Artykuł metodologiczny

Smaczna dieta stołówkowa w stylu zachodnim jako niezawodna metoda modelowania otyłości wywołanej dietą u gryzoni

DOI:

10.3791/60262

⸱

1 listopada 2019

 ,  , 
1Department of Pharmacology, School of Medical Sciences, UNSW Sydney

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ten protokół opisuje użycie bardzo smacznej diety stołówkowej w stylu zachodnim do modelowania przejadania się i otyłości u gryzoni. W tym miejscu przedstawiamy szczegółowy zarys selekcji, przygotowania i pomiaru żywności oraz wyjaśniamy czynniki metodologiczne, które pomagają w generowaniu solidnego i powtarzalnego fenotypu.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Otyłość gwałtownie wzrasta w krajach rozwiniętych i rozwijających się i jest znana z wywoływania lub zaostrzania wielu chorób. Obciążenie zdrowotne związane z otyłością i jej współistniejącymi schorzeniami podkreśla potrzebę lepszego zrozumienia jej patogenezy, jednak ograniczenia etyczne ograniczają badania na ludziach. W tym celu zewnętrzne modele otyłości u zwierząt laboratoryjnych są niezbędne do zrozumienia nadwagi i otyłości. Podczas gdy wiele gatunków zostało wykorzystanych do modelowania szeregu zmian towarzyszących otyłości u ludzi, najczęściej wykorzystuje się gryzonie. Nasze laboratorium opracowało dietę stołówkową w stylu zachodnim, która konsekwentnie prowadzi do znacznego przyrostu masy ciała i markerów chorób metabolicznych u gryzoni. Dieta naraża gryzonie na różnorodne, bardzo smaczne pokarmy w celu wywołania hiperfagii, modelując współczesne zachodnie środowisko żywnościowe. Dieta ta szybko indukuje przyrost masy ciała i akumulację tkanki tłuszczowej u szczurów, co pozwala na badanie skutków przejadania się i otyłości. Podczas gdy dieta stołówkowa może nie zapewniać takiej samej kontroli nad profilem makroskładników i mikroelementów, jak oczyszczone diety wysokotłuszczowe lub wysokotłuszczowe i wysokocukrowe, dieta stołówkowa zazwyczaj wywołuje poważniejszy fenotyp metaboliczny niż ten obserwowany przy dietach oczyszczonych i jest bardziej zgodna z zaburzeniami metabolicznymi obserwowanymi w populacji ludzi z nadwagą i otyłością.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Otyłość i związane z nią choroby współistniejące mają ogromny wpływ na globalne obciążenie zdrowotne1 i odpowiadają za 7% obciążenia chorobami w Australii2. Głównym czynnikiem ryzyka otyłości jest spożywanie niezdrowej diety bogatej w tłuszcze nasycone i rafinowane węglowodany, a ubogiej w błonnik i mikroelementy3. Identyfikacja celów interwencji terapeutycznej w przypadku otyłości wymaga modeli, które mogą systematycznie oceniać wpływ na wiele systemów biochemicznych i fizjologicznych. Nasze zrozumienie etiologii otyłości zostało znacznie poszerzone dzięki pracom z wykorzystaniem modeli gryzoni, w których efekty behawioralne, metaboliczne i molekularne mogą być badane w czasie w kontrolowanych warunkach, w których można łatwo manipulować czynnikami środowiskowymi.

Model diety kafeteryjnej (CAF) otyłości indukowanej dietą polega na uzupełnianiu standardowej diety gryzoni różnorodnymi smacznymi pokarmami, które są bogate w tłuszcze nasycone, rafinowane węglowodany lub jedno i drugie. Przykładami tych produktów są ciasta, słodkie herbatniki i wysokotłuszczowe pikantne przekąski (takie jak przetworzone mięso, ser i frytki). Niezawodnie sprzyja hiperfagii i szybkiemu przyrostowi masy ciała gryzoni. Kluczowymi cechami modelu jest dostarczanie różnorodnych, wysoce smacznych produktów spożywczych, zaprojektowanych tak, aby symulować nowoczesne środowisko żywnościowe. Dostęp do różnorodności zwiększa spożycie pokarmu u szczurów w krótkim okresie4 oraz u ludzi5 nawet jeśli pokarmy są dopasowane pod względem smakowitości i różnią się tylko smakiem i wskazówkami węchowymi4,6. Jednak jedno z badań wykazało, że dostarczanie oczyszczonych diet dopasowanych do energii i makroskładników, które różniły się smakiem i konsystencją, nie miało wpływu na długoterminowy przyrost masy ciała u szczurów7, co sugeruje, że skład składników odżywczych i wyraźne efekty podoustne różnych pokarmów mogą również przyczyniać się do przejadania się. Ekspozycja na wiele smaków i tekstur przezwycięża sytość specyficzną sensorycznie, która opisuje spadek chęci zjedzenia ostatnio zjedzonego jedzenia w porównaniu z alternatywą5. W wielu kohortach w naszym laboratorium zaobserwowaliśmy podobnie, że stosowanie bardzo smacznych pokarmów dodatkowo nasila przejadanie się.

Ta dieta CAF jest stosowana od ponad 40 lat, ponieważ Sclafani8 donosił, że samice szczurów narażone na działanie różnych "produktów spożywczych z supermarketu" (m.in. pianki, czekolada, masło orzechowe, ciastka, salami i ser) wykazywały przyspieszony przyrost masy ciała w porównaniu z grupą kontrolną. To i inne wczesne badania wykazały, że diety w stylu CAF wydają się przyspieszać przyrost masy ciała skuteczniej niż czyste diety wysokotłuszczowe lub wysokowęglowodanowe 8,9. Prace przeprowadzone w latach 80. scharakteryzowały profile makroskładników odżywczych10 i wzorce posiłków11 szczurów karmionych dietą CAF i wykazały głębokie zmiany w masie tłuszczowej i poziomie insuliny9,10 i termogeneza12. Nasza grupa używała diety CAF do modelowania otyłości przez ponad dwie dekady13,14 i w tym czasie stosowaliśmy kilka wariantów diety. Każdego dnia szczury otrzymują co najmniej dwa słodkie i dwa pikantne produkty spożywcze, oprócz zwykłej karmy i wody. W ostatnich latach zaczęliśmy uzupełniać stałe pokarmy CAF o 10% roztwór sacharozy. Mocną stroną modelu jest możliwość dostosowania diety CAF do różnych projektów eksperymentalnych.

Diety CAF promują natychmiastową hiperfagię (tj. w ciągu pierwszych 24 godzin) i stały przyrost masy ciała i masy tłuszczowej. Jednak konsekwencją maksymalizacji różnorodności jest to, że spożycie makro- i mikroelementów nie jest kontrolowane, co niektórzy uważają za wadę nie do pokonania15. W badaniach nad otyłością wywołaną dietą częściej stosuje się oczyszczoną dietę wysokotłuszczową (HF) lub kombinowaną dietę wysokotłuszczową i wysokocukrową (HFHS), która zapewnia precyzyjną kontrolę nad zawartością składników odżywczych i jest mniej pracochłonna niż model CAF, który wymaga codziennego monitorowania oraz starannego planowania i realizacji harmonogramu. Translacyjne znaczenie dostępnych na rynku oczyszczonych diet HF jest tematem toczącej się debaty, ponieważ ich profil kwasów tłuszczowych oraz proporcje tłuszczu i sacharozy mogą nie zgadzać się z dietą ludzi16. Chociaż dieta CAF nie zapewnia takiego samego stopnia kontroli nad składem składników odżywczych jak diety oczyszczone, ma na celu modelowanie smakowitości i różnorodności, które charakteryzują opcje żywieniowe w większości nowoczesnych społeczeństw.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Opisany tutaj protokół został zoptymalizowany do stosowania u szczurów. Chociaż z powodzeniem stosowaliśmy dietę CAF u myszy17,18, mielenie miękkiej żywności może wprowadzić dalszy błąd, zmniejszając wiarygodność środków przyjmowania pokarmu19. Protokół ten został zatwierdzony przez Komitet ds. Opieki nad Zwierzętami i Etyki na Uniwersytecie Nowej Południowej Walii i jest zgodny z australijskimi wytycznymi dotyczącymi wykorzystywania i opieki nad zwierzętami do celów naukowych (wydanie 8) dostarczonymi przez Australijską Narodową Radę Zdrowia i Badań Medycznych.

UWAGA: W naszych krótkoterminowych badaniach (np. <10 tygodni dostępu ad libitum do CAF) zaobserwowano bardzo niewiele działań niepożądanych; nie ma dowodów na zmiany w ogólnym samopoczuciu, aktywności, towarzyskości lub zachowaniu podobnym do lęku u szczurów na diecie CAF20. Po dłuższych odstępach czasu (>16 tygodni) u szczurów karmionych CAF obserwowano bardzo sporadyczne incydenty sercowo-naczyniowe.

1. Aklimatyzacja i trzymanie zwierząt

  1. Szczury należy zaaklimatyzować w obiekcie na 5–7 dni po przyjeździe z bezpłatnym dostępem do karmy kontrolnej i wody. Ze szczurami należy obchodzić się codziennie od 24 godzin po przyjeździe; Dieta CAF obejmuje codzienną interakcję z klatką, dlatego ważne jest regularne obchodzenie się z nią.
  2. Upewnij się, że wszystkie klatki są wzbogacone o środowisko. Standardowa klatka zawiera pudełko z czerwonego polimetakrylanu metylu, materiał do gniazdowania i drewniany patyczek do żucia, co jest ważne, ponieważ miękkie pokarmy dostarczane w diecie CAF mogą powodować u szczurów wady zgryzu bez dostępu do twardszych przedmiotów do żucia.
  3. Przed rozpoczęciem diety CAF przypisz klatki do grup CAF lub chow i upewnij się, że są one dopasowane do początkowej masy ciała, porównując średnią i zakres mas ciała między grupami i ponownie przydzielając je w razie potrzeby. Ponieważ ekspozycja na światło może wpływać na rytm okołodobowy, spożycie pokarmu i aktywność, upewnij się, że klatki CAF i karmy są równomiernie rozmieszczone w pomieszczeniu kolonijnym.
    nuta: Gryzonie tworzą hierarchie społeczne, gdy są trzymane w grupie (zwłaszcza samce). Skutki stresu społecznego są częściowo kontrolowane przez zapewnienie, że szczury są trzymane z innymi osobami o podobnej masie ciała (w celu zmniejszenia znęcania się w klatce). Dodatkowo dieta kafeteryjna powinna być równomiernie rozłożona po klatce, aby wszystkie szczury miały dostęp do diety.

2. Wybór i konfiguracja diety

  1. Planowania
    1. Upewnij się, że regularne jedzenie i woda są zawsze dostępne i są uzupełniane co najmniej dwoma słodkimi i dwoma pikantnymi produktami każdego dnia (przykład tygodniowego harmonogramu pokazano w Tabeli 1; opcje żywieniowe na 3 dni pokazane w Rysunek 1). Opcjonalne dodatki to wysokotłuszczowa, wysokosłodzona karma i 10% roztwór sacharozy.
    2. Wybieraj produkty z każdej kategorii, które są podobne pod względem proporcji makroskładników: wszystkie słodkie produkty mają stosunkowo wyższą zawartość węglowodanów niż tłuszczu, a wszystkie pikantne produkty mają wyższą zawartość tłuszczu niż węglowodanów. Staraj się zapewnić podobne proporcje tłuszczu, węglowodanów, cukru i białka w każdym codziennym zestawie pokarmów CAF.
    3. Regularnie monitoruj spożycie przez cały czas trwania eksperymentu, aby w razie potrzeby dostosować menu do utrzymania hiperfagii. Tabela 2 zawiera informacje o gęstości energetycznej i makroskładnikach odżywczych dla kilku przykładowych pokarmów oraz sugerowane ilości wyjściowe dla 200 g samców szczurów Sprague Dawley.
    4. Unikaj podawania pojedynczego pokarmu przez kolejne dni lub zbyt często w ciągu tygodnia, ponieważ może to zmniejszyć spożycie tego pokarmu. W takim przypadku należy pominąć żywność w harmonogramie na kilka dni przed ponownym włączeniem.
      nuta: Szczury mogą wykazywać neofobię, a większość nowych pokarmów wymaga wielokrotnych ekspozycji, aby określić, czy zostaną spożyte. Szczury zazwyczaj nie preferują pokarmów zawierających drożdże (pieczywo, pizza itp.) ani tych o smaku cytrusowym lub kawowym.
  2. Karmy mokre
    1. Rozważ umieszczenie żywności o wyższej zawartości wilgoci w pojemniku, takim jak puszka po tuńczyku, aby uniknąć zabrudzenia ściółki. W takim przypadku należy również zapewnić puste pojemniki do kontroli klatek.
  3. Pozyskiwanie diet
    1. Upewnij się, że użyte produkty spożywcze CAF są zszywkami lub uzyskaj wystarczającą ilość na cały eksperyment, aby produkty spożywcze pozostały spójne i nie trzeba ich zastępować.
  4. Przechowywanie diety
    1. Przechowuj żywność zgodnie ze wskazaniami na opakowaniu lub w temperaturze -20 °C i rozmroź na noc przed użyciem. Przechowuj suche produkty (herbatniki) w hermetycznym pojemniku.
  5. Roztwór sacharozy (opcjonalnie)
    1. Przygotować roztwór sacharozy, zwykle 10% (w/v) luzem (2–5 l) i przechowywać w temperaturze 4 °C, gdy nie jest używany.
    2. Butelki z sacharozą należy wymieniać co najmniej raz w tygodniu, aby zapobiec rozwojowi bakterii lub grzybów. Codziennie sprawdzaj butelki i wymieniaj, jeśli zaobserwuje się oznaki wzrostu.
      nuta: Sacharoza jest dostarczana jako dodatek do wody, która jest zawsze dostępna.

3. Przygotowanie diety w stołówce

  1. rozmrażać
    1. Wyjmij odpowiednie ilości żywności CAF do rozmrożenia ~24 godziny przed użyciem. Żywność można rozmrażać za pomocą kuchenki mikrofalowej, ale nie należy jej prezentować, gdy jest gorąca.
  2. Codzienne uzupełnianie diety CAF
    1. Codzienna zmiana karmy diety CAF zapewnia maksymalizację różnorodności i zminimalizowanie zabrudzenia klatek. Ponieważ szczury zjadają większość swojego dziennego spożycia w początkowej części ciemnego cyklu, zaplanuj uzupełnianie pokarmu CAF blisko początku ciemnego harmonogramu, aby pokarm był świeży w tym czasie. Uzupełnij dietę CAF w dniu, w którym spożycie pokarmu nie jest mierzone.
    2. Nakarm grupy karmione w sposób, który zapewni, że ta grupa będzie miała podobne codzienne doświadczenia, jak poniżej.
      1. Odwróć butelki z wodą (wylewki do góry), umieść klatkę na miejscu pracy i zdejmij pokrywę.
      2. Lekko naruszaj ściółkę przez około 20 sekund, aby zasymulować proces zbierania artykułów spożywczych z ściółki klatek CAF.
      3. Umieść małą garść granulek z pojemnika na żywność w ściółce, aby wyrównać narażenie na żywność na pościeli klatki.
      4. Zwróć pokrywę klatki i wróć do stojaka, wymieniając butelki z wodą tylko wtedy, gdy klatka jest osadzona, aby zminimalizować rozlanie.
    3. Karmienie grup kafeterii
      1. Przygotuj produkty diety CAF w oznaczonym pojemniku dla każdej klatki.
      2. Odwróć butelki z wodą (wylewki do góry), umieść klatkę na miejscu pracy i zdejmij pokrywę.
      3. Usuń jak najwięcej starej diety stołówkowej z pościeli.
      4. Umieść świeżą dietę kafeteryjną w klatce.
      5. Zamknij klatkę i wróć do stojaka.
      6. Wymień butelki z wodą i sacharozą.
        nuta: Aby uniknąć narażania szczurów chow na dietę CAF, rozważ karmienie klatek przed klatkami CAF lub odwrotnie. Rękawiczki należy zmieniać między kontaktami ze szczurami z różnych grup dietetycznych.
  3. W razie potrzeby uzupełnij butelki z karmą, wodą i sacharozą. Robienie tego po innych procedurach jest bardziej wydajne, ponieważ pudełka są cięższe po uzupełnieniu jedzenia i wody.
    nuta: Skrzynki CAF brudzą się szybciej i muszą być częściej wymieniane, aby uniknąć stresu wywołanego narażeniem na mokrą ściółkę, a także silnymi zapachami. Codziennie sprawdzaj pościel i zmieniaj ją w razie potrzeby.

4. Spożycie pokarmu w ciągu 24 godzin

UWAGA: Pomiary spożycia pokarmu są przeprowadzane przez dyskretny okres 24 godzin kilka razy w tygodniu.

  1. Rozpoczynając dietę CAF, mierz masę ciała i przyjmowane pokarmy przez 24 godziny co najmniej dwa razy w tygodniu, aby monitorować skuteczność diety. Rozpocznij pomiary spożycia pokarmu w pobliżu początku fazy ciemnej. Staraj się prezentować ten sam zestaw pokarmów CAF w dniach pomiaru spożycia pokarmu, ponieważ zrównanie smaku i gęstości energetycznej pozwoli na dokładne monitorowanie zmian w czasie.
    nuta: Może to nie być możliwe w przypadku badań wymagających >2 pomiarów spożycia pokarmu tygodniowo, ponieważ nadmierna ekspozycja na te same pokarmy może z czasem zmniejszyć hiperfagię.
  2. CAF i środki dotyczące spożycia w diecie kontrolnej
    1. Przygotuj dietę CAF i umieść ją w oznakowanym pojemniku dla każdej klatki, ważąc i rejestrując każdy składnik. Rysunek 1 przedstawia kompletny zestaw karm CAF. Tabela 3 zawiera przykładowy arkusz monitorowania spożycia żywności.
    2. W razie potrzeby uzupełnij wodę, sacharozę i poziom karmy.
  3. Do klatek dla chow (kontrolnych)
    1. Odwróć butelki z wodą (wylewki do góry), umieść klatkę na miejscu pracy i zdejmij pokrywę.
    2. Zważ szczury, a następnie przenieś je do klatki ze świeżą ściółką, wraz ze wzbogaceniem środowiska.
    3. Rekordowa waga butelek z wodą i karmy.
    4. Załóż pokrywę klatki, umieść klatkę z powrotem na stojaku, a następnie odwróć butelki z wodą. Do klatki można dodać małe tabliczki z napisem "PRZYJMOWANIE POKARMU", aby powiadomić personel i badaczy, aby nie dotykać butelek i karmy.
  4. Dla koszyków CAF:
    1. Wykonaj te same czynności, co w kroku 4.3. Dodatkowo rozsyp wstępnie zważony pojemnik z karmą CAF wokół klatki ze świeżą ściółką przed przeniesieniem szczurów.
    2. Pozostaw szczury na okres 24 godzin przy minimalnych zakłóceniach. Rejestruj wszelkie nieprzewidziane zakłócenia (np. przybycie nowych szczurów do pomieszczenia kolonijnego lub zmiany w hałasie otoczenia).
  5. Zakończ pomiar spożycia pokarmu
    1. Rekordowa waga butelek z wodą i karmy do klatek na karmę, uważnie przeszukując ściółkę w poszukiwaniu kawałków karmy. Po zakończeniu usuń znak "spożycie pokarmu" z klatek.
    2. Przygotuj świeżą dietę CAF dla klatek CAF.
    3. Dla każdej klatki CAF
      1. Rekordowa waga wody, karmy i sacharozy.
      2. Zdejmij pokrywę klatki i wzbogacenie środowiska.
      3. Ostrożnie usuń fragmenty CAF ze ściółki i umieść je w osobnych pojemnikach. Najpierw usuń największe kawałki, a następnie systematycznie przesiewaj całe ściółkę klatki z jednego końca na drugi, wykonując delikatne ruchy zamiatające.
        nuta: Stosuj ten sam stopień ostrożności do każdej klatki podczas zbierania pokarmu. Zapisz, gdzie w klatce był szczególnie bałagan - w niektórych przypadkach szczury mielą ciasto i/lub herbatniki na drobny proszek, który jest trudny do zebrania. Może to sztucznie zawyżać środki dotyczące przyjmowania pokarmu.
      4. Rozprowadź nową dietę CAF wokół klatki, zwróć wzbogacenie w środowisko, zamknij pokrywę klatki i włóż ją z powrotem do stojaka, usuwając znak "spożycie pokarmu".
      5. Zapisz wagę każdej karmy CAF z dokładnością do 0,1 g. Odejmij pozostałą ilość pokarmu od początkowej masy karmy, aby uzyskać całkowitą ilość pokarmu spożywanego w klatce, a następnie podziel przez liczbę szczurów w każdym pudełku (zakładając w ten sposób równe spożycie).
      6. Pomnóż ilość spożytego pokarmu (g/szczur) przez gęstość energetyczną (kJ/g) każdego pokarmu dostarczonego przez producenta.
        nuta: Do obliczenia spożycia makroskładników przyjmujemy gęstość energetyczną 16,7 kJ/g dla węglowodanów i białka oraz 37 kJ/g dla tłuszczu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Jak pokazano w Rysunek 2A, karmienie dietą CAF powoduje 2,5-krotny wzrost spożycia energii w porównaniu z grupą kontrolną, na podstawie danych z trzech kohort samców szczurów Sprague Dawley, który jest stały przez 6 tygodni. Inne badania potwierdziły, że ten zakres hiperfagii utrzymuje się przez 1021 i 1622 tygodniowe eksperymenty. Krzywa masy ciała (Rysunek 2B) wskazuje, że żywienie dietą C...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Poprzez wystawienie szczurów na różnorodne, bardzo smaczne pokarmy o wysokiej zawartości tłuszczu i cukru, opisany tutaj protokół diety CAF zapewnia wiarygodny i solidny model tak zwanej "diety zachodniej" spożywanej przez wiele osób. Hiperfagia - oceniana jako znaczny wzrost spożycia energii w porównaniu z grupą kontrolną - obserwuje się w ciągu pierwszych 24 godzin od ekspozycji, przy statystycznie istotnych różnicach w masie ciała obserwowanych w ciągu kilku tygodni. Tak więc CAF jest skutecznym modelem otyłości wywoł...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy deklarują brak sprzecznych interesów lub ujawnień.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Praca była wspierana przez granty projektu NHMRC (#568728, #150262, #1126929) dla MJM.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Plastikowa butelkaDo przygotowania 10% roztworu sacharozy, jeśli dotyczy
Zalecana jest deskaPlastikowa
zamrażarkaDo przechowywania żywności CAF
Konserwacja karmy dla gryzoni GordonaGordon's Specialty Stockfeeds (Australia)Dieta podtrzymująca stosowana w naszym laboratorium (14 kJ/g; 65% węglowodanów, 13% tłuszczu i 22% białka, jak energia)
Duże plastikowe pudełkaWszystkie powyższe przedmioty można przechowywać w pojemnikach dla łatwego dostępu
Duża łyżkaDo przygotowania diety CAF
Kuchenka mikrofalowaDo rozmrażania diety CAF (w razie potrzeby)
NóżDo przygotowania diety CAF
Ręcznik papierowyWażne do czyszczenia powierzchni roboczych i noża podczas przygotowania CAF
Pojemniki plastikoweSłużą one do ważenia artykułów spożywczych CAF w dni pomiaru
Lejek z tworzywa sztucznego Doprzygotowania 10% roztworu sacharozy, w razie potrzeby
Czerwone światłoPonieważ dieta CAF powinna być codziennie odświeżana w pobliżu początku ciemnej fazy, czerwone światło będzie pomocne podczas pracy w ciemności
Puszki na tuńczykaDo prezentowania "bardziej wilgotnych" produktów spożywczych CAF. Odpowiednie mogą być również pojemniki plastikowe
Pojemnik do ważenia x 3Do ważenia szczurów, karmy i butelek oraz żywności CAF należy używać oddzielnych pojemników
WagaZalecana czułość do 0,1 g
CukierDo 10% roztworu sacharozy, jeśli dotyczy
2-5 L do krojenia do przechowywania nieząbkowany biały

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Swinburn, B. A., et al. The Global Syndemic of Obesity, Undernutrition, and Climate Change: The Lancet Commission report. Lancet. 393 (10173), 791-846 (2019).
  2. Australian Institute of Health and Welfare. Vol. Cat. no. PHE 215. , AIHW. Canberra. (2017).
  3. GBD Diet Collaborators. Health effects of dietary risks in 195 countries, 1990-2017: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2017. Lancet. , 30041-30048 (2019).
  4. Treit, D., Spetch, M. L., Deutsch, J. A. Variety in the flavor of food enhances eating in the rat: a controlled demonstration. Physiology & Behavior. 30 (2), 207-211 (1983).
  5. Rolls, B. J. Experimental analyses of the effects of variety in a meal on human feeding. American Journal of Clinical Nutrition. 42, 5 Suppl 932-939 (1985).
  6. Louis-Sylvestre, J., Giachetti, I., Le Magnen, J. Sensory versus dietary factors in cafeteria-induced overweight. Physiology & Behavior. 32 (6), 901-905 (1984).
  7. Naim, M., Brand, J. G., Kare, M. R., Carpenter, R. G. Energy Intake, Weight Gain and Fat Deposition in Rats Fed Flavored, Nutritionally Controlled Diets in a Multichoice ("Cafeteria") Design. The Journal of Nutrition. 115 (11), 1447-1458 (1985).
  8. Sclafani, A., Springer, D. Dietary obesity in adult rats: similarities to hypothalamic and human obesity syndromes. Physiology & Behavior. 17 (3), 461-471 (1976).
  9. Rolls, B. J., Rowe, E. A., Turner, R. C. Persistent obesity in rats following a period of consumption of a mixed, high energy diet. Journal of Physiology. 298, 415-427 (1980).
  10. Prats, E., Monfar, M., Castella, J., Iglesias, R., Alemany, M. Energy intake of rats fed a cafeteria diet. Physiology & Behavior. 45 (2), 263-272 (1989).
  11. Rogers, P. J., Blundell, J. E. Meal patterns and food selection during the development of obesity in rats fed a cafeteria diet. Neuroscience & Biobehavioral Reviews. 8 (4), 441-453 (1984).
  12. Rothwell, N. J., Stock, M. J. Thermogenesis induced by cafeteria feeding in young growing rats. Proceedings of the Nutrition Society. 39 (2), 45(1980).
  13. Hansen, M. J., Ball, M. J., Morris, M. J. Enhanced inhibitory feeding response to alpha-melanocyte stimulating hormone in the diet-induced obese rat. Brain Research. 892 (1), 130-137 (2001).
  14. Hansen, M. J., Schioth, H. B., Morris, M. J. Feeding responses to a melanocortin agonist and antagonist in obesity induced by a palatable high-fat diet. Brain Research. 1039 (1-2), 137-145 (2005).
  15. Moore, B. J. The cafeteria diet--an inappropriate tool for studies of thermogenesis. The Journal of Nutrition. 117 (2), 227-231 (1987).
  16. Speakman, J. R. Use of high-fat diets to study rodent obesity as a model of human obesity. International Journal of Obesity (London). , 0363-0367 (2019).
  17. Hansen, M. J., et al. The lung inflammation and skeletal muscle wasting induced by subchronic cigarette smoke exposure are not altered by a high-fat diet in mice. PLoS One. 8 (11), 80471(2013).
  18. Chen, H., Iglesias, M. A., Caruso, V., Morris, M. J. Maternal cigarette smoke exposure contributes to glucose intolerance and decreased brain insulin action in mice offspring independent of maternal diet. PLoS One. 6 (11), 27260(2011).
  19. Cameron, K. M., Speakman, J. R. The extent and function of 'food grinding' in the laboratory mouse (Mus musculus). Laboratory Animals. 44 (4), 298-304 (2010).
  20. Beilharz, J. E., Kaakoush, N. O., Maniam, J., Morris, M. J. Cafeteria diet and probiotic therapy: cross talk among memory, neuroplasticity, serotonin receptors and gut microbiota in the rat. Molecular Psychiatry. 23 (2), 351-361 (2018).
  21. South, T., Holmes, N. M., Martire, S. I., Westbrook, R. F., Morris, M. J. Rats eat a cafeteria-style diet to excess but eat smaller amounts and less frequently when tested with chow. PLoS One. 9 (4), 93506(2014).
  22. Martire, S. I., et al. Extended exposure to a palatable cafeteria diet alters gene expression in brain regions implicated in reward, and withdrawal from this diet alters gene expression in brain regions associated with stress. Behavioral Brain Research. 265, 132-141 (2014).
  23. Grech, A., Rangan, A., Allman-Farinelli, M. Macronutrient Composition of the Australian Population's Diet; Trends from Three National Nutrition Surveys 1983, 1995 and 2012. Nutrients. 10 (8), (2018).
  24. Austin, G. L., Ogden, L. G., Hill, J. O. Trends in carbohydrate, fat, and protein intakes and association with energy intake in normal-weight, overweight, and obese individuals: 1971-2006. American Journal of Clinical Nutrition. 93 (4), 836-843 (2011).
  25. Sclafani, A., Gorman, A. N. Effects of age, sex, and prior body weight on the development of dietary obesity in adult rats. Physiology & Behavior. 18 (6), 1021-1026 (1977).
  26. Sampey, B. P., et al. Cafeteria diet is a robust model of human metabolic syndrome with liver and adipose inflammation: comparison to high-fat diet. Obesity (Silver Spring). 19 (6), 1109-1117 (2011).
  27. Buyukdere, Y., Gulec, A., Akyol, A. Cafeteria diet increased adiposity in comparison to high fat diet in young male rats. PeerJ. 7, 6656(2019).
  28. Oliva, L., et al. In rats fed high-energy diets, taste, rather than fat content, is the key factor increasing food intake: a comparison of a cafeteria and a lipid-supplemented standard diet. PeerJ. 5, 3697(2017).
  29. Higa, T. S., Spinola, A. V., Fonseca-Alaniz, M. H., Evangelista, F. S. Comparison between cafeteria and high-fat diets in the induction of metabolic dysfunction in mice. International Journal of Physiology, Pathophysiololgy and Pharmacology. 6 (1), 47-54 (2014).
  30. Zeeni, N., Dagher-Hamalian, C., Dimassi, H., Faour, W. H. Cafeteria diet-fed mice is a pertinent model of obesity-induced organ damage: a potential role of inflammation. Inflammation Research. 64 (7), 501-512 (2015).
  31. Bortolin, R. C., et al. A new animal diet based on human Western diet is a robust diet-induced obesity model: comparison to high-fat and cafeteria diets in term of metabolic and gut microbiota disruption. International Journal of Obesity (London). 42 (3), 525-534 (2018).
  32. Hansen, M. J., Jovanovska, V., Morris, M. J. Adaptive responses in hypothalamic neuropeptide Y in the face of prolonged high-fat feeding in the rat. Journal of Neurochemistry. 88 (4), 909-916 (2004).
  33. Martire, S. I., Westbrook, R. F., Morris, M. J. Effects of long-term cycling between palatable cafeteria diet and regular chow on intake, eating patterns, and response to saccharin and sucrose. Physiology & Behavior. 139, 80-88 (2015).
  34. Shiraev, T., Chen, H., Morris, M. J. Differential effects of restricted versus unlimited high-fat feeding in rats on fat mass, plasma hormones and brain appetite regulators. Journal of Neuroendocrinology. 21 (7), 602-609 (2009).
  35. Beilharz, J. E., Maniam, J., Morris, M. J. Short exposure to a diet rich in both fat and sugar or sugar alone impairs place, but not object recognition memory in rats. Brain, Behavior and Immunity. 37, 134-141 (2014).
  36. Bhagavata Srinivasan, S. P., Raipuria, M., Bahari, H., Kaakoush, N. O., Morris, M. J. Impacts of Diet and Exercise on Maternal Gut Microbiota Are Transferred to Offspring. Frontiers in Endocrinology. 9, 716-716 (2018).
  37. Kaakoush, N. O., et al. Alternating or continuous exposure to cafeteria diet leads to similar shifts in gut microbiota compared to chow diet. Molelcular Nutrition & Food Research. 61 (1), (2017).
  38. Raipuria, M., Bahari, H., Morris, M. J. Effects of maternal diet and exercise during pregnancy on glucose metabolism in skeletal muscle and fat of weanling rats. PLoS One. 10 (4), 0120980(2015).
  39. Beilharz, J. E., Maniam, J., Morris, M. J. Short-term exposure to a diet high in fat and sugar, or liquid sugar, selectively impairs hippocampal-dependent memory, with differential impacts on inflammation. Behavioral Brain Research. 306, 1-7 (2016).
  40. Darling, J. N., Ross, A. P., Bartness, T. J., Parent, M. B. Predicting the effects of a high-energy diet on fatty liver and hippocampal-dependent memory in male rats. Obesity (Silver Spring). 21 (5), 910-917 (2013).
  41. Gomez-Smith, M., et al. Reduced Cerebrovascular Reactivity and Increased Resting Cerebral Perfusion in Rats Exposed to a Cafeteria Diet. Neuroscience. 371, 166-177 (2018).
  42. Martire, S. I., Holmes, N., Westbrook, R. F., Morris, M. J. Altered feeding patterns in rats exposed to a palatable cafeteria diet: increased snacking and its implications for development of obesity. PLoS One. 8 (4), 60407(2013).
  43. Del Bas, J. M., et al. Alterations in gut microbiota associated with a cafeteria diet and the physiological consequences in the host. International Journal of Obesity (London). 42 (4), 746-754 (2018).
  44. Ferreira, A., Castro, J. P., Andrade, J. P., Dulce Madeira, M., Cardoso, A. Cafeteria-diet effects on cognitive functions, anxiety, fear response and neurogenesis in the juvenile rat. Neurobiology of Learning and Memory. 155, 197-207 (2018).
  45. Ribeiro, A., Batista, T. H., Veronesi, V. B., Giusti-Paiva, A., Vilela, F. C. Cafeteria diet during the gestation period programs developmental and behavioral courses in the offspring. International Journal of Developmental Neuroscience. 68, 45-52 (2018).
  46. Leffa, D. D., et al. Effects of Acerola (Malpighia emarginata DC.) Juice Intake on Brain Energy Metabolism of Mice Fed a Cafeteria Diet. Molecular Neurobiology. 54 (2), 954-963 (2017).
  47. Mn, M., Smvk, P., Battula, K. K., Nv, G., Kalashikam, R. R. Differential response of rat strains to obesogenic diets underlines the importance of genetic makeup of an individual towards obesity. Scientific Reports. 7 (1), 9162(2017).
  48. Schemmel, R., Mickelsen, O., Gill, J. L. Dietary obesity in rats: Body weight and body fat accretion in seven strains of rats. The Journal of Nutrition. 100 (9), 1041-1048 (1970).
  49. Montgomery, M. K., et al. Mouse strain-dependent variation in obesity and glucose homeostasis in response to high-fat feeding. Diabetologia. 56 (5), 1129-1139 (2013).
  50. Krzizek, E. C., et al. Prevalence of Micronutrient Deficiency in Patients with Morbid Obesity Before Bariatric Surgery. Obesity Surgery. 28 (3), 643-648 (2018).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Model gryzonidieta typu zachodniegopomiar spo ycia pokarmuprzyrost masy cia azaburzenia metabolicznemodel hiperfagiiocena oty o citest tolerancji glukozy

Powiązane artykuły