Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Wytwarzanie organoidów z pozawątrobowych dróg żółciowych myszy

10K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/59544

⸱

23 kwietnia 2019

W tym artykule

Podsumowanie

Ten protokół opisuje produkcję mysiego pozawątrobowego przewodu żółciowego 3-wymiarowego systemu organoidowego. Te organoidy żółciowe można utrzymywać w kulturze w celu badania biologii cholangiocytów. Organoidy żółciowe wyrażają markery zarówno komórek progenitorowych, jak i żółciowych i składają się ze spolaryzowanych komórek nabłonka.

Streszczenie

Cholangiopatie, które wpływają na pozawątrobowe drogi żółciowe (EHBD), obejmują atrezję dróg żółciowych, pierwotne stwardniające zapalenie dróg żółciowych i raka dróg żółciowych. Nie mają skutecznych opcji terapeutycznych. Narzędzia do badania EHBD są bardzo ograniczone. Naszym celem było opracowanie specyficznego dla narządu, wszechstronnego, opartego na dorosłych komórkach macierzystych, przedklinicznego modelu cholangiocytów, który można łatwo wygenerować z myszy dzikich i genetycznie zmodyfikowanych. W związku z tym informujemy o nowatorskiej technice opracowywania systemu hodowli organoidów EHBD (EHBDO) z dorosłych myszy EHBD. Model jest ekonomiczny, może być łatwo analizowany i ma wiele dalszych zastosowań. W szczególności opisujemy metodologię izolacji mysiego EHBD i dysocjacji pojedynczych komórek, inicjacji, rozmnażania hodowli organoidów oraz długotrwałego utrzymania i przechowywania. W tym artykule opisano również przetwarzanie EHBDO w immunohistochemii, mikroskopii fluorescencyjnej i kwantyfikacji obfitości mRNA za pomocą ilościowej reakcji łańcuchowej polimerazy z odwrotną transkrypcją w czasie rzeczywistym (qRT-PCR). Protokół ten ma znaczące zalety oprócz wytwarzania organoidów specyficznych dla EHBD. Zastosowanie kondycjonowanej pożywki z ogniw L-WRN znacznie obniża koszt tego modelu. Zastosowanie mysich EHBD zapewnia prawie nieograniczoną ilość tkanek do generowania hodowli, w przeciwieństwie do tkanek ludzkich. Wygenerowane mysie EHBDO zawierają czystą populację komórek nabłonkowych z markerami endodermalnych komórek progenitorowych i zróżnicowanych komórek żółciowych. Hodowane organoidy zachowują jednorodną morfologię poprzez wiele pasaży i mogą być odzyskane po długotrwałym okresie przechowywania w ciekłym azocie. Model pozwala na badanie proliferacji komórek progenitorowych dróg żółciowych, może być manipulowany farmakologicznie i może być generowany z genetycznie modyfikowanych myszy. Potrzebne są dalsze badania, aby zoptymalizować warunki hodowli w celu zwiększenia wydajności posiewu, oceny funkcjonalnej dojrzałości komórek i bezpośredniego różnicowania komórek. Pożądane jest również opracowanie modeli kokultur i bardziej neutralnej biologicznie macierzy zewnątrzkomórkowej.

Wprowadzenie

Cholangiopatie są nieuleczalnymi, przewlekłymi, postępującymi zaburzeniami, które wpływają na komórki żółciowe zlokalizowane w wewnątrz- i zewnątrzwątrobowych drogach żółciowych (EHBD)1. Niektóre cholagiopatie, takie jak pierwotne stwardniające zapalenie dróg żółciowych, rak dróg żółciowych, atrezja dróg żółciowych i torbiele żółciowe, wpływają głównie na EHBD. Rozwój terapii cholangiopatii jest ograniczony ze względu na ograniczoną dostępność modeli przedklinicznych. Ponadto wcześniejsze badania koncentrowały się na cholangiopatiach zgrupowanych razem: wątroba, intra- i EHBD. Jednak intra- i EHBD mają wyraźne pochodzenie embrionalne i dlatego ....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie opisane tutaj metody zostały zatwierdzone przez Instytucjonalny Komitet ds. Opieki i Użytkowania Zwierząt (IACUC) Uniwersytetu Michigan.

1. Przygotowanie sprzętu i materiałów do izolacji myszy EHBD

  1. Przygotować podłoże wysiewające i bufor myjący (tabela materiałów) w stożkowych probówkach o pojemności 50 ml i przechowywać je w temperaturze 4 °C lub na lodzie do czasu użycia.
  2. Ustaw stół chirurgiczny (Rysunek 1B). Przygotuj wysterylizowane narzędzia chirurgiczne (Rysunek 1C).
  3. Umieścić sterylną 24-dołkową płytkę w inkubatorze do ....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Nasz protokół opisuje generowanie organoidów EHBD myszy, które są specyficzne tkankowo i pochodzą z dorosłych komórek macierzystych. Po wyhodowaniu organoidów, formowanie struktur torbielowatych można zaobserwować już 1 dzień po izolacji EHBD. Podczas generowania hodowli zazwyczaj nie obserwuje się zanieczyszczenia fibroblastami. Wydajność wysiewu EHBDO wynosi około 2%, niezależnie od tego, czy są one izolowane z myszy noworodkowych czy dorosłych (starszych niż 2 miesiące) (

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

W pracy opisano wygenerowanie organotypowego trójwymiarowego modelu mysich cholangiocytów EHBD. Ważne kroki w generowaniu hodowli EHBDO obejmują skrupulatne wypreparowanie EHBD w celu uniknięcia zanieczyszczenia komórek trzustki, utrzymanie sterylnych warunków w celu zapobieżenia skażeniu bakteryjnemu i grzybiczemu oraz staranną manipulację po odwirowaniu w celu uniknięcia utraty materiału komórkowego. Wymagane jest ścisłe przestrzeganie opisanych warunków temperaturowych. Istnieją pewne ograniczenia tej techniki. EHBD d.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy oświadczają, że nie mają sprzecznych interesów.

Podziękowania

Ta praca była wspierana przez American Association for the Study of Liver Diseases Pinnacle award (dla N.R.) oraz National Institutes of Health, National Institute of Diabetes and Digestive and Kidney Diseases (nagrody P30 DK34933 dla N.R., P01 DK062041 dla J.L.M.). Dziękujemy dr Ramonowi Ocadiz-Ruizowi (University of Michigan) za pomoc w opracowaniu tej metodologii.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
L-WRN pożywka do hodowli komórkowych
Advanced DMEM/F12Life Technologies12634-010
Płodowa surowica bydlęca (FBS)1%Life Technologies10437-028
Penicylina-Streptomycyna100 U/mlLife Technologies15140-122
Bufor myjący
Sól fizjologiczna buforowana fosforanami (PBS)50 mlLife Technologies10010-023
Penicylina-Streptomycyna125 U/mlLife Technologies15140-122
Amfoterycyna B 6,25 &mikro; g/mLLife Technologies15290-018
Pożywka do hodowli organoidów
L-WRN Pożywka kondycjonowana 1:1ATCCCRL-3276
Zaawansowany DMEM/F121:1Life Technologies12634-010
Penicylina-Streptomycyna100 U/mlLife Technologies15140-122
N-glutamina10 &mikro; l/mLLife Technologies35050-061
Kwas N-2-hydroksyetylopiperazyno-N-2-etanosulfonowy, HEPES10 mMLife Technologies15630-080
B2710 µ l/mLGibco17504-044
N210 &mikro; l/mLGibco17502-048
Pożywka do wysiewu organoidów
Pożywka do hodowli organoidów 
Naskórkowy czynnik wzrostu (EGF)50 ng / mlInvitrogenPMG8041
Czynnik wzrostu fibroblastów-10 (FGF10)100 ng / mlPeproTech100-26
Przeciwciała pierwszorzędowe< / strong>
Przeciwciało anty-cytokeratyny 19 (CK19), Królik1:250Abcamab53119
Region determinujący płeć Przeciwciało Y-Box 9 (SOX9), Królik1:200Santa Cruzsc-20095
Przeciwciało Homeobox 1 (PDX1) trzustki dwunastnicy, Królik1:2000DSRBF109-D12
Przeciwciało E-kadheryny, Koza1:500Santa Cruzsc-31020
Przeciwciało acetylowane i alfa;-tubulinowe, Mysz1:500Sigma-AldrichT6793
Przeciwciała
488 oznakowany anty-królik, osioł IgG1:1000InvitrogenA-21206
594 oznakowany anty-koza, osioł IgG1:1000InvitrogenA-11058
568 oznaczony anty-mysz, Koza IgG2b1:500InvitrogenA-21144
Test
TopFlash HEK293 linia komórkowaATCCCRL-1573
Zestaw do oznaczania lucyferazyBiotium30003-2
0,05% Trypsyna-EDTALife Technologies25300054
0,4% Trypan Blue SolutionLife Technologies15250061
Dodatkowe materiały i odczynniki
Matryca podstawowa, bez fenolu MatrigelCORNING356237
Bufor dysocjacyjny, AccutaseGibcoA1110501
Pożywka do zamrażania kultur komórkowych, RecoveryLife Technologies12648010
Sitko komórkowe (70 &mikro; m, sterylizowane)Fisherbrand22363548
Ekstrakcja RNA z tiocyjanianianu guanidynianu, TRIzolInvitrogen15596026
Żel do przetwarzania próbek, HistoGelThermo Fisher ScientificHG-4000-012
Uniwersalny zestawATCC30-1012K
1,5 ml probówkaFisherbrand05-408-129
24-dołkowaUSA ScientificCC7682-7524
Stożkowa probówka wirówkowa 50 mlFisher scientific14-432-22
drugorzędowe reporterowy TopFlash Wnt do wykrywania mykoplazmy do mikrowirówki Płytka Mikroskop fluorescencyjny Nikon Eclipse E800 Mikroskop odwrócony Biotium 30003-2 Taca do sekcji zwłok Fisherbrand 13-814-61

Bibliografia

  1. Lazaridis, K. N., LaRusso, N. F. The Cholangiopathies. Mayo Clinic Proceedings. 90 (6), 791-800 (2015).
  2. Carpino, G., et al. Stem/Progenitor Cell Niches Involved in Hepatic and Biliary Regeneration. Stem Cells International. 2016, 3658013(2016).
  3. DiPaola....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

pozawątrobowy przewód żółciowyhodowla organoidówizolacja EHBD myszypropagacja organoidówprzechowywanie organoidówanaliza immunohistochemicznaoznaczanie qRT-PCRmacierz podstawnapasażowanie organoidówprzechowywanie kriogeniczne