Artykuł metodologiczny

Precyzyjne wdrożenie testów minimalnej dawki rumienia (MED) w celu oceny indywidualnej zmienności odpowiedzi zapalnej u ludzi

DOI:

10.3791/59813

⸱

3 października 2019

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Psychology, Virginia Tech, 2Graduate Program in Translational Biology, Medicine and Health, Virginia Tech, 3Department of Biomedical Sciences and Pathobiology, Virginia-Maryland College of Veterinary Medicine, Virginia Tech, 4Department of Human Development and Family Science, Virginia Tech, 5Wellness Center, Virginia Tech, 6Department of Statistics, Virginia Tech, 7Department of Basic Science Education, Virginia Tech Carilion School of Medicine

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Badanie minimalnej dawki rumienia (MED) służy do ustalania schematów dawkowania dla fototerapii promieniowaniem ultrafioletowym. Może ocenić indywidualne różnice w odpowiedzi zapalnej, ale brakuje metodologii osiągania powtarzalnych wyników. W tym miejscu przedstawiamy precyzyjną implementację MED i demonstrujemy jej zdolność do uchwycenia indywidualnej zmienności odpowiedzi zapalnej.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Badanie minimalnej dawki rumienia (MED) jest często używane w warunkach klinicznych do określenia najmniejszej ilości promieniowania ultrafioletowego (UV) niezbędnego do wytworzenia rumienia (zapalnego zaczerwienienia) na powierzchni skóry. W tym kontekście MED jest uważany za kluczowy czynnik w określaniu dawek początkowych dla fototerapii UV w powszechnych chorobach skóry, takich jak łuszczyca i egzema. W warunkach badawczych testy MED mają również potencjał, aby stać się potężnym narzędziem do oceny zmienności reakcji zapalnych u osób i między nimi. Jednak testy MED nie zostały powszechnie przyjęte do użytku w warunkach badawczych, prawdopodobnie z powodu braku opublikowanych wytycznych, co stanowi barierę w uzyskaniu powtarzalnych wyników tego testu. Ponadto protokoły i sprzęt do ustalania MED znacznie się różnią, co utrudnia porównywanie wyników między laboratoriami. W tym miejscu opisujemy precyzyjną i powtarzalną metodę indukowania i pomiaru rumienia powierzchownego przy użyciu nowo zaprojektowanych protokołów i metod, które można łatwo dostosować do innego sprzętu i środowisk laboratoryjnych. Opisana tutaj metoda zawiera szczegółowe informacje na temat procedur, które pozwolą na ekstrapolację znormalizowanego harmonogramu dawkowania na inne urządzenia, tak aby protokół ten można było dostosować do dowolnego źródła promieniowania UV.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Badanie minimalnej dawki rumienia (MED) jest zatwierdzoną przez FDA procedurą oceny wrażliwości skóry na promieniowanie, zazwyczaj w zakresie UVB, chociaż MED można określić na innych długościach fal w zakresie UV i widzialnym1. Rumień definiuje się jako powierzchowne zaczerwienienie na powierzchni skóry spowodowane obrzękiem naczyń włosowatych (późniejsze stadia rumienia są częściej znane jako oparzenie słoneczne). Testy MED są szeroko stosowane w literaturze dermatologicznej i klinicznej fototerapii w celu zidentyfikowania minimalnej ilości promieniowania ultrafioletowego (UV), która spowoduje najmniejszą jednostkę mierzalnej zmiany w zaczerwienieniu skóry. Testy MED można przeprowadzić za pomocą dostępnej na rynku lampy UV, równoważnej z tym, co jest używane w większości komercyjnych solariów.

Testy MED polegają na ciągłym rozpraszaniu promieniowania UV lub światła z widzialnego widma na powierzchnię skóry przez określony czas, przy czym schematy dawkowania zależą przede wszystkim od pigmentacji skóry oraz intensywności i rodzaju promieniowania. Procedura ta jest powszechnie stosowana w warunkach klinicznych w celu określenia schematów dawkowania dla pacjentów otrzymujących terapię promieniowaniem UV w chorobach skóry, takich jak łuszczyca i egzema2,3. Podstawowe procedury określania MED w warunkach klinicznych zostały opisane gdzie indziej4 i mogą być używane do regulacji całkowitej dawki promieniowania UV w górę lub w dół, w zależności od indywidualnych różnic w wrażliwości skóry.

Pigmentacja skóry jest prawdopodobnie najważniejszą zmienną specyficzną dla danego tematu w przeprowadzaniu i mierzeniu wyników procedury MED6. Dzieje się tak, ponieważ czas ekspozycji na promieniowanie UV wymagany do wywołania minimalnej reakcji na rumień zależy głównie od jasności lub ciemności skóry uczestnika, zgodnie z typem skóry Fitzpatricka (FST) uczestnika. FST7 to numeryczny schemat do klasyfikacji koloru ludzkiej skóry. Skala Fitzpatricka jest uznanym narzędziem do badań dermatologicznych nad pigmentacją ludzkiej skóry8,9 i klasyfikuje ludzką skórę do jednej z sześciu kategorii od najjaśniejszej (FST I) do najciemniejszej (FST VI).

Ciemniejsze typologie FST wymagają dłuższego czasu trwania UV, dlatego ważna jest dokładna klasyfikacja FST. Istnieje obszerna literatura na temat metod dokładnej oceny FST, wykorzystujących szeroką gamę podejść, w tym samoopis, wywiad dermatologiczny i ocenę opartą na instrumentach. Wykazano, że oceny FST dla obserwatorów są skorelowane z obecnym, ale nie naturalnym kolorem skóry10, jednak FST można określić subiektywnie11 za pomocą samooceny za pomocą kwestionariusza12 i/lub obiektywnej oceny za pomocą spektrofotometrii. Wykazano, że typowanie Fitzpatricka za pomocą spektrofotometrii ściśle koreluje z samoopisem uczestnika w wielu badaniach10,13,14,15.

Pomimo użyteczności i powszechnego stosowania testów MED w usługach klinicznych, procedura ta nie została powszechnie przyjęta w warunkach laboratoryjnych do pomiaru indywidualnej zmienności w odpowiedzi na stymulację prozapalną. Celem przedstawionej tutaj metodologii jest dostarczenie technik i procedur krok po kroku, które zwiększają precyzję i odtwarzalność procedury testowej MED, w celu ułatwienia przyszłych prac w warunkach laboratoryjnych skoncentrowanych na drobnoziarnistej kwantyfikacji wewnątrzosobniczej zmienności odpowiedzi zapalnej. Ponadto zapewniamy reprezentatywne wyniki, które ilustrują zdolność tego ustandaryzowanego protokołu do dokładnego uchwycenia różnic w stanie zapalnym u poszczególnych osób.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie opisane poniżej metody, w tym wykorzystanie ludzkich ochotników, zostały sprawdzone i zatwierdzone przez lokalną Komisję Rewizyjną Instytucji (IRB) i są zgodne z Deklaracją z Helsinek i Raportem Belmonta. Wszyscy uczestnicy (N=72) podpisali świadomą zgodę zgodnie z protokołem IRB. Kryteria włączenia/wykluczenia i procedury odstawienia zostały opracowane w celu maksymalizacji bezpieczeństwa uczestników, a wszelkie odstępstwa od tych procedur powinny być rozważane w świetle ich wpływu na ryzyko i tolerancję dla ludzi. W kontekście prezentowanej tu pracy, kryteria wykluczające ograniczały udział do osób, które nie miały osobistej lub rodzinnej historii stanów zapalnych ani żadnych legalnych lub nielegalnych substancji. Uzasadnieniem takiego postępowania jest fakt, że czynniki te mogą wpływać na reakcje na procedurę badania MED.

1. Wybór uczestnika

  1. Stosuj następujące kryteria włączenia: 18-55 lat; w dobrym ogólnym stanie zdrowia określonym przez Medical Symptom Checklist (MSCL)5; potrafi zrozumieć i komunikować się na temat laboratoryjnego protokołu bezpieczeństwa przedstawionego w języku angielskim; może wyrazić pisemną zgodę.
  2. Należy stosować następujące kryteria wykluczenia: typ skóry wg Fitzpatricka I, określony na podstawie samoopisu; regularne korzystanie z komercyjnego sprzętu do opalania; rany lub zmiany skórne w planowanym miejscu narażenia; obecny rak skóry lub osobista historia raka skóry; historia raka skóry w rodzinie; cukrzyca; łuszczyca lub inna choroba zapalna skóry; choroba naczyń obwodowych, choroba tętnic obwodowych, choroba Raynauda, lub jakiekolwiek inne zdiagnozowane zaburzenia krążenia; wszelkie mimowolne zaburzenia motoryczne; uczulenie na taśmę klejącą; przyjmuje sterydy wziewne na astmę (np. Flutykazon); przyjmuje jakiekolwiek kortykosteroidy; 2 lub więcej z poniższych (zdiagnozowane nadciśnienie tętnicze, hiperlipidemia, wysoki poziom cholesterolu, palenie papierosów, choroba wieńcowa lub miażdżycowa w wywiadzie rodzinnym (rodzice/rodzeństwo przed 55 rokiem życia)); uzależnienie od substancji czynnej - legalne lub nielegalne; osoby uzależnione od substancji psychoaktywnych, które dopiero rozpoczynają proces zdrowienia (mniej niż jeden rok); stosowanie leków wpływających na czynność OUN, w tym psychotropów, leków opiatowych lub kortykosteroidów, w ciągu ostatnich 3 miesięcy; wszelkie przepisane leki psychotropowe, obecnie lub w ciągu ostatnich 3 miesięcy (w tym leki na lęk, depresję lub inne problemy psychologiczne).

2. Planowanie i przygotowanie do MED

  1. Zaplanuj uczestników na dwie wizyty: pierwszą, zdarzenie ekspozycji MED (około 45 minut), a drugie, obserwację w celu zebrania odczytów spektrofotometrii (około 10 minut). Umów się na wizytę kontrolną na 24 godziny po pierwszej wizycie.
  2. Przed przybyciem uczestników należy rozłożyć i ustawić niezbędny sprzęt, w tym dwa mankiety do testowania dawek i sprzęt ochronny. Przygotuj różne ubrania chroniące przed promieniowaniem UV (takie jak rękawy sportowe chroniące przed promieniowaniem UV, rękawice chroniące przed promieniowaniem UV, fartuchy medyczne z długim rękawem, prześcieradła chroniące przed promieniowaniem UV i taśmę do mocowania prześcieradeł) zarówno dla uczestnika, jak i badacza, aby zakryć całą skórę narażoną na promieniowanie UV.
  3. Skalibruj spektrofotometr zgodnie ze specyfikacją producenta. Zrób to dla każdego tematu i każdej sesji.

3. Określanie typu skóry Fitzpatricka (FST)

  1. Kiedy uczestnik przyjedzie na zdarzenie związane z narażeniem na MED (Wizyta 1), zidentyfikuj FST za pomocą samoopisu lub spektrofotometrii. Aby zmaksymalizować bezpieczeństwo uczestników, nie należy przeprowadzać testów MED na uczestnikach sklasyfikowanych jako FST 1. W przypadku wszystkich innych typów skóry Fitzpatricka (2-6) użyj skali FST, aby określić, który harmonogram ekspozycji należy zastosować.

4. Aplikacja mankietu 1

  1. Wyjaśnij uczestnikowi, jak działa test MED i poproś o pytania, zanim przejdziesz dalej.
  2. Ogólnie rzecz biorąc, zabieg MED należy wykonać po wewnętrznej stronie niedominującego przedramienia.
  3. Umieść mankiet 1 (ze zdjętymi wszystkimi osłonami otworów), unikając piegów, pieprzyków, blizn, włosów (w miarę możliwości) oraz wszelkich skaleczeń, siniaków lub zmian na skórze. Usuń tylko ochronny podkład z papieru woskowanego z bocznych (nie środkowych) części mankietu 1. Ważne jest, aby nie usuwać podłoża z papieru woskowanego ze środkowej części mankietu 1, ponieważ klej ma silny potencjał podrażniania skóry po odklejeniu po odczytach linii podstawowej, powodując zaczerwienienie skóry w pobliżu otworów.
  4. Po umieszczeniu Mankietu 1 w zamierzonym miejscu ekspozycji, umieść punkty orientacyjne za pomocą trwałego markera, aby upewnić się, że Mankiet 2 będzie znajdował się dokładnie w tym samym miejscu. Zaznacz skórę w czterech punktach na zewnątrz zagięć każdej z bocznych klapek mankietu 1, w prawym górnym rogu, lewym górnym, prawym dolnym i lewym dolnym punkcie.
    1. Spraw, aby te ślady były wystarczająco ciemne, aby przetrwały około 24 godzin, ponieważ zostaną również użyte do umieszczenia Mankietu 3 w dokładnie tym samym miejscu podczas wizyty kontrolnej 24 godziny później.

5. Odczyt podstawowy: Mankiet 1 Zastosowanie

  1. Za pomocą spektrofotometru, który został skalibrowany zgodnie ze specyfikacjami producenta, uzyskaj i trwale zapisz odczyty w każdej z sześciu otwartych przysłon po kolei.
  2. Upewnij się, że spektrofotometr jest umieszczony pośrodku otworów mankietu, unikając w miarę możliwości pieprzyków, blizn lub innych skaz
    3. .
  3. Trwale zapisuj wszystkie wartości "SCI" (L, A, B). Aby zapewnić spójne odczyty w tym samym punkcie kalibracji, należy pozostawić spektrofotometr w pozycji WŁĄCZONEJ na czas trwania procedury MED i nie wyłączać, dopóki odczyty po ekspozycji nie zostaną zakończone.
  4. Po zarejestrowaniu podstawowych pomiarów spektrofotometrii usuń mankiet 1. Aby zminimalizować dyskomfort uczestnika, nałóż rozpuszczalnik kleju medycznego na obwód mankietu 1 podczas jego zdejmowania, co zapobiegnie bolesnemu usuwaniu włosów na ramieniu.

6. Odczyt przed ekspozycją: Mankiet 2 Zastosowanie

  1. Po zdjęciu mankietu 1 umieść mankiet 2 w tym samym miejscu, korzystając ze znaków orientacyjnych narysowanych na skórze mankietu 1. Pełny podkład samoprzylepny może być odsłonięty i nałożony, aby zapewnić, że mankiet 2 jest wystarczająco uszczelniony, aby zapobiec ekspozycji krzyżowej między otworami z powodu niewystarczającej przyczepności do skóry.
  2. Poproś zarówno uczestnika, jak i badacza, aby założyli odzież chroniącą przed promieniowaniem UV i akcesoria ochronne. Uczestnik, technik przeprowadzający zabieg i wszystkie inne osoby znajdujące się w pomieszczeniu muszą co najmniej założyć okulary chroniące przed promieniowaniem UV. Technicy powinni nosić długie rękawy lub używać rękawa chroniącego przed promieniowaniem UV.
  3. Przed aktywacją lampy poproś technika, aby pomógł uczestnikowi w pokryciu całej odsłoniętej skóry, w tym ramienia nad plastrem, ramienia i nadgarstka poniżej plastra, dłoni oraz części przodu lub tyłu ramienia, które mogą być odsłonięte po bokach plastra (pomocne mogą być w tym celu arkusze chroniące przed promieniowaniem UV i taśma do mocowania prześcieradeł). Ponadto niektórzy uczestnicy noszący koszulki z odkrytymi dekoltami mogą chcieć owinąć szyję i klatkę piersiową tkaniną chroniącą przed promieniowaniem UV, jeśli obszary te będą znajdować się blisko źródła promieniowania UV.
  4. Rozłóż ściereczkę chroniącą przed promieniowaniem UV pod ramieniem uczestnika (aby zmniejszyć odbicie światła od powierzchni stołu).

7. Procedura MED: Wstępna ekspozycja

UWAGA: Promienie z lampy muszą być prostopadłe do miejsca ekspozycji. Ogólnie rzecz biorąc, fizyczny ruch lampy jest mniej możliwy niż ruch lub ustawienie kąta ramienia uczestników.

  1. Przed uruchomieniem lampy należy ułożyć ramię uczestnika w taki sposób, aby promienie UV z lampy były prostopadłe do kąta Mankietu 2 na ramieniu uczestnika.
  2. Określ właściwą odległość między lampą a mankietem 2 na ramieniu uczestnika. Umieść czujnik radiometru skierowany w stronę UV lamp równolegle do powierzchni skóry i jak najbliżej miejsca mankietu 2.
  3. Przykryj ramię uczestnika szmatką odporną na promieniowanie UV, aby zapobiec ekspozycji, i na krótko włącz lampę, aby dostosować odległość do mankietu 2, aż czujnik radiometru wskaże 270 μW/cm2.
    1. Aby osiągnąć ten odczyt, należy dostosować odległość między lampą a powierzchnią skóry, aż radiometr wskaże 270 μW/cm2 (± 10 μW). Po ustaleniu właściwej odległości wyłącz lampę.
      nuta: Należy tutaj zauważyć, że niewielkie różnice w kącie nachylenia radiometru znacznie wpłyną na odczyt. Dlatego kąt radiometru powinien być jak najbardziej zbliżony do równoległego do powierzchni skóry.
  4. Dokonaj dalszych korekt odległości przez całą sesję ekspozycji, aby zapobiec dryfowaniu w lokalizacji ramienia. Przy każdym odczycie potwierdź odległość i w razie potrzeby dostosuj, aby utrzymać odczyty radiometru na poziomie około 270 μW/cm2 (± 10 μW).

8. Procedura MED: Ekspozycja

  1. Użyj stopera, aby zrealizować harmonogram MED. Zdejmij pierwszą osłonę przysłony przed aktywacją źródła UV. Aktywuj jednocześnie źródło i stoper i zdejmij każdą osłonę przysłony na mankiecie 2 zgodnie z harmonogramem określonym poniżej, w oparciu o FST.
  2. W miejscu usunięcia każdego zasłaniającego otwór zapisuje się odczyt radiometru, gdy radiometr jest trzymany równolegle do powierzchni skóry i skierowany na lampę. Jeśli odległość uległa zmianie, dostosuj odległość do lamp, aby upewnić się, że radiometr ponownie wskazuje 270 (± 10) μW/cm2.
  3. Poproś technika, aby monitorował ramię uczestnika, aby zapewnić spójne ustawienie. W szczególności wyreguluj ramię, jeśli ramię się obraca, ponieważ wielu uczestników będzie obracać ramię, gdy się rozluźnią. Po dokonaniu jakichkolwiek regulacji należy ponownie upewnić się, że radiometr wskazuje 270 μW/cm2 (± 10 μW).
  4. Wyłączyć lampę o dokładnie określonej godzinie określonej w schemacie dawkowania w Tabeli 1. Nie wyłączaj stopera, ponieważ dodatkowa seria odczytów spektrofotometru powinna zostać zebrana dokładnie 7 minut po wyłączeniu lampy, jak opisano poniżej.

9. 7 min odczytu po ekspozycji

  1. Dokładnie 7 minut po wyłączeniu lampy zapisz końcowe odczyty spektrofotometru z każdej przysłony w mankiecie 2. Celem gromadzenia danych bezpośrednio po procedurze ekspozycji jest po pierwsze potwierdzenie, że nie ma niepożądanej reakcji na promieniowanie UV, a po drugie, ocena początkowych reakcji, które w niektórych przypadkach mogą być niewielkie, ale mierzalnie różnić się od wartości wyjściowych (sprzed ekspozycji). Każdy wzrost zaczerwienienia po 7 minutach prawdopodobnie będzie efektem termicznym, a nie rumieniem.
    nuta: Niepożądana reakcja na ekspozycję na promieniowanie UV po 7 minutach jest prawdopodobnie związana z minimalną dawką pokrzywki słonecznej, nabytym zaburzeniem nadwrażliwości na światło. Zaburzenia nadwrażliwości na światło są oceniane przed zabiegiem MED i należy wykluczyć osoby z tymi zaburzeniami. Jeśli jednak zostanie to zaobserwowane w dowolnym momencie badania, protokół narażenia powinien zostać natychmiast przerwany.
  2. Po wystawieniu na działanie promieniowania UV mankiet 2 może być szczególnie trudny do usunięcia. W razie potrzeby użyj rozpuszczalnika adhezyjnego klasy medycznej, aby zminimalizować dyskomfort uczestników podczas zdejmowania mankietu 2. Uczestnicy ze szczególnie owłosioną lub w inny sposób wrażliwą skórą mogą uznać za pomocne nałożenie oliwy z oliwek lub zmywacza do kleju na bazie alkoholu pod krawędź mankietu 2, ponieważ powoli usuwają plaster. Po zdjęciu mankietu 2 uczestnicy mogą mieć resztki kleju na skórze, który można również usunąć za pomocą oliwy z oliwek lub rozpuszczalnika medycznego do klejenia.
  3. Przed wyjściem z sesji ekspozycyjnej przypomnij uczestnikom, aby nie myli punktów orientacyjnych i nie nakładali żadnych balsamów na miejsce ekspozycji.

10. Wizyta kontrolna: Aplikacja mankietu 3

  1. Przed przyjazdem uczestnika należy skalibrować spektrofotometr zgodnie ze specyfikacją producenta.
  2. Przygotuj mankiet 3, usuwając wszystkie osłony otworu (pozostawiając biały podkład z papieru woskowanego w środkowej części plastra). Zakładając mankiet 3 na ramię uczestnika, usuń biały podkład z papieru woskowanego z dwóch bocznych klapek plastra. Korzystając ze znaków orientacyjnych na przedramieniu uczestnika, umieść mankiet 3 w tym samym miejscu, co poprzednie dwie plastry.
  3. Wykonaj odczyt w każdej z sześciu otwartych przysłon po kolei. Dodatkowo sprawdź wzrokowo każdy otwór i zanotuj, czy wydaje się, że w każdym z sześciu otworów znajdują się wizualne dowody na reakcję rumieniową (czerwona lub różowa skóra wskazuje na rumień). Po trwałym zarejestrowaniu odczytów spektrofotometru usuń mankiet 3, w razie potrzeby używając rozpuszczalnika.
  4. Aby jeszcze bardziej zwiększyć komfort i bezpieczeństwo uczestnika, zapewnij 4-6 jednorazowych żeli do oparzeń lub aloesu i wskaż uczestnikowi, że jeśli miejsce ekspozycji stanie się swędzące lub niewygodne, może być leczone jak oparzenie słoneczne za pomocą tych lub podobnych produktów dostępnych bez recepty.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Schemat czasowy przedstawiony w Tabeli 1 to nowatorski schemat dawkowania, który został obliczony w celu uchwycenia MED, średnio, w połowie zdarzenia ekspozycji (tj. apertury 3 lub 4) dla każdego FST. Podstawa obliczanego harmonogramu jest następująca.

Wcześniejsze prace ustaliły, że dla osób z FST 2, mediana MED dla promieniowania w zakresie UVB wynosi 66,9 miliwatów (mW) nacm2, 77,429 mW/cm2 dla FST 3 i 85,0 dla FST 416. Przy zał...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Precyzyjna implementacja testów MED, jak opisano tutaj, może przynieść kilka korzyści w porównaniu z innymi istniejącymi laboratoryjnymi wyzwaniami zapalnymi, które osiągnęły powszechne zastosowanie. Na przykład, protokoły blistrówssących 17,18,19 wywołują na skórze pęcherz wypełniony płynem, który jest następnie odsysany za pomocą strzykawki, aby uzyskać bezpośredni dostęp do mikrośrodowiska cytokin. Chociaż pęcherze skórne są ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy tego badania deklarują brak konfliktów interesów, finansowych lub innych.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca została wsparta grantem z Virginia Tech College of Science Discovery Fund.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Łatka do badania dawki 6-aperturowej (" Mankiet")Daavlin    < / mocny>
rozpuszczalnik adhezyjny
Nieodblaskowa tkanina
RadiometrSolarLightModel 6.2 Miernik
Jednorazowy żel z aloesu lub oparzeń
SpektrofotometrKonika-MinoltaCM-2600D
Stoper
Lampa UV – Fiji SunSpertiWidmo emisji 280 nm-400 nm, około 25% UVB
Okulary ochronne odporne na promieniowanie UV (2 pary)
Rękaw
Białe bawełniane rękawiczki (2 pary)
klasy medycznejodporna na promieniowanie UVUVBodporny na promieniowanie UV

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Magnus, I. A. Dermatological Photobiology: Clinical and Experimental Aspects. Blackwell Scientific Publications. , J. B. Lippincott. (1976).
  2. Grundmann-Kollmann, M., et al. Phototherapy for atopic eczema with narrow-band UVB. Journal of the American Academy of Dermatology. 40 (6), Pt 1 995-997 (1999).
  3. Honigsmann, H. Phototherapy for psoriasis. Clinical and Experimental Dermatology. 26 (4), 343-350 (2001).
  4. Heckman, C. J., et al. Minimal Erythema Dose (MED) testing. Journal of Visualized Experiments. (75), e50175(2013).
  5. Kroenke, K., et al. Physical symptoms in primary care. Predictors of psychiatric disorders and functional impairment. Archives of Family Medicine. 3 (9), 774-779 (1994).
  6. Coelho, S. G., et al. Non-invasive diffuse reflectance measurements of cutaneous melanin content can predict human sensitivity to ultraviolet radiation. Experimental Dermatology. 22 (4), 266-271 (2013).
  7. Fitzpatrick, T. B. The validity and practicality of sun-reactive skin types I through VI. Archives of Dermatology. 124 (6), 869-871 (1988).
  8. Matts, P. J., Dykes, P. J., Marks, R. The distribution of melanin in skin determined in vivo. British Journal of Dermatology. 156 (4), 620-628 (2007).
  9. Eilers, S., et al. Accuracy of self-report in assessing Fitzpatrick skin phototypes I through VI. JAMA Dermatology. 149 (11), 1289-1294 (2013).
  10. Daniel, L. C., Heckman, C. J., Kloss, J. D., Manne, S. L. Comparing alternative methods of measuring skin color and damage. Cancer Causes, Control. 20 (3), 313-321 (2009).
  11. Ravnbak, M. H., Philipsen, P. A., Wulf, H. C. The minimal melanogenesis dose/minimal erythema dose ratio declines with increasing skin pigmentation using solar simulator and narrowband ultraviolet B exposure. Photodermatology Photoimmunology & Photomedicine. 26 (3), 133-137 (2010).
  12. Miller, S. A., et al. Evidence for a new paradigm for ultraviolet exposure: a universal schedule that is skin phototype independent. Photodermatology Photoimmunology & Photomedicine. 28 (4), 187-195 (2012).
  13. Pershing, L. K., et al. Reflectance spectrophotometer: The dermatologists' sphygmomanometer for skin phototyping. Journal of Investigative Dermatology. 128 (7), 1633-1640 (2008).
  14. Kollias, N., Baqer, A., Sadiq, I. Minimum Erythema Dose Determination in Individuals of Skin Type-V and Type-Vi with Diffuse-Reflectance Spectroscopy. Photodermatology Photoimmunology & Photomedicine. 10 (6), 249-254 (1994).
  15. Treesirichod, A., Chansakulporn, S., Wattanapan, P. Correlation Between Skin Color Evaluation by Skin Color Scale Chart and Narrowband Reflectance Spectrophotometer. Indian Journal of Dermatology. 59 (4), 339-342 (2014).
  16. Gambichler, T., et al. Reference limits for erythema-effective UV doses. Photochemistry and Photobiology. 82 (4), 1097-1102 (2006).
  17. Kool, J., et al. Suction blister fluid as potential body fluid for biomarker proteins. Proteomics. 7 (20), 3638-3650 (2007).
  18. Clark, K. E., Lopez, H., Abdi, B. A., et al. Multiplex cytokine analysis of dermal interstitial blister fluid defines local disease mechanisms in systemic sclerosis. Arthritis Research & Therapy. 17, 73(2015).
  19. Rosenkranz, M. A., et al. A comparison of mindfulness-based stress reduction and an active control in modulation of neurogenic inflammation. Brain Behavior and Immunity. 27 (1), 174-184 (2013).
  20. Smith, T. J., Wilson, M. A., Young, A. J., Montain, S. J. A suction blister model reliably assesses skin barrier restoration and immune response. Journal of Immunological Methods. 417, 124-130 (2015).
  21. Holm, L. L., et al. A Suction Blister Protocol to Study Human T-cell Recall Responses In Vivo. Journal of Visualized Experiments. (138), 57554(2018).
  22. Seitz, J. C., Whitmore, C. G. Measurement of erythema and tanning responses in human skin using a tri-stimulus colorimeter. Dermatologica. 177 (2), 70-75 (1988).
  23. Henriksen, M., Na, R., Agren, M. S., Wulf, H. C. Minimal erythema dose after multiple UV exposures depends on pre-exposure skin pigmentation. Photodermatology Photoimmunology & Photomedicine. 20 (4), 163-169 (2004).
  24. Stamatas, G. N., Zmudzka, B. Z., Kollias, N., Beer, J. Z. In vivo measurement of skin erythema and pigmentation: new means of implementation of diffuse reflectance spectroscopy with a commercial instrument. British Journal of Dermatology. 159 (3), 683-690 (2008).
  25. Latreille, J., et al. Influence of skin colour on the detection of cutaneous erythema and tanning phenomena using reflectance spectrophotometry. Skin Research and Technology. 13 (3), 236-241 (2007).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Na wietlanie ultrafioletowetyp sk ry wed ug skali Fitzpatrickaodczyty spektrofotometrycznefototerapia UVharmonogram dawkowaniapomiar erytemu sk rysprz t do fototerapii

Powiązane artykuły