Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Izolacja komórek jednojądrzastych blaszki właściwej z mysiej okrężnicy przy użyciu kolagenazy E

16K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/59821

⸱

26 września 2019

W tym artykule

Podsumowanie

Celem tego protokołu jest wyizolowanie komórek jednojądrzastych, które znajdują się w blaszce właściwej jelita grubego, poprzez enzymatyczne trawienie tkanki za pomocą kolagenazy. Protokół ten pozwala na efektywną izolację komórek jednojądrzastych, w wyniku której powstaje zawiesina pojedynczej komórki, która z kolei może być wykorzystana do solidnego immunofenotypowania.

Streszczenie

Jelito jest domem dla największej liczby komórek odpornościowych w organizmie. Układ odpornościowy jelita cienkiego i grubego kontroluje ekspozycję na antygeny egzogenne i moduluje odpowiedzi na silne bodźce immunologiczne pochodzenia mikrobiologicznego. Z tego powodu jelito jest głównym miejscem docelowym rozregulowania układu odpornościowego i stanu zapalnego w wielu chorobach, w tym między innymi w chorobach zapalnych jelit, takich jak choroba Leśniowskiego-Crohna i wrzodziejące zapalenie jelita grubego, choroba przeszczep przeciwko gospodarzowi (GVHD) po przeszczepie szpiku kostnego (BMT) oraz wiele stanów alergicznych i zakaźnych. Mysie modele zapalenia przewodu pokarmowego i zapalenia jelita grubego są intensywnie wykorzystywane do badania powikłań przewodu pokarmowego oraz do przedklinicznej optymalizacji strategii zapobiegania i leczenia. Dane zebrane z tych modeli poprzez izolację i analizę fenotypową komórek odpornościowych z jelita mają kluczowe znaczenie dla dalszego zrozumienia układu odpornościowego, które można zastosować do poprawy zaburzeń zapalnych przewodu pokarmowego i układowego. W niniejszym raporcie opisano wysoce skuteczny protokół izolacji komórek jednojądrzastych (MNC) z jelita grubego przy użyciu mieszanego gradientu gęstości opartego na krzemionce. Metoda ta w powtarzalny sposób izoluje znaczną liczbę żywotnych leukocytów, jednocześnie minimalizując zanieczyszczenia zanieczyszczeń, umożliwiając późniejsze fenotypowanie immunologiczne za pomocą cytometrii przepływowej lub innych metod.

Wprowadzenie

Chociaż przewód pokarmowy (GI) jest głównie przeznaczony do przetwarzania i reabsorpcji składników odżywczych z pożywienia, przewód pokarmowy pełni również kluczową rolę w integralności układu naczyniowego, limfatycznego, nerwowego i wielu innych narządów poprzez swój śluzówkowy i podśluzówkowy układ odpornościowy1. Układ odpornościowy przewodu pokarmowego odgrywa wpływową rolę zarówno w zdrowiu przewodu pokarmowego, jak i ogólnoustrojowego ze względu na ciągłą ekspozycję na obce antygeny z żywności, bakterie komensalne lub atakujące patogeny1,2. W związku z tym układ odpornościowy prze....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie badania zostały przeprowadzone zgodnie z protokołami badań nad gryzoniami, które zostały sprawdzone i zatwierdzone przez Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) of the University of Miami Miller School of Medicine, które spełniają standardy weterynaryjne określone przez American Association for Laboratory Animal Science (AALAS).

1. Przygotowanie roztworów

  1. Jak opisano w Tabeli 1, przygotuj bufor dwukropek, pożywkę do separacji gęstości na bazie krzemionki 100%, pożywkę do separacji gęstości na bazie krzemionki 66%, pożywkę do separacji gęstości na bazie krzemionki 44%, bufor do mineralizacji kolagena....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Podczas pracy z modelami chorób jelita grubego u myszy pomocna jest możliwość ilościowej i jakościowej oceny wielu podgrup komórek odpornościowych uczestniczących w procesie zapalnym wśród MNC jelita grubego. Zawiesina pojedynczych komórek MNC uzyskana dzięki zastosowaniu niniejszego protokołu umożliwia taką charakterystykę fenotypową w sposób niezawodny i powtarzalny. Jako dowód słuszności zastosowania tej metody izolacji w różnych warunkach eksperymentalnych, pobrano MNC z jelita grubeg.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Ten protokół wizualny opisuje dobrze tolerowane metody izolacji komórek jednojądrzastych okrężnicy, w tym limfocytów blaszki właściwej (LPL). Biorąc pod uwagę, że protokół ten został zoptymalizowany pod kątem oceny ciężkich modeli zapalenia jelita grubego myszy po przeszczepie, w których cytokiny zapalne i uszkodzenia tkanek sprzyjają słabej żywotności odzyskanego MNC, przewidujemy, że metody te można przełożyć na inne zastosowania wymagające analizy fenotypowej MNC okrężnicy. Obejmują one między innymi ocenę zapalenia j.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy deklarują brak sprzecznych interesów finansowych.

Podziękowania

Ta praca była wspierana przez granty #1K08HL088260 i #1R01HL133462-01A1 (NHLBI) (A.B.P., H.N., S.J.) oraz Batchelor Foundation for Pediatric Research (D.M., H.N., S.J., A.A.H., A.B.P.). Myszy C57BL/6 i BALB/c użyte w tym badaniu zostały wyhodowane w naszej placówce lub dostarczone przez Jackson Labs lub Taconic.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
60 mm Petri DIshThermo Scientific150288 1x
PBSCorning21-040-CV
10x PBSLonza BioWhittakerBW17-517Q
10 ml jednorazowa pipeta serologicznaCorning4100
10 mlBecton Dickinson302995
15 mL niesterylne probówkistożkoweTruLineTR2002
18 G igłaBecton Dickinson305180
25 ml Jednorazowa pipeta serologicznaCorning4250
40 μ m wielkość porów Sitko komórkoweCorning352340
50 ml Falcon TubeCorning21008-951
Albumina surowicy bydlęcej (BSA)SigmaA4503-1KG
Bufor utrwalającyBiolegend420801
E. coli Kolagenaza E z Clostridium histolyticumSigmaC2139
EDTA, 0,5 M Sterylny RozwiązanieAmrescoE177-500ML
Płodowa surowica bydlęcaThermo /Fisher Scientific -HyCLoneSV30014.03
HEPESGE Healthcare-HyCloneSH30237.01
PercollGE Healthcare-Life Sciences1708901
RPMI MediumCorning17-105-CV
Azydek soduVWR Life Science Amresco97064-646
Błękit trypanowyLonza BioWhittaker17-942E

Bibliografia

  1. Schneeman, B. Gastrointestinal physiology and functions. British Journal of Nutrition. 88, S159-S163 (2002).
  2. Arranz, E., Pena, A. S., Bernardo, D. Mediators of inflammation and immune responses in the human gastrointestinal tract. Mediators of inflammation<....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Izolacja jelita grubego myszytrawienie kolagenazą Eseparacja w gradiencie gęstościanaliza cytometrycznafiltracja przez sitko komórkoweinkubacja w inkubatorze orbitalnymprzemywanie buforem FACSfenotypowanie komórek odpornościowychprzeszczep szpiku kostnego