Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Pomiar wychwytu glukozy stymulowanego insuliną i skurczem w izolowanych i inkubowanych dojrzałych mięśniach szkieletowych myszy

6.2K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/61398

⸱

16 maja 2021

 ,  ,  ,  ,  ,  , 

W tym artykule

Podsumowanie

Nienaruszona regulacja wychwytu glukozy w mięśniach jest ważna dla utrzymania homeostazy glukozy w całym organizmie. Protokół ten przedstawia ocenę wychwytu glukozy stymulowanego insuliną i skurczem w izolowanych i inkubowanych dojrzałych mięśniach szkieletowych przy jednoczesnym określeniu wpływu różnych interwencji fizjologicznych na metabolizm glukozy w całym organizmie.

Streszczenie

Mięsień szkieletowy jest tkanką reagującą na insulinę i zazwyczaj pobiera większość glukozy, która dostaje się do krwi po posiłku. Ponadto doniesiono, że mięśnie szkieletowe mogą zwiększyć ekstrakcję glukozy z krwi nawet 50-krotnie podczas ćwiczeń w porównaniu z warunkami spoczynku. Wzrost wychwytu glukozy przez mięśnie podczas wysiłku fizycznego i stymulacji insuliną jest zależny od translokacji transportera glukozy 4 (GLUT4) z przedziałów wewnątrzkomórkowych do błony powierzchniowej komórek mięśniowych, a także fosforylacji glukozy do glukozo-6-fosforanu przez heksokinazę II. Izolacja i inkubacja mięśni myszy, takich jak m. soleus i m. extensor digitorum longus (EDL), jest odpowiednim modelem ex vivo do badania wpływu insuliny i skurczu indukowanego elektrycznie (model ćwiczeń) na wychwyt glukozy w dojrzałych mięśniach szkieletowych. W ten sposób model ex vivo pozwala na ocenę wrażliwości mięśni na insulinę i umożliwia dopasowanie produkcji siły mięśniowej podczas skurczu, zapewniając równomierną rekrutację włókien mięśniowych podczas pomiarów wychwytu glukozy przez mięśnie. Co więcej, opisany model nadaje się do badania związków farmakologicznych, które mogą mieć wpływ na wrażliwość mięśni na insulinę lub mogą być pomocne przy próbie określenia złożoności regulacyjnej wychwytu glukozy w mięśniach szkieletowych.

Tutaj opisujemy i udostępniamy szczegółowy protokół, jak mierzyć pobór glukozy stymulowany insuliną i skurczem w izolowanych i inkubowanych preparatach mięśni płaszczkowatych i EDL od myszy przy użyciu radioznakowanej [3H]2-deoksy-D-glukozy i [14C]mannitolu jako markera zewnątrzkomórkowego. Pozwala to na dokładną ocenę wychwytu glukozy w dojrzałych mięśniach szkieletowych przy braku czynników zakłócających, które mogą zakłócać nienaruszony model zwierzęcy. Ponadto dostarczamy informacji na temat żywotności metabolicznej inkubowanych mięśni szkieletowych myszy, co sugeruje, że zastosowana metoda ma pewne zastrzeżenia w pewnych warunkach podczas badania metabolizmu energii mięśniowej.

Wprowadzenie

Mięśnie szkieletowe posiadają zdolność do wydobywania dużych ilości glukozy z przestrzeni zewnątrzkomórkowej w odpowiedzi na insulinę i ćwiczenia. Pomaga to w utrzymaniu homeostazy glukozy w całym organizmie i zabezpiecza podaż glukozy w okresach dużego zapotrzebowania na energię. Ponieważ wykazano, że nienaruszona regulacja wychwytu glukozy w mięśniach szkieletowych jest ważna dla ogólnego stanu zdrowia i sprawności fizycznej1,2, pomiary wychwytu glukozy przez mięśnie w różnych warunkach spotkały się z dużym zainteresowaniem. U ludzi i zwierząt klamra hiperinsulinemiczno-euglikemiczna jest stosowana jako złot....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Procedury z udziałem zwierząt badawczych powinny być wykonywane zgodnie z odpowiednimi wytycznymi i lokalnymi przepisami. Wszystkie doświadczenia na zwierzętach wykorzystane w tym badaniu były zgodne z Europejską Konwencją o Ochronie Zwierząt Kręgowych wykorzystywanych do celów doświadczalnych i innych celów naukowych i zostały zatwierdzone przez Duński Inspektorat Doświadczeń na Zwierzętach.

1. Przygotowanie aparatury doświadczalnej i pętli do szwów

UWAGA: W tym badaniu użyj zintegrowanego systemu miografu paskowego z dostosowanymi hakami inkubacyjnymi do inkubacji izolowanych mięśni szkieletowych myszy (

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Jak pokazano na Rysunku 2, podstawowe tempo wychwytu glukozy było podobne w izolowanych mięśniach soleus i EDL samic myszy. Było to zgłaszane już wielokrotnie wcześniej12,13,19,20. W odpowiedzi na podmaksymalne stężenie insuliny (100 µU/mL) wychwyt glukozy wzrósł odpowiednio około 0,8 i 0,6 razy, osiągając 12 i 9 µmol/g białka/h w m.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Nienaruszona regulacja wychwytu glukozy w mięśniach szkieletowych jest ważna dla zachowania ogólnego stanu zdrowia1. W związku z tym badanie wychwytu glukozy przez mięśnie często służy jako podstawowy odczyt przy ocenie różnych interwencji zmieniających zdrowie. Tutaj opisujemy metodę ex vivo pomiaru wychwytu glukozy w izolowanym i inkubowanym mięśniu płaszczkowatym i EDL od myszy w odpowiedzi na insulinę i skurcze wywołane elektrycznie. Metoda jest szybka i niezawodna oraz pozwala na precyzyjną k.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia

Podziękowania

Ta praca była wspierana przez granty z Duńskiej Rady ds. Niezależnych Badań - Nauk Medycznych (FSS8020-00288B) oraz Fundacji Novo Nordisk (NNF160C0023046). Prace te były również wspierane przez grant badawczy dla Rasmusa Kjøbsteda z Duńskiej Akademii Diabetologicznej, który jest finansowany przez Fundację Novo Nordisk, grant numer NNF17SA0031406. Autorzy pragną podziękować Karinie Olsen, Becinie Bolmgren i Irene Bech Nielsen (Wydział Żywienia, Ćwiczeń i Sportu, Wydział Nauk Ścisłych, Uniwersytet Kopenhaski) za ich kompetentną pomoc techniczną.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
[14C]D-mannitolAmerykańskie chemikalia znakowane radioznakiem, Inc.ARC 0127
[3H]2-deoksy-D-glukoza Amerykańskie chemikalia znakowane radioaktywnie, Inc.ART 0103A
2-Deoksy-D-glukozaSigmaD8375
4-0 USP niesterylny chirurgiczny nylonowy szewAparat Harvarda51-7698
Streptawidyna/HRP (sprzężony)DAKOP0397Służy do wykrywania białka ACC
Akt2przeciwciało Sygnalizacja komórkowa3063
AMPKα 2 przeciwciałoSanta CruzSC-19131
aprotyninaSigmaA1153
benzamidynaSigmaB6505
Albumina surowicy bydlęcej (BSA)SigmaA7030
CaCl2Merck1020831000
siła)Duńska Myo Technology A/S300041
ChemiluminescencjaMiliporyWBLUF0500
D-glukozaMerck1084180100
D-MannitolSigmaM4125
Program do zbierania danychNational InstrumentsLabVIEW wersja oprogramowania 7.1
Rurki do dializyViskingDTV.12000.09 Rozmiar nr 9
Cyfrowy system obrazowaniaBioRadChemiDoc MP
EDTA Sigma EDSE9884
EGTASigmaE4378
Elektryczny stymulator impulsówDigitimerD330 MultiStim System
GlicerolSigmaG7757
HEPESSigmaH7637
IGEPAL CA-630 SigmaI8896
InsulinaNovo NordiskActrapid, 100 IE/ml
KClMerck1049361000
KH2PO4Merck104873025
leupeptynaSigmaL2884
MgSO4Merck1058860500
System miografu paskowegoDuńska technologia Myo A/SModel 820MS
Na-orthovanadateSigmaS6508
Na-pirofosforanSigma221368
Na-pirogronianSigmaP2256
NaClMerck106041000
NaFSigmaS1504
NaHCO3VWR27778260
pACC Ser212 przeciwciało Sygnalizacja komórkowa3661
pAkt Thr308przeciwciało Sygnalizacja komórkowa9275
pAMPK Przeciwciało Thr172Sygnalizacja komórkowa2531
fluorek fenylometylosulfonyluSigmaP7626
Platynowe elektrodyDuńska technologia Myo A/S300145
pTBC1D4 Ser588Sygnalizacja komórkowa8730
Licznik scyntylacyjnyPerkin ElmerTri-Carb-2910TR
Płyn scyntylacyjny Perkin Elmer6013329
Oprogramowanie do analiz statystycznychSystatSigmaPlot wersja 14
TBC1D4 przeciwciałoAbcamab189890
TissueLyser II Qiagen85300
Woda ultraczystaMerckMilli-Q Reference A+ System
β-glicerofosforanSigmaG9422
Zestaw kalibracyjny ( mięśni

Bibliografia

  1. DeFronzo, R., Tripathy, D. Skeletal muscle insulin resistance is the primary defect in type 2 diabetes. Diabetes Care. 32, suppl_2 157-163 (2009).
  2. Coyle, E. F., et al. Carbohydrate feed....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

stymulacja insulinąstymulacja skurczowamięsień soleus myszymięsień EDL myszyglukoza znakowana izotopowomigotanie w cieczyanaliza Western blotsekcja mięśni