Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Identyfikacja nadprodukcji aminokwasów za pomocą markerów bogatych w rzadkie kodony

8.1K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/59331

⸱

24 czerwca 2019

 ,  ,  ,  ,  , 

W tym artykule

Podsumowanie

To badanie przedstawia alternatywną strategię do konwencjonalnej metody opartej na toksycznych analogach w identyfikacji nadprodukcji aminokwasów za pomocą markerów bogatych w rzadkie kodony, aby osiągnąć jednocześnie dokładność, czułość i wysoką przepustowość.

Streszczenie

Aby zaspokoić stale rosnący rynek aminokwasów, potrzebne są wysokowydajne szczepy produkcyjne. Nadproducenci aminokwasów są konwencjonalnie identyfikowani poprzez wykorzystanie konkurencji między aminokwasami a ich analogami. Jednak ta metoda oparta na analogach ma niską dokładność, a właściwe analogi dla określonych aminokwasów są ograniczone. W tym miejscu przedstawiamy alternatywną strategię, która umożliwia dokładne, czułe i wysokoprzepustowe badania przesiewowe nadprodukcji aminokwasów przy użyciu markerów bogatych w rzadkie kodony. Strategia ta jest inspirowana zjawiskiem tendencyjności użycia kodonów w translacji białek, dla której kodony są klasyfikowane jako powszechne lub rzadkie na podstawie ich częstości występowania w kodującym DNA. Translacja rzadkich kodonów zależy od odpowiadających im rzadkich transferowych RNA (tRNA), które nie mogą być w pełni naładowane przez pokrewne aminokwasy pod wpływem głodu. Teoretycznie rzadkie tRNA mogą być ładowane, jeśli występuje nadmiar aminokwasów po naładowaniu synonimicznych powszechnych izoakceptorów. W związku z tym opóźnione translacje spowodowane rzadkimi kodonami mogą zostać przywrócone przez karmienie lub wewnątrzkomórkową nadprodukcję odpowiednich aminokwasów. Przy takim założeniu ustanawia się system selekcji lub badań przesiewowych w celu identyfikacji nadprodukcji aminokwasów poprzez zastąpienie wspólnych kodonów docelowych aminokwasów ich synonimicznymi rzadkimi alternatywami w genach oporności na antybiotyki lub genach kodujących białka fluorescencyjne lub chromogenne. Wykazaliśmy, że ekspresja białek może być znacznie utrudniona przez włączenie rzadkich kodonów i że poziomy białek korelują dodatnio ze stężeniami aminokwasów. Korzystając z tego systemu, nadproducenci wielu aminokwasów mogą być łatwo odsiewani z bibliotek mutacji. Ta strategia oparta na rzadkich kodonach wymaga tylko jednego zmodyfikowanego genu, a gospodarz ma mniejsze szanse na uniknięcie selekcji niż w przypadku innych metod. Oferuje alternatywne podejście do pozyskiwania nadproducentów aminokwasów.

Wprowadzenie

Obecna produkcja aminokwasów opiera się głównie na fermentacji. Jednak miana i plony dla większości szczepów produkujących aminokwasy są poniżej rosnących wymagań globalnego rynku aminokwasów, który jest wart miliardy dolarów1,2. Uzyskanie wysokowydajnych nadproducentów aminokwasów ma kluczowe znaczenie dla ulepszenia przemysłu aminokwasowego.

Tradycyjna strategia identyfikacji nadproducentów aminokwasów wykorzystuje konkurencję między aminokwasami i ich analogami w syntezie białek3,4. Analogi te są w stanie ładować tRNA, kt....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Budowa plazmidów wyrażających geny markerowe bogate w rzadkie kodony

  1. Należy wybrać gen markerowy, który zawiera odpowiednią liczbę wspólnych kodonów dla docelowego aminokwasu.
    UWAGA: Dla L-leucyny, gen oporności na kanamycynę kanR, który zawiera 29 kodonów leucyny, z których 27 to kodony powszechne, jest używany do budowy systemu selekcji13. Gen gfp, który zawiera 17 wspólnych kodonów z 19 kodonów leucyny, lub fioletowy gen kodujący białko prancerpurple (ppg), który zawiera 14 wspólnych kodonów leucyny, jest używany w systemie przesiewowym (tabela uzupełniająca 1

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

W systemie selekcyjnym należy zaobserwować gwałtowny spadek wartości OD600 u szczepów zawierających rzadkie kodony w genie oporności na antybiotyk w porównaniu ze szczepem zawierającym gen oporności typu dzikiego podczas hodowli w odpowiednim medium (Rycina 1a). W tych samych warunkach spadek wartości OD600 komórek staje się bardziej wyraźny wraz ze wzrostem liczby rzadkich kodonów w genie oporności na antybiotyk (Ry.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Liczba rzadkich kodonów w genach markerowych oraz pożywka selekcyjna lub przesiewowa mają kluczowe znaczenie dla zahamowania ekspresji białek z genów markerowych zmodyfikowanych rzadkimi kodonami. Jeśli nie można wykryć znaczącej różnicy między ekspresjami białek z genów markerowych typu dzikiego a ich pochodnych, zwiększenie liczby rzadkich kodonów lub użycie pożywki o ograniczonej zawartości składników odżywczych może wzmocnić różnice. Jeśli jednak efekt hamowania jest zbyt silny, ekspresja białka może nie zostać odzys.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Praca była wspólnie wspierana przez Narodową Fundację Nauk Przyrodniczych Chin (grant nr 21676026), Narodowy Kluczowy Program Badawczo-Rozwojowy Chin (grant nr 2017YFD0201400) oraz Chińską Fundację Nauk Podoktoranckich (grant nr 2017M620643). Prace w UCLA Institute of Advancement (Suzhou) były wspierane przez wewnętrzne granty z prowincji Jiangsu i Parku Przemysłowego Suzhou.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
AcetonitrylThermo51101
EasyPure HiPure Plasmid MiniPrep KitTransgenEM111-01
EasyPure Zestaw do szybkiej ekstrakcji żeluTransgenEG101-01
Gibson assembly master mixNEBE2611S
Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranosideSolarbioI8070
L-leucynaSigmaL8000
Czytnik mikropłytekBiotekSynergy 2
n-heksanThermo H3061
Izotiocyjanian fenyluSigmaP1034
PrancerPurple CPB-37-441ATUMCPB-37-441
TransStar FastPfu Polimeraza DNA muchyTransgenAP231-01
TriethylamineSigmaT0886
Ultra-wysokowydajna chromatografia cieczowaAgilent1290 Infinity II
Typ dziki C. glutamicumATCC13032
XL10-Gold E. coli kompetentnakomórka Agilent200314
ZORBAX RRHD Eclipse Plus C18 kolumnaAgilent959759-902K
:

Bibliografia

  1. Tatsumi, N., Inui, M. Corynebacterium glutamicum: biology and biotechnology. , Springer-Verlag. Berlin and Heidelberg. (2012).
  2. Tonouchi, N., Ito, H. Present global situation of amino acids in industry. Amino Acid Fermentation. Yokota, A., Ikeda, M. , Springer. 3-14 (2017).
  3. Gusyatiner, M., Lunts, M., Kozlov, Y., Ivanovskaya, L., Voroshilova, E. DNA cod....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Markery rzadkich kodonówstronniczość w użyciu kodonówanaliza ekspresji białekprzesiewanie białek fluorescencyjnychtest markerów chromogennychprotokół transformacji plazmidowejpomiar OD600analiza aminokwasów metodą HPLCoptymalizacja rygorystyczności selekcji