$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Dynamiczne interakcje białko-białko kontrolują zachowanie komórek, od ruchliwości, przez replikację DNA, aż po transdukcję sygnału. Jednak monitorowanie dynamicznych oddziaływań między wieloma białkami w sieci interakcji białkowych jest technicznie trudne. W tym miejscu przedstawiamy protokół ilościowej immunoprecypitacji multipleksowej (QMI), który umożliwia ilościową ocenę zmian fałdowania w oddziaływaniach białkowych na podstawie względnych pomiarów fluorescencji białek we wspólnych kompleksach wykrywanych przez epitopy odsłoniętej powierzchni (PiSCES). W QMI kompleksy białkowe z lizatów komórkowych są immunoprecypitowane na mikrosfery, a następnie badane za pomocą znakowanego przeciwciała dla innego białka w celu ilościowego określenia obfitości PiSCES. Przeciwciała immunoprecypitacyjne są sprzężone z różnymi obszarami spektralnymi MagBead, co pozwala cytometrowi przepływowemu różnicować wiele równoległych immunoprecypitacji i jednocześnie określać ilościowo ilość przeciwciał sondujących związanych z każdym z nich. QMI nie wymaga znakowania genetycznego i może być wykonywany przy użyciu minimalnej ilości biomateriału w porównaniu z innymi metodami immunoprecypitacji. QMI może być dostosowany do dowolnej zdefiniowanej grupy oddziałujących białek i do tej pory był używany do charakteryzowania sieci sygnałowych w komórkach T i neuronalnych synapsach glutaminianu. Wyniki pozwoliły na sformułowanie nowych hipotez o potencjalnych zastosowaniach diagnostycznych i terapeutycznych. Protokół ten zawiera instrukcje dotyczące wykonywania QMI, od wstępnego wyboru panelu przeciwciał po przeprowadzanie testów i analizowanie danych. Wstępny montaż testu QMI obejmuje badanie przesiewowe przeciwciał w celu wytworzenia panelu i empiryczne określenie odpowiedniego buforu do lizy. Późniejsze przygotowanie odczynnika obejmuje kowalencyjne sprzęganie przeciwciał immunoprecypitacyjnych z MagBeads oraz przeciwciała sondy biotynylowej, dzięki czemu można je znakować fluoroforem sprzężonym ze streptawidyną. Aby uruchomić test, lizat miesza się z MagBeads przez noc, a następnie kulki są dzielone i inkubowane z różnymi przeciwciałami sondy, a następnie etykietą fluoroforową i odczytywane za pomocą cytometrii przepływowej. Przeprowadza się dwa testy statystyczne w celu zidentyfikowania PiSCE, które znacznie różnią się w zależności od warunków eksperymentalnych, a wyniki są wizualizowane za pomocą map cieplnych lub diagramów krawędzi węzłów.