaszki
Neurovent WOMQflow 500NACewnik ICP/PBtO2
Sonda perfuzyjna Qflow 500Hemedex, Inc#H0000-1600cewnik rCBF
Qflow 500 Tytanowa śrubaHemedex, Inc#H0000-3644Śruba dostępowa do czaszki
Elektroda głębokościowa SpencerAd-Tech Medical Instrument CorporationNAiEEG

Bibliografia

  1. Jones, P. A., et al. Measuring the burden of secondary insults in head-injured patients during intensive care. Journal of Neurosurgical Anesthesiology. 6 (1), 4-14 (1994).
  2. Juul, N., Morris, G. F., Marshall, S. B., Marshall, L. F. Intracranial hypertension and cerebral perfusion pressure: influence on neurological deterioration and outcome in severe head injury. The Executive Committee of the International Selfotel Trial. Journal of Neurosurgery. 92 (1), 1-6 (2000).
  3. Carney, N., et al. Guidelines for the Management of Severe Traumatic Brain Injury, Fourth Edition. Neurosurgery. 80 (1), 6-15 (2017).
  4. Hawthorne, C., Piper, I. Monitoring of intracranial pressure in patients with traumatic brain injury. Frontiers in Neurology. 5, 121(2014).
  5. Binz, D. D., Toussaint, L. G., Friedman, J. A. Hemorrhagic complications of ventriculostomy placement: a meta-analysis. Neurocritical Care. 10 (2), 253-256 (2009).
  6. Bauer, D. F., Razdan, S. N., Bartolucci, A. A., Markert, J. M. Meta-analysis of hemorrhagic complications from ventriculostomy placement by neurosurgeons. Neurosurgery. 69 (2), 255-260 (2011).
  7. Poca, M. -A., Sahuquillo, J., Arribas, M., Báguena, M., Amorós, S., Rubio, E. Fiberoptic intraparenchymal brain pressure monitoring with the Camino V420 monitor: reflections on our experience in 163 severely head-injured patients. Journal of Neurotrauma. 19 (4), 439-448 (2002).
  8. Koskinen, L. -O. D., Grayson, D., Olivecrona, M. The complications and the position of the Codman MicroSensorTM ICP device: an analysis of 549 patients and 650 Sensors. Acta Neurochirurgica. 155 (11), 2141-2148 (2013).
  9. Badri, S., et al. Mortality and long-term functional outcome associated with intracranial pressure after traumatic brain injury. Intensive Care Medicine. 38 (11), 1800-1809 (2012).
  10. Yuan, Q., et al. Impact of intracranial pressure monitoring on mortality in patients with traumatic brain injury: a systematic review and meta-analysis. Journal of Neurosurgery. 122 (3), 574-587 (2015).
  11. Shen, L., et al. Effects of Intracranial Pressure Monitoring on Mortality in Patients with Severe Traumatic Brain Injury: A Meta-Analysis. PloS One. 11 (12), e0168901(2016).
  12. Chesnut, R. M., et al. A trial of intracranial-pressure monitoring in traumatic brain injury. The New England Journal of Medicine. 367 (26), 2471-2481 (2012).
  13. Aries, M. J. H., et al. Continuous determination of optimal cerebral perfusion pressure in traumatic brain injury. Critical Care Medicine. 40 (8), 2456-2463 (2012).
  14. Vespa, P., et al. Metabolic crisis occurs with seizures and periodic discharges after brain trauma. Annals of Neurology. 79 (4), 579-590 (2016).
  15. Hartings, J. A., et al. Spreading depolarisations and outcome after traumatic brain injury: a prospective observational study. The Lancet. Neurology. 10 (12), 1058-1064 (2011).
  16. Okonkwo, D. O., et al. Brain Oxygen Optimization in Severe Traumatic Brain Injury Phase-II: A Phase II Randomized Trial. Critical Care Medicine. 45 (11), 1907-1914 (2017).
  17. Foreman, B., Ngwenya, L. B., Stoddard, E., Hinzman, J. M., Andaluz, N., Hartings, J. A. Safety and Reliability of Bedside, Single Burr Hole Technique for Intracranial Multimodality Monitoring in Severe Traumatic Brain Injury. Neurocritical Care. , (2018).
  18. Stuart, R. M., et al. Intracranial multimodal monitoring for acute brain injury: a single institution review of current practices. Neurocritical Care. 12 (2), 188-198 (2010).
  19. Talving, P., et al. Intracranial pressure monitoring in severe head injury: compliance with Brain Trauma Foundation guidelines and effect on outcomes: a prospective study. Journal of Neurosurgery. 119 (5), 1248-1254 (2013).
  20. Aiolfi, A., Benjamin, E., Khor, D., Inaba, K., Lam, L., Demetriades, D. Brain Trauma Foundation Guidelines for Intracranial Pressure Monitoring: Compliance and Effect on Outcome. World Journal of Surgery. 41 (6), 1543-1549 (2017).
  21. Pinggera, D., Petr, O., Putzer, G., Thomé, C. How I do it/Technical note: Adjustable and Rigid Fixation of Brain Tissue Oxygenation Probe (LICOX) in Neurosurgery - from bench to bedside. World Neurosurgery. 117, 62-64 (2018).
  22. Gardner, P. A., Engh, J., Atteberry, D., Moossy, J. J. Hemorrhage rates after external ventricular drain placement. Journal of Neurosurgery. 110 (5), 1021-1025 (2009).
  23. Maniker, A. H., Vaynman, A. Y., Karimi, R. J., Sabit, A. O., Holland, B. Hemorrhagic complications of external ventricular drainage. Neurosurgery. 59 (4 Suppl 2), ONS419-424; discussion ONS424-425 (2006).
  24. Dreier, J. P., et al. Recording, analysis, and interpretation of spreading depolarizations in neurointensive care: Review and recommendations of the COSBID research group. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism: Official Journal of the International Society of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 37 (5), 1595-1625 (2017).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Umiejscowienie otworu trepanacyjnegomonitorowanie ciśnienia wewnątrzczaszkowegoutlenowanie tkanki mózgowejprzepływ krwi w mózguwewnątrzczaszkowa elektroencefalografiaciężki uraz czaszkowo-mózgowytechnika mocowania sondyneuromonitorowanie przyłóżkowe