Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Przygotowanie ostrych wycinków mózgu z grzbietowego bieguna hipokampa od dorosłych gryzoni

3.6K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/61699

⸱

10 września 2020

W tym artykule

Podsumowanie

Celem tego protokołu jest opisanie metody wytwarzania wycinków grzbietowego hipokampa do badania elektrofizjologicznego. Procedura ta wykorzystuje perfuzję schłodzonym ACSF przed przygotowaniem plastra z kątem krojenia zbliżonym do korony, co pozwala na zachowanie zdrowych głównych neuronów.

Streszczenie

Zapisy całokomórkowych krostek z ostrych wycinków mózgu gryzoni są podstawą nowoczesnych badań neurofizjologicznych, umożliwiając precyzyjny pomiar właściwości komórkowych i synaptycznych. Niemniej jednak istnieje coraz większa potrzeba wykonywania analiz skorelowanych między różnymi trybami eksperymentalnymi oprócz elektrofizjologii warstwowej, na przykład: immunohistochemii, biologii molekularnej, obrazowania in vivo lub zapisu elektrofizjologicznego; aby odpowiedzieć na coraz bardziej złożone pytania dotyczące funkcjonowania mózgu. Jednak wyciągnięcie znaczących wniosków z tych różnych podejść eksperymentalnych nie jest proste, ponieważ nawet w stosunkowo dobrze opisanych strukturach mózgu istnieje wysoki stopień subregionalnej zmienności funkcji komórkowych. Nigdzie nie jest to lepiej zilustrowane niż w CA1 hipokampa, który ma dobrze zdefiniowane właściwości grzbietowo-brzuszne, oparte na właściwościach komórkowych i molekularnych. Niemniej jednak wiele opublikowanych badań analizuje wzorce ekspresji białek lub behawioralnie skorelowaną aktywność in vivo w grzbietowym zasięgu hipokampa; i wyjaśnić wyniki mechanicznie za pomocą elektrofizjologii komórkowej z obszaru brzuszno-przyśrodkowego. Jest to dodatkowo zagmatwane przez fakt, że wiele eksperymentów elektrofizjologicznych z ostrymi plastrami przeprowadza się u młodych zwierząt, podczas gdy inne tryby doświadczalne są przeprowadzane u bardziej dojrzałych zwierząt. Aby rozwiązać te problemy, metoda ta obejmuje perfuzję przezsercową dojrzałych (>60-dniowych gryzoni) sztucznym płynem mózgowo-rdzeniowym, a następnie przygotowanie zmodyfikowanych wycinków koronalnych, w tym bieguna przegrody grzbietowego hipokampa, w celu zarejestrowania z komórek piramidowych CA1. Proces ten prowadzi do wytworzenia zdrowych, ostrych wycinków grzbietowego hipokampa, co pozwala na badanie elektrofizjologiczne komórkowe oparte na warstwach w połączeniu z innymi pomiarami.

Wprowadzenie

Hipokamp jest prawdopodobnie najlepiej zbadaną strukturą w mózgu ssaków, ze względu na jej stosunkowo duży rozmiar i wyraźną strukturę laminarną. Hipokamp jest zaangażowany w wiele procesów behawioralnych: nawigację przestrzenną, pamięć kontekstową i tworzenie epizodów. Wynika to częściowo ze względnej łatwości dostępu do grzbietowych części hipokampa u gryzoni do analizy in vivo. Rzeczywiście, główne ogniwa wyjściowe znajdują się zwykle mniej niż 2 mm od powierzchni pial.

U gryzoni hipokamp jest stosunkowo dużą strukturą, utworzoną z wgłębienia kresomózgowia rozciągającego się od przegrody grzbietowej do brzusznej kory nowej. Skła....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie zwierzęta zostały wygenerowane i utrzymywane zgodnie z wytycznymi Ministerstwa Spraw Wewnętrznych i Instytucji (HO# P135148E). Wszystkie szczury utrzymywano w 12-godzinnym cyklu światło/ciemność i zapewniono im ad libitum dostęp do pożywienia i wody.

1. Perfuzja przezsercowa schłodzonego ACSF

  1. Przed wszystkimi eksperymentami umieścić ~ 200 ml sacharozy-ACSF (Tabela 1) w zamrażarce w temperaturze -20 °C (do półzamrożenia, do krojenia) i dalsze ~ 100-200 ml przefiltrowanej sacharozy-ACSF na lodzie (do perfuzji), bulgocząc karbogenem (95% O2/5% CO2).
  2. Zbierz dorosłeg....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Opisany powyżej protokół umożliwia przygotowanie żywotnych skrawków z bieguna przegrodowego grzbietowego hipokampa u dorosłych szczurów. Kluczowym elementem tego protokołu jest perfuzja schłodzonym roztworem sacharozy-ACSF przed przygotowaniem skrawka, co skutkuje obecnością zdrowych PC CA1 w pobliżu powierzchni skrawka. Jakość otrzymanego skrawka ocenia się wizualnie za pomocą optyki IR-DIC; zdrowe komórki, rozpoznawane po dużych, owalnych ciałach komórkowych, znajdują się w całej rozciągłości stratum pyramidale

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

W tym miejscu opisano protokół mający na celu wytworzenie wysokiej jakości wycinków mózgu z grzbietowego zasięgu CA1 hipokampa, co pozwala na zapisy z wielu żywotnych neuronów w tym regionie. Podejście kombinatoryczne polegające na rejestrowaniu całej komórki z wycinków w pobliżu korony, a następnie wizualizacji neuronów ma kluczowe znaczenie dla potwierdzenia żywotności i tożsamości komórki.

Ten protokół niezawodnie wytwarza opłacalne plasterki z 2 głównych powodów. Po pierwsze, modyfikacja k.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autor oświadcza, że nie mają one konkurencyjnych interesów finansowych.

Podziękowania

Autor pragnie podziękować Prof. Davidowi JA Wyllie, dr Emmie Perkins, Laurze Simoes de Oliveira i Prof. Peterowi C. Kindowi za pomocne komentarze na temat optymalizacji manuskryptu i protokołu, a także The Simons Initiative for the Developing Brain za pokrycie kosztów publikacji.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Oprogramowanie do akwizycjiUrządzenia molekularnepClamp 10
Dorosłe szczuryRóżnenie dotyczyDowolna odmiana dorosłego szczura (60 dni i starszego)
WzmacniaczUrządzenia molekularneAxopatch 700B
Oprogramowanie analityczneFreewareStimfithttps://github.com/neurodroid/stimfit
Nożyczki do kościFST16152-12Styl Littauer
Szkło kapilarneHarvard Apparatus30-0060Pipety ze szkła borokrzemianowego z żarnikiem o średnicy zewnętrznej 1,5 mm, średnicy wewnętrznej 0,86 mm.
CarbogenBOCVarious95% O2/5% CO2
CCDkamera ScientificaSciCamProhttps://www.scientifica.uk.com/products/
Chemikalia/OdczynnikiSigmaAldrich RóżneWszystkie odczynniki laboratoryjne zakupione w Sigma Aldrich.
Cyjanoakrylan (tj. RS Pro 3)RS Components918-6872Unikaj preparatów cyjanoakrylowych na bazie żelu
DigitizerUrządzenia molekularneDigidata 1550B
Szpilki / igły do preparacjiRóżneRóżneZastosowanie Igły o rozmiarze 16 (powyżej)
System elektrofizjologicznyScientificaSliceScopehttps://www.scientifica.uk.com/products/ scientifica-slicescope
Nożyczki do cienkiej tęczówkiFST14568-12Z końcówkami z węglika wolframu
Szklana szalka PetriegoFisher Scientific12911408
Igły podskórneBD HealthcareRóżne16, 18 i 22 gauge
Izofluoran 100% W/W (i.IsoFlo)Zoetis50019100
Nożyczki typu MayoFST14110-17
końcówki MikromanipulatoryScientificaMicrostarhttps://www.scientifica.uk.com/products/scientifica-microstar-micromanipulator
PędzelSklep artystycznyn/aPędzel z cienkim włosiem, zakupiony w lokalnym sklepie plastycznym.
Pipeta PasteuraFisher Scientific11546963Szklana pipeta Pasteura, ale przycięta tak, aby koniec służył do przenoszenia pipety.
Pompa perystaltycznaWatson Marlow12466260Jednokanałowa pompa perystaltyczna
Ściągacz do pipetSutter InstrumentsP-97Inne modele i metody produkcji pipet sprawdziłyby się równie dobrze.
Plastikowe strzykawki (1, 2, 5 ml)BD HealthcareRóżne
narzędzia do kości RongeurFST16021-14
Komora do przechowywania plastrówDomowa
waga Slice / harfaAparat HarvardSHD-22L/15Alternatywy byłyby odpowiednie.
Pentobarbital sodu (tj. Pentoject)Animalcare Ltd10347/4014200 mg/mL; odpowiednie byłyby inne preparaty pentobarbitalu
SzpatułkaBochem3213Dostępne w Fisher Scientific
Filtry strzykawkoweFisher Scientific10482012Corning, 0,22 i mikro; m średnicy porów.
VibtratomeLeica1491200S001model VT1200S z
kąpielą wodnąFisher Scientific151670155 Litrowa kąpiel wodna, na przykład: Grant Instruments™ JBA5 scientifica-scicam-pro
marki Vibrocheck

Bibliografia

  1. Amaral, D. G., Witter, M. P. The three-dimensional organization of the hippocampal formation: a review of anatomical data. Neuroscience. 31 (3), 571-591 (1989).
  2. Moser, M. B., Moser, E. I. Functional differentiation in the hippocampus. Hippocampus. 8....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Pole CA1 hipokampagrzbietowy hipokamppatch-clamp całej komórkiperfuzja transkardialnamodyfikowane skrawki koronalneelektrofizjologia gryzoniprzygotowanie skrawkówelektrofizjologia komórkowaprzygotowanie skrawków mózgu

Ten artykuł został opublikowany

Film wkrótce dostępny