Fosforylacja białek jest kluczowa dla regulacji aktywności enzymu i ekspresji genów w warunkach osmotycznych. Fosfoproteomika oparta na spektrometrii mas (MS) zmieniła sposób badania transdukcji sygnału roślinnego. Jednak wymóg dużej ilości materiałów wyjściowych i wydłużony czas pomiaru MS w celu osiągnięcia głębokości pokrycia był czynnikiem ograniczającym dla wysokoprzepustowych badań globalnych zmian fosfoproteomicznych w roślinach. Aby poprawić czułość i przepustowość fosfoproteomiki roślin, opracowaliśmy podejście fosfoproteomiki oparte na końcówce ekstrakcji stop and go w połączeniu z etykietowaniem Tandem Mass Tag (TMT) w celu szybkiej i kompleksowej analizy zaburzeń fosforylacji roślin w odpowiedzi na stres osmotyczny. Wykorzystując prostotę i wysoką przepustowość techniki końcówek etapowych, cała procedura trwa około godziny przy użyciu dwóch końcówek do zakończenia etapów wzbogacania fosforeptydów, frakcjonowania i czyszczenia próbki, co sugeruje łatwość użycia i wysoką skuteczność tego podejścia. Takie podejście nie tylko zapewnia dogłębną analizę fosfoproteomiki roślin (identyfikacja > 11 000 fosfopeptydów), ale także wykazuje lepszą skuteczność separacji (< 5% nakładania się) między sąsiednimi frakcjami. Co więcej, multipleksowanie osiągnięto przy użyciu znakowania TMT w celu ilościowego określenia zmian fosfoproteomicznych u zmutowanych roślin typu dzikiego i snrk2. Podejście to zostało z powodzeniem wykorzystane do ujawnienia zdarzeń fosforylacji kinaz podobnych do Raf w odpowiedzi na stres osmotyczny, co rzuca światło na zrozumienie wczesnej sygnalizacji osmotycznej u roślin lądowych.