Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Wytwarzanie wielokomórkowych ludzkich pierwotnych organoidów endometrialnych

11.1K wyświetleń

DOI:

10.3791/60384

4 października 2019

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

Przedstawiono protokół generowania ludzkich pierwotnych organoidów endometrialnych, które składają się z komórek nabłonkowych i zrębowych oraz zachowują cechy natywnej tkanki endometrium. Protokół ten opisuje metody od pozyskania tkanki macicy do histologicznego przetwarzania organoidów endometrialnych.

Streszczenie

Ludzka endometrium jest jedną z najbardziej reagujących hormonalnie tkanek w organizmie i jest niezbędna do zajścia w ciążę. Tkanka ta może również ulec chorobie i spowodować zachorowalność, a nawet śmierć. Systemy modelowe do badania biologii endometrium człowieka zostały ograniczone do systemów hodowli in vitro pojedynczych typów komórek. Ponadto komórki nabłonkowe, jeden z głównych typów komórek endometrium, nie rozmnażają się dobrze ani nie zachowują swoich cech fizjologicznych w hodowli, a zatem nasza wiedza na temat biologii endometrium pozostaje ograniczona. Po raz pierwszy udało nam się wygenerować organoidy endometrialne, które składają się zarówno z komórek nabłonkowych, jak i zrębowych ludzkiego endometrium. Te organoidy nie wymagają żadnych egzogennych materiałów rusztowań i specjalnie organizują się tak, że komórki nabłonkowe obejmują strukturę podobną do sferoidy i stają się spolaryzowane z komórkami zrębu w środku, które wytwarzają i wydzielają kolagen. Receptory estrogenowe, progesteronowe i androgenowe ulegają ekspresji w komórkach nabłonka i zrębu, a leczenie fizjologicznymi poziomami estrogenu i testosteronu sprzyja organizacji organoidów. Ten nowy system modelowy może być wykorzystany do badania prawidłowej biologii i chorób endometrium w sposób, który wcześniej nie był możliwy.

Wprowadzenie

Ludzki endometrium wyściela jamę macicy i służy jako pierwszy kontakt dla zarodka podczas implantacji. Endometrium składa się z komórek nabłonka światła i gruczołowego, podporowych fibroblastów zrębu, komórek śródbłonka i komórek odpornościowych. Razem te typy komórek tworzą tkankę endometrium, która jest jedną z najbardziej wrażliwych tkanek na hormony steroidowe płci 1. Zmiany, które zachodzą podczas każdego cyklu miesiączkowego, są uderzające. Odpowiedni wzrost i przebudowa błony śluzowej macicy, aby umożliwić zagnieżdżenie się zarodka. Nieprawidłowa reakcja na estrogen i progesteron może skutkować opornym na leczenie endometrium, które nie pozwala na pomyślne zajście w ciążę, a nawet może prowadzić do chorób, w tym neoplazji endometrium.

W celu zbadania odpowiedzi hormonalnych i istotnych zmian zachodzących w endometrium, komórki z tkanek endometrium pobranych od pacjentek podczas operacji lub biopsji endometrium zostały namnażone w hodowli komórkowej. Komórki zrębu endometrium preferencyjnie proliferują i łatwo się rozmnażają, a proces różnicowania indukowany przez progesteron można podsumować in vitro. W rezultacie, wiele się nauczyliśmy podczas tego procesu różnicowania, określanego jako decydualizacja2,3. Drugi główny typ komórek w endometrium, komórki nabłonka światła i gruczołowe, nie rosną jednak dobrze jako tradycyjne monowarstwy, tracąc polarność, starzejąc się i mając ograniczony potencjał proliferacyjny. W rezultacie mniej wiadomo o ich biologii i roli w ludzkim endometrium. Ponieważ wiele nowotworów wywodzi się z komórek nabłonkowych, mechanizmy związane z hiperplazją lub transformacją w komórki rakowe pozostają do pełnego zdefiniowania. Ponadto badania wykazały, że odpowiedź hormonalna obejmuje intymne działania parakrynne między komórkami nabłonkowymi i zrębowymi endometrium4,5.

Niedawno, trójwymiarowa (3D) hodowla organoidów komórek nabłonka endometrium została założona przez dwie niezależne grupy6,7, które są pierwszymi doniesieniami o organoidach utworzonych z tkanki endometrium. Organoidy te składały się z komórek nabłonka endometrium osadzonych w macierzy białkowej (tabela materiałów) i nie zawierały ważnego przedziału hormonalnego endometrium, fibroblastów zrębu. Ponieważ białka macierzy mogą się różnić w zależności od partii i mogą uruchamiać szlaki sygnałowe, które niekoniecznie występują w tkance, idealnym rozwiązaniem byłoby zastąpienie białek macierzy składnikami endometrium. W niniejszym badaniu przedstawiono protokół generowania wolnych od rusztowań ludzkich organoidów endometrialnych komórek nabłonka i zrębu ludzkiego endometrium. Obecność komórek zrębu nie tylko zapewnia wsparcie dla komórek nabłonkowych, ale także zapewnia niezbędne działania parakrynne, które zostały uznane za ważne dla odpowiedzi hormonalnej endometrium4,8,9.

Nowy wielokomórkowy organoid endometrium oferuje system modelowy endometrium, który jest prosty do wygenerowania i który zawiera zarówno komórki nabłonkowe, jak i zrębowe. Te organoidy mogą być wykorzystywane do badania długoterminowych zmian hormonalnych i wczesnych zdarzeń chorobowych, takich jak nowotworzenie z powodu braku równowagi hormonalnej lub egzogennych urazów. Złożoność tych organoidów może ostatecznie zostać rozszerzona o inne typy komórek, w tym komórki śródbłonka i układu odpornościowego z prawdopodobnie komórkami mięśniówki macicy, aby naprawdę naśladować fizjologię tkanek ludzkich.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Próbki endometrium zostały pobrane od kobiet przed menopauzą poddanych rutynowej histerektomii z powodu łagodnych chorób macicy w Northwestern University Prentice Women's Hospital, zgodnie z protokołem zatwierdzonym przez Institutional Review Board. Uzyskano pisemną zgodę od wszystkich kobiet włączonych do badania.

1. Przygotowanie form agarozowych

  1. Przed rozpoczęciem izolacji komórek należy odlać i zrównoważyć 1,5% mikroformy agarozowe (tabela materiałów), aby pomieścić organoidy zgodnie z instrukcjami producenta.

2. Generacja organoidów endometrialnych

  1. Zbierz pierwotne komórki zrębu i nabłonka
    1. W komorze bezpieczeństwa biologicznego przy użyciu techniki aseptycznej przygotować roztwór enzymu (2,5 mg/ml kolagenazy typu I + 0,1 mg/ml DNazy I w 10 ml dypazy [500 jednostek]) w temperaturze 37 °C i sterylnie przefiltrować roztwór za pomocą filtra strzykawkowego 0,2 μm do stożkowej probówki o pojemności 15 ml.
    2. W komorze bezpieczeństwa biologicznego przy użyciu techniki aseptycznej zeskrob endometrium z biopsji macicy i zmiel tkankę pod kapturem na bardzo małe kawałki za pomocą skalpela.
      nuta: Tkanka endometrium o wymiarach co najmniej 20 mm x 10 mm x 1 mm jest wymagana do wytworzenia wystarczającej liczby organoidów.
    3. Umieść świeżo zmieloną tkankę w roztworze enzymu w stożkowej probówce o pojemności 15 ml. Zamknij nakrętkę i owiń górę folią woskową (tabela materiałów), aby zapobiec zanieczyszczeniu.
    4. Umieścić probówkę z chusteczką w łaźni wodnej lub inkubatorze w temperaturze 37 °C na 30 minut, delikatnie wstrząsając (80−100 obr./min).
    5. Ułóż sitko o pojemności 100 μm na sitku o pojemności 20 μm na stożkowej probówce o pojemności 50 ml. Przefiltrować roztwór przez dwa sitka, a następnie przepłukać stożkową probówkę o pojemności 15 ml 10 ml zbilansowanego roztworu soli Hanka (HBSS; Tabela materiałów) i przełóż płukanie przez sitko, aby upewnić się, że wszystkie komórki zostały zebrane.
      nuta: Płyn przepływowy zawiera komórki zrębu i czerwone krwinki (łącznie ~20 ml). Komórki nabłonka zbiera się na sitku o średnicy 20 μm. Kawałki niestrawionej tkanki pozostają na wierzchu sitka o średnicy 100 μm. Wyrzuć niestrawioną tkankę do pojemnika na odpady stanowiące zagrożenie biologiczne.
    6. Odwrócić sitko o wielkości 20 μm z kroku 2.1.5 do nowej stożkowej probówki o pojemności 50 ml i zmyć komórki nabłonka z sitka za pomocą 20 ml pożywki organoidowej (tabela materiałów) uzupełnionej 1% wstrzykiwaczem/paciorkowiec.
    7. Odwirować stożkowe probówki z etapów 2.1.5 i 2.1.6 przy 500 x g przez 5 minut.
    8. Z zebranymi komórkami zrębu usunąć supernatant i ponownie zawiesić osad z 10 ml buforu do lizy czerwonych krwinek. Inkubować w temperaturze 37 °C przez 10-15 min. Odwirować stożkową probówkę przy 500 x g przez 5 minut, usunąć supernatant i ponownie zawiesić osad z 200−300 μl pożywki organoidowej (dalsze instrukcje znajdują się w kroku 2.2.2).
    9. Po zebraniu komórek nabłonka usunąć supernatant i ponownie zawiesić ze 100 μl pożywki organoidowej (dalsze instrukcje znajdują się w kroku 2.2.2).
  2. Komórki wysiewające
    1. Po zrównoważeniu 1,5% form agarozy w studzienkach (1 pleśń na studzienkę) płytki 24-dołkowej, należy usunąć pożywkę organoidową na zewnątrz form agarozowych i przechylić płytkę do hodowli tkankowej tak, aby można było również ostrożnie usunąć pożywkę z komory wysiewu komórek szalek agarozowych.
    2. Zobacz zawiesiny komórek nabłonka (od kroku 2.1.9) i zrębu (od kroku 2.1.8) pod mikroskopem. Dodaj więcej pożywki organoidowej do zawiesin komórek nabłonka lub zrębu po 100 μl na raz, tak aby zawiesiny miały mniej więcej równą gęstość.
      nuta: Komórki nabłonkowe będą się zlepiać ze sobą i nie zaleca się trawienia/trypsynizacji komórek nabłonka w zawiesiny pojedynczych komórek.
    3. Połącz objętościowo 1 część komórek zrębu z 3 częściami komórek nabłonkowych.
    4. Odpipetować 50 μl (60 000 komórek) zawiesiny połączonych komórek do komory wysiewu komórek formy agarozowej.
    5. Gdy formy agarozy zostaną wypełnione komórkami, ostrożnie dodaj 400 μl świeżej pożywki organoidowej do dołka 24-dołkowej płytki.
      nuta: Pożywka sięga tuż pod powierzchnię szalek agarozowych i nie spowoduje wypływania komórek z pleśni. Po 2-3 dniach komórki osiądną i zaczną tworzyć organoidy.
    6. Zmieniaj pożywkę co drugi dzień z 500 μl pożywki organoidowej.
    7. Po 2-3 dniach zmień podłoże na takie, które jest uzupełnione 0,1 nM estradiolu (E) i 0,8 nM testosteronu (T), aby promować organizację komórek nabłonka i zrębu.
      nuta: Chociaż organizacja komórek nabłonkowych i zrębowych może zachodzić z hormonami lub bez nich, więcej organoidów zorganizuje się w obecności hormonów.

3. Pozyskiwanie organoidów endometrialnych do eksperymentów

UWAGA: Po zakończeniu eksperymentu, organoidy endometrialne mogą być przetwarzane do analizy histologicznej lub RNA. Poniższe kroki opisują, jak przetwarzać organoidy.

  1. histologia
    1. Rozpuścić 1,5% agarozy w roztworze soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (PBS) przez gotowanie. Pozostawić płynną agarozę do ostygnięcia do temperatury około 50 °C.
    2. Pod mikroskopem preparacyjnym przechylić 24-dołkową płytkę i ostrożnie odpipetować pożywkę z zewnętrznej strony formy agarozowej. Ostrożnie odpipetować pożywkę z wnętrza formy agarozowej, aby uniknąć uszkodzenia organoidów.
    3. Pod mikroskopem preparacyjnym ostrożnie odpipetować 70-75 μl ciepłej (50 °C) 1,5% agarozy do komory naczynia z agarozą. Uważaj, aby nie naruszyć organoidów.
    4. Pozostawić do ostygnięcia w temperaturze 4 °C przez 5 minut.
    5. Dodać 4% paraformaldehydu (PFA) do każdego dołka na płytce 24-dołkowej i przymocować całą szczelną formę agarozy zawierającą organoidy na noc w temperaturze 4 °C. Następnie przechowywać w 70% etanolu w temperaturze 4 °C, aż będzie gotowy do przetworzenia w celu zatopienia parafiny.
  2. Izolacja RNA
    1. Pod mikroskopem preparacyjnym przechylić 24-dołkową płytkę i ostrożnie odpipetować pożywkę z komory formy agarozowej.
    2. Na siłę odpipetować 1 ml świeżej pożywki organoidowej bezpośrednio do formy agarozowej, aby organoidy zostały wypłukane z mikrostudzienek. Uważaj, aby nie stworzyć zbyt wielu bąbelków.
    3. Powtórzyć pipetowanie ponownie z tym samym podłożem z kroku 3.2.2.
    4. Zebrać całą pożywkę zawierającą organoidy. Wirować z maksymalną prędkością, aby zebrać organoidy i przystąpić do ekstrakcji RNA.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Schemat protokołu przedstawiono na Rysunku 1. Tkanka macicy została pobrana podczas operacji po badaniu patomorfologicznym. Wyściółka endometrium została oddzielona od mięśnia macicy poprzez skrobanie, a następnie tkanka endometrium została poddana trawieniu enzymatycznemu do pojedynczych komórek zgodnie z opisem w protokole. Komórki nabłonkowe i zrębowe wprowadzono do mikrootworów w formach agarowych. Po 7 dniach hodowli organoidy poddano działaniu E i T przez dodatkowe 7−14 dni.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Uzyskaliśmy ludzkie organoidy endometrialne składające się z komórek nabłonka i zrębu błony śluzowej macicy bez użycia egzogennych materiałów rusztowaniowych. Chociaż wykazano już, że pierwotne komórki nabłonka endometrium mogą tworzyć organoidy 6,7, komórki te zostały osadzone w galaretowatej matrycy białek wydzielanych przez komórki mięsaka myszy (patrz tabela materiałów), aby pomóc w tworzeniu struktur podobnych do sferoid. Ponadto brakowało k...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

To badanie zostało sfinansowane przez NIEHS/NIH/NCATS UG3 grant (ES029073) oraz Northwestern Feinberg School of Medicine Bridge Fund (JJK). Chcielibyśmy podziękować Northwestern Pathology Core Facility za przetwarzanie utrwalonych organoidów do zatapiania parafiny. Chcielibyśmy podziękować całemu zespołowi UG3, w tym laboratoriom Woodruff, Burdette i Urbanek, za wnikliwe dyskusje i współpracę.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Agaroza HS, klasa biologii molekularnejDenville ScientificCA3510-6
Formy agarozoweSigma-AldrichZ764043(https://www.microtissues.com/)
Chlorek amonu (NH4Cl)Amresco0621
β-EstradiolSigma-AldrichE2257
Kolagenaza, typ II, proszekThermo Fisher Scientific17101015
DispaseCorning354235
DNase ISigma-AldrichD4513
EDTAFisher ScientificBP120-1
Eozyna StainVWR95057-848
Receptor estrogenowy (SP1), królicze przeciwciało monoklonalneThermo Fisher ScientificRM-9101-S
Fluoroshield z DAPI, podłoże do montażu histologicznegoSigma-AldrichF6057
Zbilansowany roztwór soli Hanka (HBSS)Corning21-022-CV1x bez czerwieni wapniowej, magnezowej i fenolowej
Roztwór barwienia hematokalinyThermo Fisher Scientific3530-32Zmodyfikowana formuła Harrisa, bezrtęciowy
roztwór heparynySTEMCELL Technologie07980dodany do pożywki MammoCult
Roztwór podstawowy hydrokortyzonuSTEMCELL Technologies07925dodany do podłoża MammoCult
Pożywki organoidowe - MammocultSTEMCELL Technologies05620uzupełniony o 2 &mikro; L/ml heparyny i 5 &mikro; L/ml hydrokortyzon
Paraformaldehyd, 16% roztwórMikroskopia elektronowa Nauki15710
Penicylina-StreptomycynaThermo Fisher Scientific15140122
Sól fizjologiczna buforowana fosforanem, pH 7,4Sigma-AldrichP3813
, PgR 1294, niesprzężony, supernatant kulturyAgilent TechnologiesM356801-2
matryca białkowa - MatrigelBD Biosciences356231
Oczyszczone mysie przeciwciało anty-E-kadherynyBD Biociences610181Clone 36
Rekombinowane przeciwciało anty-wimentynowe [EPR3776]Abcamab92547
Zestaw do lizy i izolacji RNAZymo ResearchR2060
Wodorowęglan sodu (NaHCO3)Sigma-AldrichS6014
TestosteronSigma-Aldrich86500
Plama trójchromowaAbcamab150686
Film woskowy - ParafilmVWR52858-000
Receptor progesteronowy

Bibliografia

  1. Henriet, P., Gaide Chevronnay, H. P., Marbaix, E. The endocrine and paracrine control of menstruation. Molecular and Cellular Endocrinology. 358 (2), 197-207 (2012).
  2. Gellersen, B., Brosens, I. A., Brosens, J. J. Decidualization of the human endometrium: mechanisms, functions, and clinical perspectives. Seminars in Reproductive Medicine. 25 (6), 445-453 (2007).
  3. Gellersen, B., Brosens, J. J. Cyclic decidualization of the human endometrium in reproductive health and failure. Endocrine Reviews. 35 (6), 851-905 (2014).
  4. Li, Q., et al. The antiproliferative action of progesterone in uterine epithelium is mediated by Hand2. Science. 331 (6019), 912-916 (2011).
  5. Wetendorf, M., DeMayo, F. J. The progesterone receptor regulates implantation, decidualization, and glandular development via a complex paracrine signaling network. Molecular and Cellular Endocrinology. 357 (1-2), 108-118 (2012).
  6. Boretto, M., et al. Development of organoids from mouse and human endometrium showing endometrial epithelium physiology and long-term expandability. Development. 144 (10), 1775-1786 (2017).
  7. Turco, M. Y., et al. Long-term, hormone-responsive organoid cultures of human endometrium in a chemically defined medium. Nature Cell Biology. 19 (5), 568-577 (2017).
  8. Kurita, T., et al. Stromal progesterone receptors mediate the inhibitory effects of progesterone on estrogen-induced uterine epithelial cell deoxyribonucleic acid synthesis. Endocrinology. 139 (11), 4708-4713 (1998).
  9. Kim, J. J., Kurita, T., Bulun, S. E. Progesterone action in endometrial cancer, endometriosis, uterine fibroids, and breast cancer. Endocrine Reviews. 34 (1), 130-162 (2013).
  10. Bui, H. N., et al. Dynamics of serum testosterone during the menstrual cycle evaluated by daily measurements with an ID-LC-MS/MS method and a 2nd generation automated immunoassay. Steroids. 78 (1), 96-101 (2013).
  11. Wiwatpanit, T., Murphy, A. R., Lu, Z., Urbanek, M., Burdette, J. E., Woodruff, T. K., Kim, J. J. Scaffold-free endometrial organoids respond to excess androgens associated with polycystic ovarian syndrome. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. , (2019).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

kom rki nab onkowekom rki zr boweizolacja kom rekformy agarozowetraktowanie hormonamisygnalizacja parakrynowasekrecja kolagenuimmunohistochemiaekstrakcja RNA