Artykuł metodologiczny

Najważniejsze informacje ze zbioru metod JoVE: Interakcje białko-białko

12.1K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/59816

⸱

10 czerwca 2019

 , 

W tym artykule

Artykuł redakcyjny

Interakcje białko-białko (IPP) mają fundamentalne znaczenie dla generowania efektów biologicznych. Wiele z nich jest ściśle związanych z chorobą i coraz częściej uznaje się, że stanowią one ważne cele dla działania leków1. Dostępnych jest wiele technik badania tych oddziaływań białkowych, z których niektóre są omówione w tym zbiorze lub w innych artykułach JoVE. Każda technika ma swoje zalety i ograniczenia2; jednak nie ma jednej idealnej techniki dla wszystkich IPP ze względu na ogromną różnorodność tych interakcji, które zachodzą w różnych przedziałach subkomórkowych, o szerokim zakresie powinowactwa (pikomolarny do milimolowego) i mogą mieć charakter tylko przejściowy.

Testy kinaz in vitro są pośrednim podejściem do badania IPP, które można wykorzystać do analizy, w jaki sposób kinazy pełnią swoją funkcjonalną rolę przenoszenia grupy fosforanowej z ATP do substratu. Cui i wsp.3 wykorzystują tę technikę, w połączeniu z trawieniem tryptycznym i spektrometrią mas, do identyfikacji miejsc fosforylacji specyficznych dla kinazy 1 zależnej od cykliny na fragmencie ludzkiego białka centromerowego F (CENP-F). Do funkcjonalnej weryfikacji nowych miejsc fosforylacji autorzy stosują test wiązania, łączący CENP-F zawierający mutację fosfomimetyczną i α karioferyny, receptor transportu jądrowego, zapewniając w ten sposób walidację krzyżową.

Koimmunoprecypitacja jest szeroko stosowaną metodą badania IPP, w której przeciwciało jest wykorzystywane do wychwytywania określonego celu wraz z innymi cząsteczkami białka, które są z nim związane. Zheng i współpracownicy4 stosują tę technikę do badania czynników indukowanych hipoksją (HIF), które działają jako heterodimery złożone z podjednostki α regulowanej tlenem i konstytutywnie wyrażonej podjednostki β, znanej również jako ARNT3. Interesującą informacją na temat ich protokołu jest to, że komórki są indukowane i zbierane w warunkach niedotlenienia, a endogenne białka z frakcji jądrowych są następnie koimmunoprecypitowane. Jak zauważają autorzy, jednym z ograniczeń tej metody jest to, że nie jest ona w stanie określić, czy IPP są bezpośrednie, czy pośrednie.

Nolan i wsp.5 przedstawiają protokół pomiaru liczby cząsteczek i ich jasności w obrazach z mikroskopii fluorescencyjnej "Liczba i jasność" (N&B), który można zastosować do wykrywania homooligomeryzacji białek. Technika ta może być stosowana zarówno in vitro, jak i in vivo i została zastosowana do dokładnego ilościowego określenia stanu oligomerycznego FKBP12F36V znakowanych mVenus przed i po dodaniu leku dimeryzującego. Autorzy omawiają zalety tej techniki w porównaniu z pokrewnymi technologiami i podkreślają znaczenie korekcji bielenia i długotrwałych wahań intensywności. Mikroskopy konfokalne wyposażone w detektory cyfrowe ułatwiają oznaczanie ilościowe, ale N&B jest również możliwe w przypadku detektorów analogowych.

Oczyszczanie powinowactwa kompleksów wielobiałkowych, wraz z identyfikacją ich składników, jest szeroko stosowaną techniką zrozumienia funkcji takich skompleksowanych białek. W protokole Luzarowskiego i wsp.6 technika ta idzie o krok dalej poprzez jednoczesne scharakteryzowanie zarówno IPP, jak i interakcji białko-metabolit (PMI) w transgenicznych komórkach roślinnych Arabidopsis. Tagged Kinazy difosforanowe nukleozydowe są oczyszczane pod względem powinowactwa za pomocą procedury znacznika oczyszczania tandemowego (TAP), a wychwycone białka i małe cząsteczki są następnie identyfikowane za pomocą spektrometrii mas. Wyjątkowość tego protokołu polega na możliwości identyfikacji zarówno ligandów hydrofobowych, jak i hydrofilowych; Jest to protokół ekstrakcji "trzy w jednym", który umożliwia badanie zarówno IPP, jak i PMI oraz stosuje oczyszczanie powinowactwa do sadzenia komórek.

Test ligacji zbliżeniowej ma tę zaletę, że służy do wykrywania interakcji między endogennymi białkami w komórkach i tkankach. Karchugina i Chernoff7 wykorzystują tę technikę do wykazania obecności heterodimerów kinaz MST1 i MST2 w ludzkich komórkach Schwanna (HSC) i ludzkich embrionalnych komórkach nerkowych (HEK-293). Ich artykuł zawiera kilka cennych wskazówek, jak skutecznie wykonać tę technikę. Wymagane są odpowiednie przeciwciała pierwszorzędowe wyhodowane u różnych gatunków przeciwko każdemu białku oddziałującemu, a ponieważ swoistość i czułość przeciwciał są kluczowe, stężenia przeciwciał powinny być precyzyjnie dostrojone. Autorzy stwierdzili, że szkiełka ze szklaną komorą są wygodne do analizy wielu linii komórkowych i kombinacji przeciwciał, ale zauważyli, że konieczne jest usunięcie całej silikonowej wkładki między studzienkami, aby uniknąć różnic w odległości konfokalnej podczas mikroskopii. Ponadto do walidacji wyników stosuje się różne kontrole dodatnie i ujemne.

Spektroskopia magnetycznego rezonansu jądrowego (NMR) jest czułym testem, który można wykorzystać do zapewnienia rozdzielczości na poziomie atomowym i informacji ilościowych na temat interakcji białek i interakcji białko-ligand. Winkelaar i współpracownicywykorzystują tę technikę do badania interakcji dwóch białek (wimentyny i envoplakiny) znajdujących się w desmosomach, strukturach komórkowych zaangażowanych w adhezję komórka-komórka, które zwykle znajdują się w tkankach doświadczających intensywnego obciążenia mechanicznego. Autorzy wykorzystują 15-znakowanąN domenę wimentyny i uzyskują widmo 2D za pomocą heterojądrowej pojedynczej korelacji kwantowej (HSQC). W obecności domeny z envoplakiny obserwuje się rozległe poszerzenie linii i zanik pików, co jest zgodne z interakcją białkową. Autorzy dalej badają podstawy oddziaływania, wykorzystując mutagenezę i termoforezę w mikroskali (MST) w celu uzyskania informacji ilościowych.

Rozpraszanie promieniowania rentgenowskiego pod małymi kątami (SAXS) to technika, którą można wykorzystać do dostarczenia informacji o wielkości i konformacjach makrocząsteczki w roztworze oraz wygenerowania molekularnej otoczki dużych, wielodomenowych lub kompleksów białkowych w niskiej rozdzielczości. W protokole Mrozowicha i wsp.9 technika ta służy do generowania niskorozdzielczej struktury nidogenu-1 i lamininy γ-1 w kompleksie. Technika ta może być interesująca dla naukowców badających IPP w dużych białkach z wieloma domenami globularnymi, które są zbyt duże dla spektroskopii NMR i są trudne do krystalizacji dla krystalografii rentgenowskiej.

Szacuje się, że w interaktomii międzyludzkimzachodzi około 650 000 interakcji – wystarczająco dużo, aby naukowcy zajmujący się tą dziedziną mieli zajęcie jeszcze przez jakiś czas. Niedawnym osiągnięciem, które stało się możliwe dzięki postępom w mikroskopii, spektrometrii mas i uczeniu maszynowym, jest proteomika przestrzenna, która może dostarczyć w przyszłości cennych informacji w tejdziedzinie11. Ten zbiór metod PPI pomoże naukowcom stawić czoła temu ważnemu wyzwaniu, unikając jednocześnie potencjalnych pułapek.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Autorzy dziękują za granty NSERC RGPIN-2018-04994, Campus Alberta Innovation Program (RCP-12-002C) oraz Alberta Prion Research Institute/Alberta Innovates Bio Solutions (201600018) przyznane M.O.

Bibliografia

  1. Jin, L., Wang, W., Fang, G. Targeting protein-protein interaction by small molecules. Annual Review of Pharmacology and Toxicology. 54, 435-456 (2014).
  2. Titeca, K., Lemmens, I., Tavernier, J., Eyckerman, S. Discovering cellular protein-protein interactions: Technological strategies and opportunities. Mass Spectrometry Reviews. 38 (1), 79-111 (2019).
  3. Cui, H., Loftus, K. M., Noell, C. R., Solmaz, S. R. Identification of Cyclin-dependent Kinase 1 Specific Phosphorylation Sites by an In Vitro Kinase Assay. Journal of Visualized Experiments. (138), e57836(2018).
  4. Zheng, X., et al. Co-immunoprecipitation Assay Using Endogenous Nuclear Proteins from Cells Cultured Under Hypoxic Conditions. Journal of Visualized Experiments. (138), e57836(2018).
  5. Nolan, R., et al. Calibration-free Vitro of Protein Homo-oligomerization Using Commercial Instrumentation and Free, Open Source Brightness Analysis Software. Journal of Visualized Experiments. (137), e58157(2018).
  6. Luzarowski, M., Wojciechowska, I., Skirycz, A. 2 in 1: One-step Affinity Purification for the Parallel Analysis of Protein-Protein and Protein-Metabolite Complexes. Journal of Visualized Experiments. (138), e57720(2018).
  7. Karchugina, S., Chernoff, J. Detection of Heterodimerization of Protein Isoforms Using an Situ Ligation Assay. Journal of Visualized Experiments. (140), e57755(2018).
  8. Winkelaar, G., Trieber, C., Kumar, J., Overduin, M. Measuring Interactions of Globular and Filamentous Proteins by Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy (NMR) and Microscale Thermophoresis (MST). Journal of Visualized Experiments. (141), e58537(2018).
  9. Mrozowich, T., McLennan, S., Overduin, M., Patel, T. R. Structural Studies of Macromolecules in Solution using Small Angle X-Ray Scattering. Journal of Visualized Experiments. (141), e58538(2018).
  10. Stumpf, M. P., et al. Estimating the size of the human interactome. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (19), 6959-6964 (2008).
  11. Lundberg, E., Borner, G. H. H. Spatial proteomics: a powerful discovery tool for cell biology. Nature Reviews Molecular Cell Biology. , (2019).

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Research HighlightsScientific MethodsBiological InteractionsProtein Complexes