Artykuł metodologiczny

Frakcjonowanie w polu przepływu asymetrycznego do wymiarowania nanocząstek złota w zawiesinie

DOI:

10.3791/61757

11 września 2020

W tym artykule

Podsumowanie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ten protokół opisuje użycie asymetrycznego frakcjonowania przepływu w połączeniu z detekcją UV-vis do określenia wielkości próbki nieznanej próbki nanocząstek złota.

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wielkość cząstek jest prawdopodobnie najważniejszym parametrem fizykochemicznym związanym z pojęciem nanocząstki. Precyzyjna wiedza na temat wielkości i rozkładu wielkości nanocząstek ma ogromne znaczenie dla różnych zastosowań. Ważny jest również zakres rozmiarów, ponieważ określa on najbardziej "aktywny" składnik dawki nanocząstek.

Frakcjonowanie przepływu asymetrycznego (AF4) to potężna technika wymiarowania cząstek w zawiesinie w zakresie wielkości około 1–1000 nm. Istnieje kilka sposobów uzyskiwania informacji o rozmiarze z eksperymentu AF4. Oprócz sprzężenia AF4 online z detektorami wrażliwymi na rozmiar w oparciu o zasady wielokątowego rozpraszania światła lub dynamicznego rozpraszania światła, istnieje również możliwość skorelowania wielkości próbki z czasem jej retencji przy użyciu ugruntowanego podejścia teoretycznego (teoria FFF) lub poprzez porównanie jej z czasami retencji dobrze zdefiniowanych wzorców wielkości cząstek (kalibracja wielkości zewnętrznej).

Opisujemy tutaj rozwój i wewnętrzną walidację standardowej procedury operacyjnej (SOP) do wymiarowania nieznanej próbki nanocząstek złota za pomocą AF4 w połączeniu z detekcją UV-vis przy użyciu zewnętrznej kalibracji rozmiaru za pomocą wzorców nanocząstek złota w zakresie wielkości 20-100 nm. Procedura ta zawiera szczegółowy opis opracowanego przepływu pracy, w tym przygotowania próbki, konfiguracji i kwalifikacji przyrządu AF4, opracowania metody AF4 i frakcjonowania nieznanej próbki nanocząstek złota, a także korelacji uzyskanych wyników z ustaloną kalibracją wielkości zewnętrznej. Opisana tutaj procedura SOP została ostatecznie pomyślnie zwalidowana w ramach międzylaboratoryjnego badania porównawczego, podkreślając doskonałą wytrzymałość i niezawodność AF4 do wymiarowania próbek nanocząstek w zawiesinie.

Wprowadzenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nanocząstki złota (AuNP) w postaci złota koloidalnego były częścią ludzkiej kultury na długo zanim zaczęto rozumieć, czym są nanocząstki i zanim termin nanocząstka znalazł drogę do współczesnego, naukowego słownictwa. Bez wyraźnej wiedzy na temat ich wyglądu w nanoskali, zawieszony AuNP był już używany do celów medycznych i innych w starożytnych Chinach, Arabii i Indiach w V–VI wieku p.n.e.1, a także starożytni Rzymianie wykorzystali ich rubinowy kolor, aby słynnie zabarwić swoją ceramikę na wystawie Pucharu Likurga w British Museum2. W świecie zachodnim, przez wieki od średniowiecza do ery nowożytnej, zawieszone AuNP były głównie używane jako środki barwiące do szkła i emalii (Purple of Cassius)3, a także do leczenia różnych chorób (Pitable Gold), zwłaszcza syfilis4.

Jednak wszystkie te badania skupiały się głównie na zastosowaniu zawieszonych AuNP i to Michael Faraday w 1857 roku wprowadził pierwsze racjonalne podejście do badania ich powstawania, natury oraz właściwości5. Chociaż Faraday już wtedy zdawał sobie sprawę, że te AuNP muszą mieć bardzo małe wymiary, dopiero rozwój mikroskopii elektronowej sprawił, że jawne informacje o ich rozkładzie wielkości stały się dostępne6,7, co ostatecznie umożliwiło korelację między rozmiarem a innymi właściwościami AuNP.

Obecnie, dzięki dość łatwej i prostej syntezie, niezwykłym właściwościom optycznym (powierzchniowy rezonans plazmonowy), dobrej stabilności chemicznej, a tym samym niewielkiej toksyczności, a także dużej wszechstronności pod względem dostępnych rozmiarów i modyfikacji powierzchni, AuNP znalazły szerokie zastosowanie w dziedzinach takich jak nanoelektronika8, diagnostics9, terapia raka10, czy dostarczanie leków11. Oczywiście, dla tych zastosowań, dokładna wiedza na temat wielkości i rozkładu wielkości zastosowanego AuNP jest podstawowym warunkiem zapewnienia optymalnej skuteczności12 i istnieje duże zapotrzebowanie na solidne i niezawodne narzędzia do określenia tego kluczowego parametru fizykochemicznego. Obecnie istnieje mnóstwo technik analitycznych zdolnych do wymiarowania AuNP w zawiesinie, w tym na przykład spektroskopia UV-vis (UV-vis)13, dynamiczne rozpraszanie światła (DLS)14 lub spektrometria masowa plazmy sprzężonej indukcyjnie z pojedynczymi cząstkami (spICP-MS)15, przy czym frakcjonowanie przepływu pola (FFF) jest kluczowym graczem w tej dziedzinie16,17,18,19,20.

Po raz pierwszy opracowany w 1966 roku przez J. Calvina Giddingsa21, FFF obejmuje rodzinę technik frakcjonowania opartych na elucji, gdzie separacja odbywa się w cienkim, przypominającym wstęgę kanale bez fazy stacjonarnej22,23. W FFF separacja jest indukowana przez oddziaływanie próbki z zewnętrznym polem siłowym, które działa prostopadle do kierunku przepływu w kanale laminarnym, w którym próbka jest transportowana w dół zwykle w kierunku odpowiednich detektorów in-line. Wśród tych pokrewnych technik FFF, Asymetryczne Frakcjonowanie Pola Przepływu (AF4), w którym drugi przepływ (przepływ krzyżowy) działa jako pole siłowe, stał się najczęściej używanym podtypem24. W AF4 dno kanału (ściana akumulacyjna) jest wyposażone w półprzepuszczalną membranę ultrafiltracyjną, która jest w stanie zatrzymać próbkę, jednocześnie umożliwiając przepływ krzyżowy przez membranę i opuszczenie kanału przez dodatkowy wylot. W ten sposób przepływ krzyżowy może popchnąć próbkę w kierunku ściany akumulacji, przeciwdziałając w ten sposób jej strumieniowi indukowanemu dyfuzją (ruchy Browna). W wynikowej równowadze strumieni wywołanych polem i dyfuzją; Mniejsze składniki próbki wykazujące wyższe współczynniki dyfuzji ustawiają się bliżej środka kanału, podczas gdy większe składniki próbki wykazujące niższe współczynniki dyfuzji znajdują się bliżej ściany akumulacji. Ze względu na paraboliczny profil przepływu wewnątrz kanału, mniejsze składniki próbki są zatem transportowane w szybszych blaszkach przepływu kanału i eluują przed większymi składnikami próbki. Korzystając z parametru retencji FFF i równań współczynnika dyfuzji Stokesa-Einsteina, czas elucji i odpowiednio objętość elucji próbki w AF4 można następnie bezpośrednio przełożyć na jej rozmiar hydrodynamiczny22. Tutaj opisane zachowanie elucji odnosi się do normalnego trybu elucji i jest zwykle ważne dla AF4 w zakresie wielkości cząstek od około 1 do 500 nm (czasami do 2000 nm w zależności od właściwości cząstek i parametrów frakcjonowania), podczas gdy elucja steryczno-hiperwarstwowa zwykle zachodzi powyżej tego progu wielkości25.

Istnieją trzy popularne sposoby uzyskiwania informacji o rozmiarze po rozdzieleniu przez FFF. Ponieważ FFF jest instrumentem modułowym, można go łączyć z wieloma detektorami, takimi jak detektory rozpraszania światła wrażliwe na rozmiar oparte na zasadzie wielokątowego rozpraszania światła (MALS)26,27, Dynamiczne rozpraszanie światła (DLS)28,29, a nawet kombinację obu, aby uzyskać dodatkowe informacje o kształcie30,31. Jednakże, ponieważ zachowanie retencji próbki w kanale FFF jest generalnie regulowane przez dobrze zdefiniowane siły fizyczne, rozmiar można również obliczyć przy użyciu podejścia matematycznego (teoria FFF), gdzie prosty detektor stężenia (np. detektor UV-vis) jest wystarczający do wskazania obecności próbki elucyjnej32,33.

Jako trzecią opcję, tutaj zgłaszamy zastosowanie zewnętrznej kalibracji rozmiaru34,35 przy użyciu dobrze zdefiniowanych standardów AuNP w zakresie wielkości 20–100 nm do wymiarowania nieznanej próbki nanocząstek złota w zawiesinie za pomocą AF4 w połączeniu z detekcją UV-vis. Ta prosta konfiguracja eksperymentalna została wybrana celowo, aby umożliwić jak największej liczbie laboratoriów dołączenie do międzynarodowego porównania międzylaboratoryjnego (ILC), które zostało następnie przeprowadzone w ramach projektu Unii Europejskiej ACEnano w ramach programu Horyzont 2020 w oparciu o przedstawiony tutaj protokół.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Ustawienia systemu AF4

  1. Zmontuj wkład AF4 i podłącz wszystkie elementy sprzętowe systemu AF4 oraz detektor UV-vis (tabela materiałów) zgodnie z instrukcjami podanymi w instrukcji producenta.
  2. Zainstaluj wszystkie niezbędne pakiety oprogramowania do sterowania, akwizycji, przetwarzania i oceny danych zgodnie z instrukcjami podanymi w instrukcji producenta.
  3. Upewnij się, że wszystkie niezbędne połączenia sygnałowe między systemem AF4 a detektorem UV-vis zostały wykonane.
  4. Upewnij się, że ustalone połączenia AF4-UV-vis są szczelne i bez wycieków, przepłukując zestaw ultraczystą wodą (UPW) przez 15 minut (natężenie przepływu końcówki 1 ml∙min-1, natężenie przepływu ostrości 1 mL∙min-1 i natężenie przepływu krzyżowego 1.5 mL∙min-1). W tym celu należy otworzyć oprogramowanie sterujące AF4 i wprowadzić natężenia przepływu do odpowiednich paneli w prawym górnym rogu strony docelowej. W razie potrzeby dokręć odpowiednie złącza (złączki) i powtarzaj procedurę, aż nie będzie można zaobserwować żadnych wycieków.
    UWAGA: Ciśnienie wewnętrzne w układzie podczas wszystkich pomiarów powinno być monitorowane i musi mieścić się w zakresie od 4 do 12 barów. W przypadku, gdy ciśnienie jest wyższe lub niższe, należy wyregulować przewody zwrotne. Ponadto trend ciśnienia w kanale powinien być stały przez cały czas pomiaru.
    UWAGA: Jeśli dostępny jest piec kanałowy, ustaw jego temperaturę na 25 °C, aby zapewnić porównywalne warunki pomiaru we wszystkich eksperymentach AF4.

2. Przygotowanie roztworów i zawiesin do kwalifikacji systemu AF4-UV-vis i analizy próbek

  1. Roztwór czyszczący
    1. Dodać 8 g stałego wodorotlenku sodu (NaOH) i 2 g dodecylosiarczanu sodu (SDS) do 1 l wody ultraczystej i mieszać roztwór aż do całkowitego rozpuszczenia.
  2. Eluentu
    1. Dodać 500 μl przefiltrowanej mieszaniny środków powierzchniowo czynnych do 2 l przefiltrowanej i odgazowanej wody ultraczystej w celu uzyskania eluentu (0,025% (v/v), pH około 9,4).
      UWAGA: Szczegółowy opis związków mieszaniny środków powierzchniowo czynnych znajduje się w Tabeli 1 (również Tabeli Materiałów).
  3. Dowolny wzorzec wielkości AuNP do wyznaczania odzysku masy
    1. Przez 2 minuty należy wirować dowolny wzorzec wielkości AuNP (50 mg∙L-1) i rozcieńczyć go w stosunku 1:4 z UPW, aby uzyskać końcowe stężenie masowe 12,5 mg∙L-1. Wirować przez dodatkowe 2 minuty po rozcieńczeniu w celu homogenizacji otrzymanej zawiesiny.
      UWAGA: Podczas pracy z chemikaliami, zwłaszcza granulkami NaOH.
      wymagane są niezbędne środki ostrożności i odpowiedni sprzęt ochronny. UWAGA: Ogólnie zaleca się odgazowanie i przefiltrowanie wszystkich niezbędnych roztworów (z wyjątkiem roztworu czyszczącego) za pomocą filtra membranowego 0,1 μm (hydrofilowego PVDF lub podobnego), aby zapewnić niską zawartość cząstek tła podczas eksperymentów AF4-UV-vis. Można to ustalić za pomocą dedykowanej jednostki filtracji próżniowej lub za pomocą filtrów strzykawkowych.

3. Kwalifikacja systemu AF4-UV-vis

  1. Użyj ustawień oprogramowania opisanych w kroku 1.4, aby przepłukać system roztworem czyszczącym przez 30 minut (natężenie przepływu końcówki 1 ml∙min-1, natężenie przepływu ostrości 1 ml∙min-1 i natężenie przepływu krzyżowego 1.5 ml∙min-1).
  2. Wymień odpowiednią butelkę z eluentem i przepłucz system wodą ultraczystą przez 20 minut (natężenie przepływu końcówki 1 ml∙min-1, natężenie przepływu ostrości 1 mL∙min-1 i natężenie przepływu krzyżowego 1,5 mL∙min-1).
  3. Wymień odpowiednie filtry pompy liniowej.
  4. Otwórz wkład AF4 i wymień membranę AF4. Zmontuj wkład AF4 i ponownie podłącz go do systemu AF4-UV-vis.
  5. Przepłukać oczyszczony system AF4-UV-vis eluentem przez co najmniej 30 minut w celu wyrównania membrany i ustabilizowania systemu (natężenie przepływu końcówki 1 ml∙min-1, natężenie przepływu ostrości 1 mL∙min-1 i natężenie przepływu krzyżowego 1,5 mL∙min-1). Ponownie sprawdź, czy nie ma potencjalnych wycieków (patrz krok 1.4).
  6. Kwalifikacja systemu AF4-UV-vis poprzez określenie odzysku masy i zmiany czasu retencji przy użyciu dowolnego wzorca wielkości AuNP.
    1. Wykonać wtrysk bezpośredni bez przykładania siły rozdzielającej.
      1. Utwórz nowy plik pomiarowy, otwierając punkt menu Plik | Nowość | Uruchom w oprogramowaniu sterującym AF4.
      2. Zdefiniuj opis próbki i pomiaru, a także objętość wtrysku i nazwę próbki w zakładce Uruchom. Warunki pomiaru przedstawiono w tabeli 2.
      3. Ustaw parametry pomiaru w drugiej zakładce Metoda FFF zgodnie z Tabelą 2.
      4. Kliknij przycisk Uruchom, aby rozpocząć pomiar.
    2. Wykonać przebieg frakcjonowania z przyłożeniem siły rozdzielającej (przepływ krzyżowy).
      1. Określić metodę frakcjonowania zgodnie z opisem w poprzednim rozdziale, stosując warunki frakcjonowania określone w tabeli 3.
      2. Kliknij przycisk Uruchom, aby rozpocząć pomiar.
      3. Wykonaj pomiar w poczwórnym rozmiarze.
        UWAGA: Pierwszy przebieg ma na celu kondycjonowanie systemu (tj. membrany AF4) i zostanie wykluczony z końcowej oceny wyników kwalifikacji systemu.
        UWAGA: Zaleca się zapisanie wszystkich wygenerowanych plików uruchamiania, otwierając punkt menu Plik | Zapisz w oprogramowaniu sterującym AF4.
      4. Rozważmy, że system AF4-UV-vis jest kwalifikowany, jeśli uzyskuje się odzysk masy na poziomie >80% i zmianę czasu retencji <2% dla dowolnego wzorca wielkości AuNP.
      5. W przypadku korzystania z automatycznego podajnika próbek jako systemu iniekcyjnego, należy napełnić butelkę zbiornika do mycia igieł automatycznego podajnika igieł tym samym roztworem, który jest pompowany przez system AF4-UV-vis (np. roztworem czyszczącym, wodą ultraczystą lub odpowiednim eluentem), aby zapewnić optymalne warunki pracy. Podczas zmiany eluentu ogólnie zaleca się przestrzeganie re-equilibracji systemu AF4 poprzez monitorowanie sygnału detektora UV-vis do momentu, gdy jego linia podstawowa pozostanie stabilna na stałym poziomie.

4. Analiza próbki AF4-UV-vis

  1. Przygotować wszystkie wzorce wielkości AuNP do zewnętrznej kalibracji wielkości poprzez wirowanie odpowiedniej zawiesiny AuNP (20 nm, 40 nm, 80 nm, 100 nm, każda 50 mg. L-1) przez 2 minuty i rozcieńczyć w stosunku 1:4 roztworem ultraczystej wody do uzyskania końcowego stężenia masowego 12,5 mg∙L-1. Wirować przez dodatkowe 2 minuty po rozcieńczeniu, aby ujednorodnić otrzymane zawiesiny.
  2. Przygotować nieznaną próbkę AuNP do analizy, stosując tę samą procedurę, co w przypadku wzorców kalibracyjnych opisanych w kroku 4.1.
  3. Wykonać pomiar wtrysku bezpośredniego wszystkich wzorców wielkości AuNP przy użyciu metody AF4 przedstawionej w tabeli 2.
    1. W tym celu należy wprowadzić odpowiednie wartości podsumowane w tabeli 2 do oprogramowania producenta w odpowiednich pozycjach w celu zdefiniowania parametrów separacji i próbki, a następnie nacisnąć przycisk Uruchom, aby rozpocząć eksperyment.
  4. Frakcjonować każdy wzorzec wielkości AuNP indywidualnie przy użyciu metody AF4 przedstawionej w tabeli 3, aby ustalić funkcję zewnętrznej kalibracji wielkości.
    1. Wprowadź odpowiednie wartości podsumowane w tabeli 3 do oprogramowania producenta w odpowiednich pozycjach. Metoda frakcjonowania jest zdefiniowana przez etap ogniskowania, kilka etapów elucji i etap płukania. Po skonfigurowaniu metody naciśnij przycisk Uruchom, aby rozpocząć eksperyment.
  5. Wykonać pomiar metodą wtrysku bezpośredniego nieznanej próbki AuNP przy użyciu metody AF4 przedstawionej w tabeli 2.
  6. Przeprowadzić frakcjonowanie nieznanej próbki AuNP, przeprowadzając metodę AF4 wymienioną w tabeli 3.
  7. O ile nie zaznaczono inaczej, należy wykonać wszystkie pomiary, o których mowa w sekcjach 3 i 4, w trzech egzemplarzach, w celu uzyskania miarodajnych i statystycznie istotnych wyników.
    1. Przed użyciem przechowywać 50 mg∙L-1 zawiesiny wyjściowej AuNP w temperaturze 4–8 °C. Rozcieńczone zawiesiny AuNP najlepiej przygotować w ciągu 30 minut przed aplikacją.
      UWAGA: Wirowanie jest zwykle wystarczające i nie jest konieczne stosowanie ultradźwięków zawiesin
    2. .
    3. Aby umożliwić korelację czasu retencji nieznanej próbki AuNP z czasami retencji uzyskanymi dla wzorców wielkości AuNP, należy zmierzyć wszystkie próbki tą samą metodą AF4.
      UWAGA: Aby zapewnić stałe i ważne warunki separacji, należy uwzględnić/powtórzyć etap frakcjonowania opisany w rozdziale dotyczącym kwalifikacji systemu (patrz krok 3.6.2) po określonej liczbie pomiarów próbki (np. 10 pomiarów). Ponadto rejestruj ciśnienie w układzie i stabilność linii bazowej detektora UV-vis. Powinny one pozostać stabilne i stałe przez cały przebieg AF4-UV-vis.
      UWAGA: Membranę ultrafiltracyjną należy zwykle wymienić, gdy detektor UV-vis (lub detektor Multi Angle Light Scattering (MALS), jeśli jest dostępny) wykazuje zwiększony poziom szumów lub pominięte są zdefiniowane kryteria kwalifikacji systemu, takie jak odzysk, kształt piku próbki lub powtarzalność (lub system AF4-UV-vis został poddany dokładnej procedurze czyszczenia). W opisanych tutaj warunkach kwalifikowany system AF4-UV-vis jest zwykle stabilny przez co najmniej 50 pomiarów przy użyciu tej samej membrany; Jednak liczba możliwych kolejnych pomiarów spełniających określone kryteria jakości może się znacznie różnić w zależności od próbki, matrycy próbki i składu eluentu.

5. Ocena danych

  1. Obliczenia odzysku masy należy wykonać za pomocą oprogramowania do oceny danych dostarczonego przez producenta systemu AF4-UV-vis lub analizy arkusza kalkulacyjnego po wyeksportowaniu wszystkich niezbędnych danych pierwotnych (tj. obszaru piku UV-vis) z odpowiedniego oprogramowania do akwizycji danych, postępując zgodnie z instrukcjami podanymi w instrukcji producenta.
    1. Obliczyć odzysk masy AuNP, porównując obszary pod odpowiednimi pikami UV-vis pomiaru frakcjonowania (frakcjonowanie A) i pomiaru wtrysku bezpośredniego (wtryskbezpośredni) przy użyciu następującego równania:
      figure-protocol-1
      UWAGA: Podczas pomiaru bezpośredniego wtrysku nie jest stosowana żadna siła rozdzielająca, a zatem potencjalne interakcje gatunku analitu ze ścianą akumulacji można pominąć. Obszar pod odpowiednim pikiem UV-vis może być bezpośrednio skorelowany z masą AuNP przy użyciu prawa Beera-Lamberta, przy założeniu, że żadne inne gatunki w próbce nie absorbują na odpowiedniej długości fali i/lub i) eluują w innym czasie retencji w warunkach frakcjonowania ii) są usuwane przez membranę AF4.
    2. Zaimportuj pliki danych uzyskane zarówno z wtrysku bezpośredniego, jak i z przebiegu frakcjonowania.
    3. Wybierz ślad detektora UV-vis w zakładce Przegląd.
    4. Zdefiniuj obszar zainteresowania (ROI) i linię bazową w widoku sygnału i linii bazowej dla wszystkich pomiarów.
    5. Włóż kalibrację wtrysku bezpośredniego za pomocą wkładki.
    6. Zaznacz wszystkie przebiegi wtrysku bezpośredniego w widoku Ustawienia kalibracji wtrysku bezpośredniego i wprowadź współczynnik ekstynkcji UV.
      UWAGA: Ważne jest, aby używać tego samego współczynnika ekstynkcji UV-vis zarówno do kalibracji, jak i pomiaru frakcjonowania.
    7. Ustal linię kalibracyjną, wykorzystując obszar pod ścieżką sygnału UV-vis w ROI i wstrzykniętą ilość obliczoną na podstawie wprowadzonego stężenia i objętości wtrysku. Uzyskana kalibracja zostanie pokazana w osobnym oknie Funkcja kalibracji wtrysku bezpośredniego.
    8. Przypisz funkcję kalibracji do odpowiednich pomiarów frakcjonowania.
      UWAGA: Dla każdego wzorca wielkości kalibracji i nieznanej próbki AuNP należy ustanowić oddzielną funkcję kalibracji ze względu na zależną od wielkości absorbancję UV-vis AuNP. Tę wadę detektora UV-vis można obejść za pomocą detektora wrażliwego na masę, takiego jak ICP-MS.
    9. Wykonaj analizy, wprowadzając obliczenie wyników ilościowych, a wyniki zostaną wyświetlone w tabeli po prawej stronie jako wartości stężenia i wstrzykniętej ilości.
  2. Obliczyć zmienność czasu retencji za pomocą oprogramowania do oceny danych dostarczonego przez producenta systemu AF4 lub analizy w arkuszu kalkulacyjnym po wyeksportowaniu wszystkich niezbędnych danych pierwotnych (tj. czasów retencji wzorców kalibracyjnych AuNP przy odpowiednich maksimach szczytowych UV-vis i odpowiednich czasach void) z odpowiedniego oprogramowania do gromadzenia danych, postępując zgodnie z instrukcjami podanymi w instrukcji producenta.
    1. Otwórz okno Przegląd, aby wyświetlić odpowiednie ślady UV dla wszystkich zaimportowanych pomiarów.
    2. Wykrywanie wartości szczytowych zostanie przeprowadzone automatycznie; dostosuj parametry wykrywania wartości szczytowych w zestawie narzędzi do przetwarzania sygnału, aby zoptymalizować wydajność. Wyodrębnij odpowiednie maksima pików, przechodząc przez wszystkie pliki pomiarowe.
    3. Oblicz względne odchylenie standardowe dla wszystkich pomiarów, korzystając z następującego równania:
      figure-protocol-2
      Obliczenia można również wykonać za pomocą odpowiedniego oprogramowania do obsługi arkuszy kalkulacyjnych.
  3. Wykonaj określenie rozmiaru za pomocą oprogramowania do oceny danych dostarczonego przez producenta lub analizy arkusza kalkulacyjnego po wyeksportowaniu wszystkich niezbędnych danych surowych (czas retencji przy maksymalnym szczycie UV-vis analitu i odpowiedni czas pustki) z odpowiedniego oprogramowania do akwizycji danych, postępując zgodnie z instrukcjami podanymi w instrukcji producenta. Zewnętrzną funkcję kalibracji wielkości można ustanowić, wykreślając czasy retencji skorygowane o czas pustki (czasy retencji netto, patrz tabela 5) wzorców wielkości AuNP (20 nm, 40 nm, 80 nm, 100 nm) w stosunku do ich rozmiarów hydrodynamicznych uzyskanych z poprzednio wykonanych pomiarów DLS (patrz tabela 4).
    UWAGA: Pomiary DLS powinny być przeprowadzone najlepiej tego samego dnia, co odpowiednie pomiary frakcjonowania, aby zapewnić porównywalne właściwości próbki.
    1. Po zaimportowaniu plików .dat wszystkie pomiary są wyświetlane w zakładce Przegląd. Wybierz sygnał detektora UV-vis z listy czujników, która jest wyświetlana pod oknem nakładki. Zdefiniuj zwrot z inwestycji i linię bazową dla każdego pomiaru, które można dostosować w widoku Sygnał i Linia bazowa. Użyj przybornika Przetwarzanie sygnału po prawej stronie, aby wygładzić zaszumione sygnały. Użyj funkcji Przypisz parametry przetwarzania do innych przebiegów, aby umożliwić przypisanie parametrów do innych pomiarów lub sygnałów.
    2. Wybierz opcję Kalibracja wielkości cząstek z zakładki Wstaw.
    3. Wybierz wszystkie przebiegi kalibracji, klikając odpowiedni pomiar w tabeli Wybierz odniesienia do kalibracji w prawym górnym rogu. Wszystkie wybrane pomiary zostaną wyświetlone w poniższej tabeli. Wprowadź promień hydrodynamiczny dla wszystkich pomiarów kalibracyjnych, które są określone w tabeli 4. Funkcja zostanie wyświetlona w oknie Kalibracja wielkości cząstek – Funkcja, a równanie również zostanie wyświetlone.
      UWAGA: Współczynnik korelacji (R2) ustalonej funkcji kalibracji rozmiaru musi wynosić ≥0,990.
    4. Przypisz funkcję kalibracji do pomiarów nieznanej próbki AuNP, wybierając odpowiednie frakcje z listy Wybierz przebiegi do przypisania.
    5. Wyświetl wyniki, otwierając obliczenie rozkładu wielkości cząstek na karcie wstawki. Poprzednio utworzona kalibracja wielkości cząstek zostanie wyświetlona jako Kalibracja dla nieznanych pomiarów próbki AuNP, która jest wyświetlana w ustawieniach po prawej stronie. Obliczony rozmiar zostanie wyświetlony w oknie rozkładu rozmiarów oznaczonym etykietą do maksimum szczytu. Zaznacz pole wyboru Uśrednij sygnały dla próbki, aby uśrednić wszystkie pomiary jednej próbki i podać wynik na etykiecie maksimum piku.
    6. Dodatkowo narysuj linię kalibracji nad fraktogramem, zaznaczając pole wyboru Pokaż krzywą kalibracji. Skumulowany rozkład rozmiaru jest dostępny po zaznaczeniu pola wyboru Pokaż rozkład skumulowany.
      UWAGA: W przypadku korzystania z oprogramowania producenta do oceny danych zaleca się dodanie wszystkich wyników do raportu, który można wygenerować, klikając przycisk Raport w zakładce Wstaw. Przycisk Raport powoduje dodanie wszystkich wyników, tabel i diagramów do dokumentu. Na karcie Raport ustawienia raportu można zmienić, otwierając Ustawienia raportu w sekcji Dokument.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Po pierwsze, wzorce wielkości AuNP zostały pofrakcjonowane przez AF4 i wykryte przez UV-vis mierzące absorbancję AuNP na długości fali 532 nm (powierzchniowy rezonans plazmonowy AuNP). Nakładka uzyskanych fraktogramów jest przedstawiona w Rysunek 1. Czasy retencji każdego AuNP przy odpowiednim maksimum piku UV-vis uzyskane z potrójnych pomiarów są wymienione w tabeli 5. Względne odchylenie standardowe wszystkich czasów przechowywania wynosiło poniżej 1,1%, przy czym wariancja pomiaru zmniejszała się wraz ze wzrostem rozmiaru. Ogólnie rzecz biorąc, osiągnięto doskonałą powtarzalność. Zastosowano stałą siłę separacji, co spowodowało liniową zależność czasu elucji od wielkości hydrodynamicznej. Zewnętrzna linia kalibracji wielkości została ustalona poprzez wykreślenie określonego promienia hydrodynamicznego w stosunku do czasu elucji skorygowanego o czas pustki (czas retencji netto). Analiza regresji liniowej dała w wyniku liniową funkcję kalibracji z punktem przecięcia a = -3,373 nm ± 1,716 nm i nachyleniem b = 1,209 nm∙min-1 ± 0,055 nm∙min-1. Liniowe zachowanie elucji zostało potwierdzone za pomocą kwadratowego współczynnika korelacji R2 wynoszącego 0,9958. Odpowiednia funkcja kalibracji jest wizualnie wyświetlana w Rysunek 2.

Druga część dotyczyła analizy nieznanej próbki AuNP. Trzy podwielokrotności próbki przygotowano zgodnie z procedurą opisaną w sekcji protokołu (sekcja 4.2). Każda z trzech podwielokrotności została zbadana trzykrotnie przy użyciu tej samej metody frakcjonowania AF4, która została również zastosowana do wzorców wielkości AuNP. Wszystkie dziewięć fraktogramów AF4-UV-vis, które uzyskano z nieznanej próbki AuNP, przedstawiono w Rysunek 3, a ich odpowiednie oceny podsumowano w Tabeli 6. Względne odchylenie standardowe odpowiednich czasów retencji było znacznie niskie i mieściło się w zakresie od 0,1% do 0,5%. Korzystając z funkcji kalibracji wielkości cząstek uzyskanej z frakcjonowania wzorców wielkości AuNP i korelując ją z uzyskanymi czasami retencji nieznanej próbki AuNP przy maksimum piku UV-vis, można obliczyć ogólny średni promień hydrodynamiczny wynoszący 29,4 nm ± 0,2 nm. Ponadto uzyskano rozsądny odzysk masy wynoszący 83,1% ± 1,2%, co wskazuje na brak znaczącej aglomeracji lub rozpuszczenia próbki AuNP lub znacznej adsorpcji cząstek na powierzchni membrany. Rysunek 4 przedstawia uzyskany rozkład wielkości cząstek ze wszystkimi dziewięcioma uśrednionymi śladami sygnału UV-vis, podkreślając doskonałą wytrzymałość zastosowanej metody AF4.

figure-results-1
Rysunek 1: Fraktogramy AF4-UV-vis uzyskane z potrójnej analizy czterech indywidualnych wzorców kalibracyjnych wielkości AuNP ze znormalizowanymi natężeniami sygnału i zastosowanym stałym natężeniem przepływu krzyżowego (linia). Szczyt pustki jest podświetlony na szaro po około 5,9 minucie. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

figure-results-2
Rysunek 2: Uzyskana funkcja zewnętrznej kalibracji wielkości, w tym słupki błędów wynikające z odpowiednich odchyleń standardowych pomiarów DLS (tabela 4) i odchylenia w uzyskanych czasach retencji AF4 (tabela 5), po wykreśleniu określonego promienia hydrodynamicznego w stosunku do czasu retencji każdego indywidualnego wzorca kalibracji wielkości AuNP w odpowiednim maksimum piku. Z analizy regresji liniowej obliczono liniową funkcję kalibracyjną z błędami standardowymi w postaci y = a + bx przy a = -3,373 nm ± 1,716 nm i b = 1,209 nm·min-1 ± 0,055 nm·min-1. Wyznaczono kwadrat współczynnika korelacji z R2 = 0,9958, co wskazuje na zależność liniową. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

figure-results-3
Rysunek 3: AF4-UV-vis fraktogramy z potrójnymi pomiarami trzech podwielokrotności przedstawiających nieznaną wartość AuNP. Zastosowane stałe natężenie przepływu krzyżowego w czasie pomiaru jest zilustrowane czarną linią. Szczyt pustki po około 5,9 minutach jest podświetlony na szaro. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

figure-results-4
Rysunek 4: Nałożenie uzyskanego średniego rozkładu wielkości cząstek (kolor czerwony) nieznanej próbki AuNP i zastosowanej liniowej funkcji kalibracyjnej (linia przerywana). Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

pkt.
KomponentNr CASWaga (%)
WodaNr kat. 7732-18-588,8
9-kwas oktadecenowy (Z)-, związek z 2,2',2''-nitrolotris[etanol](1:1)2717-15-93.8
Węglan sodu497-19-82.7
Alkohole, C12-14-wtórne, etoksylowane84133-50-61.8
Tetrasodowy EDTA64-02-81.4
Glikol polietylenowyNr kat. 25322-68-30,9
Oleinian sodu143-19-10,5
Wodorowęglan sodu144-55-80,1

Tabela 1: Lista składników mieszaniny środków powierzchniowo czynnych użytej do przygotowania eluentu (zobacz również Tabelę materiałów).

szt. TGL pkt.
Parametry AF4-UV-visjednostkawartość
Grubość podkładki dystansowejμm350
Natężenie przepływu detektoraml min-10,5
Natężenie przepływu krzyżowegoml min-10 (stałe przez 8 min)
Natężenie przepływu ostrościml min-10
Czas opóźnienia / czas stabilizacjiMin0
Natężenie przepływu wtryskuml min-10,5
Czas przejściaMin0
Czas wtryskuMin0,1
Etap elucjiMin8
Czas kroku płukaniaMin0,1
Natężenie przepływu w kroku płukaniaml min-10,1
Objętość wtryskuμL10
Stężenie próbkimg L-1Rozdział 12,5
Typ membranyCeluloza regenerowana
Odcięcie masy cząsteczkowej membranykDa10
Eluentu0,025% (v/v) mieszanina środków powierzchniowo czynnych
Długość fali UV-visNmOkręg wyborczy 532
Wrażliwość na promieniowanie UV-vis-0,001

Tabela 2: Podsumowanie parametrów metody frakcjonowania AF4-UV-vis w celu przeprowadzenia bezpośredniego wtrysku bez użycia siły rozdzielającej.

szt. pkt. pkt. Rozdział TGL pkt.
Parametry AF4-UV-visjednostkawartość
Grubość podkładki dystansowejμm350
Natężenie przepływu detektoraml min-10,5
Natężenie przepływu krzyżowegoml min-11 (stała 60 min, 10 min liniowa)
Natężenie przepływu ostrościml min-11.3
Czas opóźnienia / czas stabilizacjiMincyfra arabska
Natężenie przepływu wtryskuml min-10,2
Czas przejściaMin0,2
Czas wtryskuMin5
Etap elucjiMin70 (60 min stała, 10 min liniowa)
Krok płukaniaMin9
Natężenie przepływu w kroku płukaniaml min-10,5
Objętość wtryskuμL50
Stężenie próbkimg L-1Rozdział 12,5
Typ membranyCeluloza regenerowana
Odcięcie masy cząsteczkowej membranykDa10
Eluentu0,025% (v/v) mieszanina środków powierzchniowo czynnych
Długość fali UV-visNmOkręg wyborczy 532
Wrażliwość na promieniowanie UV-vis-0,001

Tabela 3: Podsumowanie parametrów metody frakcjonowania AF4-UV-vis do przeprowadzenia przebiegu frakcjonowania z zastosowaniem przepływu krzyżowego jako siły separacji.

pkt. pkt. pkt. pkt. pkt. pkt. punktu pkt. pkt. pkt. pkt. pkt. pkt. pkt. pkt.
Wzorzec kalibracjiŚrodek zamykającyŚrednia wielkość (TEM) (nm)CV (średnia wielkość TEM) (%)Potencjał Zeta (mV)SD (potencjał zeta) (mV)Promień hydrodynamiczny (DLS) (nm)SD (promień hydrodynamiczny) (nm)PdiSD (PDI)
AuNP 20 nmCytrynian20,1≤ 8-48,91,5Godzina 10,950,120,0820,009
AuNP 40 nmCytrynian40,8≤ 8-30,41,0Godzina 20.300,130,1270,006
AuNP 80 nmCytrynian79,2≤ 8-51,51.3Dnia 38,850,230,1380,013
AuNP 100 nmCytrynian102,2≤ 8-50,90,9Godzina 52,300,370,0780,009

Tabela 4: Podsumowanie parametrów fizykochemicznych zastosowanych wzorców kalibracji AuNP, w tym czynnika zamykającego, średniej wielkości TEM, potencjału Zeta wyznaczonego w natywnej zawiesinie, jak również promienia hydrodynamicznego DLS i wskaźnika polidyspersyjności (PDI) wyznaczonego w eluencie.

TGL zł TGL TGL Rozdział TGL TGL szt. Nasion Pręty szt. szt. TGL szt. TGL TGL szt. pkt. TGL TGL szt.
Wzorzec kalibracjibiegaćCzas retencji przy maksimum szczytu (min)Czas retencji netto przy maksimum szczytu (min)Średni czas retencji netto (min)SD (%) (czas retencji netto)SD (min) (czas retencji netto)
AuNP 20 nm117 368Z dnia 11 46811.561.020.12
cyfra arabska17.40911 509
317.58911 689
AuNP 40 nm1Dnia 25,31619 41619.490.680.13
cyfra arabskaO godz. 25.32godz. 19.42
325 54819.648
AuNP 80 nm142 095Klasa 36,19536.290.230.08
cyfra arabska42 219Klasa 36 319
342 257Klasa 36 357
AuNP 100 nm150,97545 07545.060.070.03
cyfra arabska50,92445.024
350,98645.086

Tabela 5: Czasy retencji wzorców kalibracji AuNP przy odpowiednim maksimum piku UV-Vis wyprowadzone z odpowiednich fraktogramów AF4-UV-vis przy użyciu metody opisanej w Tabeli 3.

TGL TGL szt. zł jedn. TGL TGL szt. zł szt. TGL zł TGL zł
AlicytatbiegaćMaksymalny czas retencji (min)Średni czas retencji przy maksimum szczytu (min)Czas retencji netto przy maksimum szczytu (min)Czas przechowywania SD (%)Promień hydrodynamiczny (nm)Odzysk (%)
1132.68932.70Z dnia 26 7890.0729.0385.34
cyfra arabska32 687Z dnia 26 787
3Nr kat. 32 719Nr kat. 26.819
2132 98933.0827.0890.3729.4981.73
cyfra arabska33 073Rozdział 27.173
333 187Z dnia 27 287
3133 05333.14Godzina 27 1530.4929.5682.14
cyfra arabskaNr kat. 33.071Z dnia 27 171
3Klasa 33 291Z dnia 27 391

Tabela 6: Podsumowanie czasów retencji przy odpowiednim maksimum piku UV-Vis, promień hydrodynamiczny obliczony na podstawie zewnętrznej kalibracji rozmiaru (Rysunek 2) oraz wskaźnik odzysku nieznanej próbki AuNP uzyskanej z analizy AF4-UV-vis.

Dyskusja

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Rozmiar hydrodynamiczny nieznanego AuNP został dokładnie oceniony za pomocą AF4 sprzężonego z detektorem UV-vis przy użyciu dobrze zdefiniowanych standardów wielkości AuNP w zakresie od 20 nm do 100 nm. Opracowana metoda AF4 została zoptymalizowana przy użyciu stałego profilu przepływu krzyżowego w celu ustalenia liniowej zależności między zmierzonym czasem retencji a rozmiarem AuNP, umożliwiając w ten sposób proste określenie wielkości na podstawie analizy regresji liniowej. Szczególny nacisk położono również na osiągnięcie wystarczająco wysokich wskaźników odzysku, które wskazują na brak znacznych strat próbki podczas frakcjonowania, oraz na to, aby opracowana metoda AF4, obejmująca zastosowany eluent i membranę, dobrze pasowała do wszystkich frakcjonowanych próbek AuNP.

Opracowanie metody jest prawdopodobnie najbardziej krytycznym krokiem w AF4 i kilka parametrów, w tym wymiary kanału, parametry przepływu, a także eluent, membrana, wysokość przekładki, a nawet właściwości próbki, muszą być brane pod uwagę, aby poprawić frakcjonowanie w danym oknie czasowym elucji. Celem tego akapitu jest przeprowadzenie czytelnika przez krytyczne kroki, które zostały zoptymalizowane w celu pomyślnego określenia wielkości omawianej tutaj nieznanej próbki AuNP. Bardziej szczegółowy opis tego, jak ogólnie opracować metodę AF4, odsyłam czytelnika do sekcji AF4 w dokumencie "ISO/TS21362:2018 – Nanotechnologie – Analiza nanoobiektów z wykorzystaniem asymetrycznego przepływu i frakcjonowania w polu odśrodkowym"25. Po bliższym przyjrzeniu się zastosowanym warunkom frakcjonowania podanym w tabeli 3, pierwszym krytycznym krokiem jest wprowadzenie i rozluźnienie próbki AuNP w kanale AF4. Ten etap jest regulowany przez przepływ iniekcji, przepływ skupienia i przepływ krzyżowy, których wzajemne oddziaływanie zmusza próbkę do umieszczenia blisko powierzchni membrany i skoncentrowania jej w wąskim paśmie w pobliżu portu iniekcyjnego kanału AF4, zasadniczo określając punkt początkowy frakcjonowania. Konieczne jest odpowiednie rozluźnienie próbki, ponieważ na tym etapie składniki próbki o różnych rozmiarach znajdują się na różnych wysokościach kanału AF4, zapewniając w ten sposób podstawę do udanego frakcjonowania według wielkości. Niepełna relaksacja próbki jest zwykle widoczna jako zwiększona powierzchnia piku pustki wynikająca z niezatrzymanych (tj. niezrelaksowanych) składników próbki. Efekt ten można złagodzić poprzez wydłużenie czasu iniekcji i/lub zastosowanego natężenia przepływu krzyżowego. Oba parametry wymagają jednak starannej optymalizacji, szczególnie w przypadku próbek, które są podatne na aglomerację i adsorpcję na membranie AF4 i mogą być monitorowane za pomocą odpowiednich współczynników odzysku uzyskanych dla różnych ustawień parametrów36,37. Zastosowany czas iniekcji wynoszący 5 minut wraz z natężeniem przepływu krzyżowego 1,0 mL∙min-1 ujawnił wskaźniki odzysku >80% dla wszystkich próbek AuNP i znikomą powierzchnię piku pustego, co wskazuje na bliskie optymalnym warunkom relaksacji. Po wystarczającym rozluźnieniu próbki AuNP zatrzymano przepływ ogniskowania i zainicjowano transport próbki wzdłuż długości kanału AF4 do odpowiedniego detektora UV-vis, co stanowiło drugi krytyczny krok. W celu zapewnienia wystarczająco wysokiej mocy frakcjonowania w rozsądnych czasach analiz zastosowano stałe natężenie przepływu krzyżowego 1,0 ml∙min-1 przez 30–50 minut (w zależności od odpowiedniego wzorca frakcjonowanego rozmiaru AuNP), a następnie 10-minutowy liniowy zanik przepływu krzyżowego przy natężeniu przepływu detektora 0,5 mL.min-1. Zastosowanie stałego profilu przepływu krzyżowego w poprzek separacji wszystkich wzorców wielkości AuNP ujawniło liniową zależność między czasem retencji a rozmiarem AuNP zgodnie z teorią FFF22, umożliwiając w ten sposób określenie wielkości nieznanej próbki AuNP za pomocą prostej analizy regresji liniowej. Jednak profile inne niż stały przepływ krzyżowy zostały również wykorzystane do wymiarowania nanocząstek, co ostatecznie doprowadziło do nieliniowej zależności między czasem retencji a wielkością cząstek38,39. Ponadto oznaczanie wielkości w AF4 przy użyciu dobrze zdefiniowanych wzorców wielkości nie ogranicza się do AuNP, ale może być również stosowane do nanocząstek o innych rozmiarach i składzie pierwiastkowym (np. nanocząstki srebra38,40 lub krzemionki41,42). Ponadto, podczas pracy z rozcieńczonymi próbkami, ICP-MS jest bardzo czułym detektorem elementarnym, który może być sprzężony z AF4, co zwiększa wszechstronność tego podejścia analitycznego do wymiarowania dużej różnorodności nanocząstek w zawiesinie.

Pomimo szerokiego zastosowania, zewnętrzna kalibracja rozmiaru przy użyciu dobrze zdefiniowanych standardów rozmiaru w AF4 ma pewne cechy szczególne, które należy wziąć pod uwagę podczas korzystania z niego w celu dokładnego wymiarowania nieznanych próbek. Przede wszystkim w dużym stopniu opiera się na zastosowaniu porównywalnych warunków podczas frakcjonowania odpowiednich wzorców wielkości i rzeczywistej próbki. W przedstawionym tutaj przypadku obowiązkowe jest zatem, aby zarówno wzorce wielkości AuNP, jak i nieznana próbka AuNP były frakcjonowane przy użyciu tej samej metody AF4, a także tego samego eluentu i tej samej membrany, co sprawia, że podejście to jest dość mało elastyczne. Ponadto, nie mając pod ręką detektorów wrażliwych na rozmiar, np. rozpraszania światła (MALS i DLS), trudno jest określić, czy dana metoda AF4 wykorzystująca wzorce wielkości działa wystarczająco dobrze, czy nie. Jest to szczególnie prawdziwe w przypadku nieznanych próbek, które wykazują bardzo szeroki rozkład wielkości, gdzie nie jest jasne, czy wszystkie składniki próbki przebiegają zgodnie z normalnym wzorcem elucji: frakcjonowanie od mniejszych do większych cząstek, czy też większe składniki próbki już eluują w trybie steryczno-hiperwarstwowym, co może potencjalnie koeluować z mniejszymi składnikami próbki43,44. Ponadto, mimo że teoria FFF podkreśla, że AF4 rozdziela się wyłącznie na podstawie różnic w rozmiarach hydrodynamicznych, przy czym cząstki są uważane za masy punktowe bez żadnych interakcji z ich otoczeniem22, rzeczywistość mówi co innego, ponieważ oddziaływania cząstka-cząstka i cząstka-membrana (takie jak przyciąganie/odpychanie elektrostatyczne lub przyciąganie van-der-Waalsa) mogą odgrywać znaczącą rolę i mogą potencjalnie wprowadzać mierzalne odchylenie do określania wielkości za pomocą zewnętrznych Kalibracja rozmiaru45,46. W związku z tym zaleca się stosowanie wzorców wielkości, które idealnie pasują do składu i właściwości powierzchniowych (potencjał Zeta) cząstki będącej przedmiotem zainteresowania40,42 lub, jeśli nie są one dostępne, przynajmniej stosowanie dobrze scharakteryzowanych wzorców wielkości cząstek (np. cząstki polistyrenu lateksowego) i staranną ocenę ich porównywalności z cząstką będącą przedmiotem zainteresowania, zwłaszcza pod względem ich powierzchniowego potencjału Zeta w danym środowisku, w którym przeprowadza się analizę41,47.

Wszechstronność AF4 jest często uważana za jego największą zaletę, ponieważ oferuje zakres zastosowań, który wykracza poza większość innych popularnych technik wymiarowania w tej dziedzinie 22,48,49. Jednocześnie, ze względu na związaną z tym przypuszczalną złożoność, może być również uważany za jego najważniejszą wadę, zwłaszcza w przypadku szybkich i pozornie łatwych w użyciu technik wymiarowania, takich jak DLS, Nanoparticle Tracking Analysis lub ICP-MS dla pojedynczych cząstek. Niemniej jednak, gdy spojrzymy na AF4 z perspektywy tych popularnych technik wymiarowania, staje się jasne, że wszystkie techniki mają swoje wady i zalety, ale wszystkie z nich przyczyniają się do bardziej wszechstronnego zrozumienia fizykochemicznej natury nanocząstek i dlatego powinny być uważane za komplementarne, a nie konkurencyjne.

Przedstawiona tutaj standardowa procedura operacyjna (SOP) podkreśla doskonałą przydatność AF4-UV-vis z zewnętrzną kalibracją wielkości do wymiarowania nieznanej próbki AuNP w zawiesinie i ostatecznie została zastosowana jako zalecana wytyczna do analizy AF4 nieznanej próbki AuNP w ramach międzynarodowego porównania międzylaboratoryjnego (ILC), które przeprowadzono w ramach projektu Horyzont 2020. ACEnano (wyniki tego ILC będą przedmiotem przyszłej publikacji). Protokół ten wpisuje się zatem w zachęcające i trwające międzynarodowe wysiłki na rzecz walidacji i standaryzacji metodologii AF4 25,50,51,52, podkreślając obiecujący potencjał AF4 w dziedzinie charakteryzacji nanocząstek.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszyscy autorzy tego manuskryptu są pracownikami firmy Postnova Analytics GmbH, której produkty są wykorzystywane w tym protokole.

Podziękowania

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy chcieliby podziękować całemu konsorcjum ACEnano za owocne dyskusje na wszystkich etapach przygotowania przedstawionego tutaj protokołu. Autorzy doceniają również dofinansowanie z programu Unii Europejskiej Horyzont 2020 (H2020) w ramach umowy o grant nr 720952 w ramach projektu ACEnano.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
0,1 &mikro; m Filtry membranowe (hydrofilowe PVDF)Postnova Analytics GmbHZ-FIL-TEF-002Służy do filtracji roztworów wodnych
0,22 i mikro; m Filtr strzykawkowy PVDF (d = 33 mm)Merck MilliporeDurapore MillexSłuży do filtracji pipet o regulowanej objętości NovaChem100
(1000 µ L)Eppendorf AGResearch PlusSłuży do przygotowania rozcieńczonych zawiesin AuNP
Kartridż AF4Postnova Analytics GmbHAF2000 MF - Kanał analityczny AF4Komponent konfiguracji AF2000 MF - MultiFlow FFF, który w manuskrypcie jest opisany jako AF4-system
AF4 Membrana - Regenerowana celuloza (10 kDa MWCO)Postnova Analytics GmbHZ-AF4-MEM-612-10KDElement zestawu AF2000 MF - MultiFlow FFF, który w manuskrypcie jest opisany jako system AF4
Waga analityczna (dokładność 0,1 mg)SartoriusENTRIS124I-1SSłuży do ważenia granulek SDS i NaOH do przygotowania roztworu czyszczącego
Automatyczny podajnik próbekPostnova Analytics GmbHPN5300Element zestawu AF2000 MF - MultiFlow FFF, który jest opisany jako system AF4 w manuskrypcie
Piece kanałowejPostnova Analytics GmbHPN4020Komponent konfiguracji AF2000 MF - MultiFlow FFF, który w manuskrypcie jest opisany jako system AF4
Moduł CrossflowPostnova Analytics GmbHAF2000 MF Moduł sterującyAF2000 MF - MultiFlow FFF, który jest opisany jako system AF4 w manuskrypcie
Jednorazowe końcówki do pipet (1000 µ L)Eppendorf AGep T.I.P.SSłuży do przygotowania rozcieńczonych zawiesin AuNP
Kolby (np. o objętości 2 litrów)neoLab1-0199Używany do przechowywania eluentu
Pompa ostrościPostnova Analytics GmbHPN1131Składnik zestawu AF2000 MF - MultiFlow FFF, który jest opisany jako system AF4 w manuskrypcie
Szklane fiolki (np. objętość 1,5 ml)Postnova Analytics GmbHVIA-002Służy do przechowywania próbek
Złote wzorce wielkości nanocząstek (20 nm, 40 nm, 80 nm, 100 nm)Postnova Analytics GmbHNovaCal Gold50 mg L-1 każdy, służy do ustalenia funkcji kalibracji wielkości
Mieszadło magnetyczneIKAVIBRAX-VXRSłuży do przyspieszania rozpuszczania granulek SDS i NaOH w komputerze
osobistym (PC)Technologies/Jednostka do sterowania przebiegami AF4, nagrywania i oceny zebranych danych, w przypadku niezbędnych wymagań sprzętowych i programowych czytnik jest odsyłany do instrukcji Postnova AF2000
Środki ochrony indywidualnej (rękawice, fartuch laboratoryjny, okulary itp.)//Zgodnie z odpowiednim laboratorium" s zasady bezpieczeństwa pracy z chemikaliami, w tym z nanomateriałami inżynieryjnymi
Zakrętka do szklanych fiolek (np. o objętości 1,5 ml)Postnova Analytics GmbHZ-VIA-09150868Służy do przechowywania próbek
Dodecylosiarczan sodu (SDS), ≥ 99 %, Klasa bibułyCarl Roth GmbH & Co KG2326.1Stosowany do przygotowania roztworu czyszczącego
Granulki wodorotlenku sodu (NaOH), ≥ 98 %, p.aCarl Roth GmbH & Co KG6771.1Służy do przygotowania roztworu czyszczącego
Pakiet oprogramowania do sterowania i akwizycji danychPostnova Analytics GmbHNovaFFF AF2000 OprogramowanieOprogramowanie do wykonywania przebiegów Af4 i akwizycji danych, w przypadku niezbędnych wymagań sprzętowych i programowych czytnik jest odsyłany do instrukcji Postnova AF2000
Pakiet oprogramowania do oceny danychPostnova Analytics GmbHOprogramowanieNovaAnalysisOprogramowanie do oceny danych AF4, w przypadku niezbędnych wymagań sprzętowych i programowych czytelnik jest odsyłany do instrukcji obsługi Postnova NovaAnalysis
Pakiet oprogramowania do końcowego przetwarzania danychOriginLab CorporationOrigin 2019Używany do końcowego przetwarzania danych
Solvent DegasserPostnova Analytics GmbHPN7520Komponent konfiguracji AF2000 MF - MultiFlow FFF, który w manuskrypcie
jest opisany jako system AF4Solvent SelectorPostnova Analytics GmbHPN7310Składnik konfiguracji AF2000 MF - MultiFlow FFF, który jest opisany jako system AF4 w manuskrypcie
Solvent OrganizerPostnova Analytics GmbHPN7140Składnik konfiguracji AF2000 MF - MultiFlow FFF, który jest opisany jako system AF4 w manuskrypcie
Mieszanina środków powierzchniowo czynnychPostnova Analytics GmbHNovaChem100Mieszanina różnych środków powierzchniowo czynnych i soli stosowanych do przygotowania eluentu
Pompa końcówkowaPostnova Analytics GmbHPN1130Składnik konfiguracji AF2000 MF - MultiFlow FFF, który jest opisany jako system AF4 w manuskrypcie
Nieznana próbka AuNPBBI SolutionsEM. GC6060 nm Próbka AuNP używana do oznaczania wielkości za pomocą funkcji kalibracji wielkości
Detektor UV-visPostnova Analytics GmbHDetektor UV-vis PN3211Do dalszego sprzężenia z systemem AF4
Jednostka filtracji próżniowejfiltracji eluentówPostnova Analytics GmbHSłuży do zapewnienia niskiej zawartości cząstek tła i usuwania rozpuszczonego powietrza w stosowanych eluentach w celu zapewnienia optymalnych warunków
VortexIKAVortex Genie 2Służy do homogenizacji rozcieńczonych zawiesin AuNP
System oczyszczania wodyMerck MilliporeMilli-Q Integral 5Służy do wytwarzania wody ultraczystej (UPW, 18.2 MΩ cm rezystywności) do przygotowania roztworu czyszczącego, eluentów i rozcieńczania zawiesin AuNP
konfiguracji z wodą ultranową.Dell System frakcjonowania AF4

Bibliografia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Dykman, L. A., Khlebtsov, N. G. Gold nanoparticles in biology and medicine: recent advances and prospects. Acta Naturae. 3 (2), 34-55 (2011).
  2. Wagner, F. E., et al. Before striking gold in gold-ruby glass. Nature. 407 (6805), 691-692 (2000).
  3. Hunt, L. B. The true story of Purple of Cassius. Gold Bulletin. 9 (4), 134-139 (1976).
  4. Higby, G. J. Gold in medicine. Gold Bulletin. 15 (4), 130-140 (1982).
  5. Faraday, M. X. The Bakerian Lecture. -Experimental relations of gold (and other metals) to light. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. 147, 145-181 (1857).
  6. Borries, B. v, Kausche, G. A. Übermikroskopische Bestimmung der Form und Größenverteilung von Goldkolloiden. Kolloid-Zeitschrift. 90 (2), 132-141 (1940).
  7. Turkevich, J., Hillier, J. Electron Microscopy of Colloidal Systems. Analytical Chemistry. 21 (4), 475-485 (1949).
  8. Homberger, M., Simon, U. On the application potential of gold nanoparticles in nanoelectronics and biomedicine. Philosophical Transactions of the Royal Society A: Mathematical, Physical, and Engineering Sciences. 368 (1915), 1405-1453 (2010).
  9. Cordeiro, M., Ferreira Carlos, F., Pedrosa, P., Lopez, A., Baptista, P. V. Gold Nanoparticles for Diagnostics: Advances towards Points of Care. Diagnostics. 6 (4), Basel, Switzerland. 43(2016).
  10. Vines, J. B., Yoon, J. H., Ryu, N. E., Lim, D. J., Park, H. Gold Nanoparticles for Photothermal Cancer Therapy. Frontiers in Chemistry. 7, 167(2019).
  11. Dreaden, E. C., Austin, L. A., Mackey, M. A., El-Sayed, M. A. Size matters: gold nanoparticles in targeted cancer drug delivery. Therapeutic Delivery. 3 (4), 457-478 (2012).
  12. Safh, B. P., Antosh, M. Effect of size on gold nanoparticles in radiation therapy: Uptake and survival effects. Journal of Nanomedicine. 2 (1), 1013-1020 (2019).
  13. Haiss, W., Thanh, N. T. K., Aveyard, J., Fernig, D. G. Determination of size and concentration of gold nanoparticles from UV-Vis spectra. Analytical Chemistry. 79 (11), 4215-4221 (2007).
  14. Zheng, T., Bott, S., Huo, Q. Techniques for accurate sizing of gold nanoparticles using dynamic light scattering with particular application to chemical and biological sensing based on aggregate formation. ACS Applied Materials & Interfaces. 8 (33), 21585-21594 (2016).
  15. Liu, J., Murphy, K. E., MacCuspie, R. I., Winchester, M. R. Capabilities of single particle inductively coupled plasma mass spectrometry for the size measurement of nanoparticles: a case study on gold nanoparticles. Analytical Chemistry. 86 (7), 3405-3414 (2014).
  16. Contado, C., Argazzi, R. Size sorting of citrate reduced gold nanoparticles by sedimentation field-flow fractionation. Journal of Chromatography. A. 1216 (52), 9088-9098 (2009).
  17. Calzolai, L., Gilliland, D., Garcìa, C. P., Rossi, F. Separation and characterization of gold nanoparticle mixtures by flow-field-flow fractionation. Journal of Chromatography. A. 1218 (27), 4234-4239 (2011).
  18. Schmidt, B., et al. Quantitative characterization of gold nanoparticles by field-flow fractionation coupled online with light scattering detection and inductively coupled plasma mass spectrometry. Analytical Chemistry. 83 (7), 2461-2468 (2011).
  19. Mekprayoon, S., Siripinyanond, A. Performance evaluation of flow field-flow fractionation and electrothermal atomic absorption spectrometry for size characterization of gold nanoparticles. Journal of Chromatography. A. , (2019).
  20. López-Sanz, S., Rodríguez Fariñas, N., Zougagh, M., Rios, A., Rodriguez Martín-Doimeadios, R. C. C. AF4-ICP-MS as a powerful tool for the separation of gold nanorods and nanospheres. Journal of Analytical Atomic Spectrometry. , Advance Article (2020).
  21. Giddings, C. J. A new separation concept based on a coupling of concentration and flow nonuniformities. Separation Science. 1 (1), 123-125 (1966).
  22. Schimpf, M. E., Caldwell, K., Giddings, J. C. Field-flow fractionation handbook. , Wiley-Interscience. (2000).
  23. Contado, C. Field flow fractionation techniques to explore the "nano-world". Analytical and Bioanalytical Chemistry. 409 (10), 2501-2518 (2017).
  24. Wahlund, K. G., Giddings, J. C. Properties of an asymmetrical flow field-flow fractionation channel having one permeable wall. Analytical Chemistry. 59 (9), 1332-1339 (1987).
  25. ISO. ISO /TS 21362:2018 Nanotechnologies - of nano-objects using asymmetrical-flow and centrifugal field-flow fractionation. ISO. , (2018).
  26. Gogos, A., Kaegi, R., Zenobi, R., Bucheli, T. D. Capabilities of asymmetric flow field-flow fractionation coupled to multi-angle light scattering to detect carbon nanotubes in soot and soil. Environmental Science: Nano. 6 (1), 584-594 (2014).
  27. Müller, D., et al. Integration of inverse supercritical fluid extraction and miniaturized asymmetrical flow field-flow fractionation for the rapid analysis of nanoparticles in sunscreens. Analytical Chemistry. 90 (5), 3189-3195 (2018).
  28. Capomaccio, R., et al. Gold nanoparticles increases UV and thermal stability of human serum albumin. Biointerphases. 11 (4), (2016).
  29. Levak, M., et al. Effect of protein corona on silver nanoparticle stabilization and ion release kinetics in artificial seawater. Environmental Science & Technology. 51 (3), 1259-1266 (2017).
  30. Mehn, D., et al. Larger or more? Nanoparticle characterisation methods for recognition of dimers. RSC Advances. 7 (44), 27747-27754 (2017).
  31. Sogne, V., Meier, F., Klein, T., Contado, C. Investigation of zinc oxide particles in cosmetic products by means of centrifugal and asymmetrical flow field-flow fractionation. Journal of Chromatography. A. 1515, 196-208 (2017).
  32. Cumberland, S. A., Lead, J. R. Particle size distributions of silver nanoparticles at environmentally relevant conditions. Journal of Chromatography. A. 1216 (52), 9099-9105 (2009).
  33. de Carsalade du pont, V., et al. Asymmetric field flow fractionation applied to the nanoparticles characterization: Study of the parameters governing the retention in the channel. International Congress of Metrology. , (2019).
  34. Loeschner, K., et al. Optimization and evaluation of asymmetric flow field-flow fractionation of silver nanoparticles. Journal of Chromatography. A. 1272, 116-125 (2013).
  35. Mudalige, T. K., Qu, H., Linder, S. W. An improved methodology of asymmetric flow field flow fractionation hyphenated with inductively coupled mass spectrometry for the determination of size distribution of gold nanoparticles in dietary supplements. Journal of Chromatography. A. 1420, 92-97 (2015).
  36. Dubascoux, S., Von Der Kammer, F., Le Hécho, I., Gautier, M. P., Lespes, G. Optimisation of asymmetrical flow field flow fractionation for environmental nanoparticles separation. Journal of Chromatography. A. 1206 (2), 160-165 (2008).
  37. Hagendorfer, H., et al. Application of an asymmetric flow field flow fractionation multi-detector approach for metallic engineered nanoparticle characterization - and limitations demonstrated on Au nanoparticles. Analytica Chimica Acta. 706 (2), 367-378 (2011).
  38. Geiss, O., Cascio, C., Gilliland, D., Franchini, F., Barrero-Moreno, J. Size and mass determination of silver nanoparticles in an aqueous matrix using asymmetric flow field flow fractionation coupled to inductively coupled plasma mass spectrometer and ultraviolet-visible detectors. Journal of Chromatography. A. 1321, 100-108 (2013).
  39. Makselon, J., Siebers, N., Meier, F., Vereecken, H., Klumpp, E. Role of rain intensity and soil colloids in the retention of surfactant-stabilized silver nanoparticles in soil. Environmental Pollution. 238, 1027-1034 (2018).
  40. Bolea, E., Jiménez-Lamana, J., Laborda, F., Castillo, J. R. Size characterization and quantification of silver nanoparticles by asymmetric flow field-flow fractionation coupled with inductively coupled plasma mass spectrometry. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 401 (9), 2723-2732 (2011).
  41. Barahona, F., et al. Simultaneous determination of size and quantification of silica nanoparticles by asymmetric flow field-flow fractionation coupled to ICPMS using silica nanoparticles standards. Analytical Chemistry. 87 (5), 3039-3047 (2015).
  42. Aureli, F., D'Amato, M., Raggi, A., Cubadda, F. Quantitative characterization of silica nanoparticles by asymmetric flow field flow fractionation coupled with online multiangle light scattering and ICP-MS/MS detection. Journal of Analytical Atomic Spectrometry. 30, 1266-1273 (2015).
  43. Myers, M. N., Giddings, J. C. Properties of the transition from normal to steric field-flow fractionation. Analytical Chemistry. 54 (13), 2284-2289 (1982).
  44. Giddings, J. C. Retention (steric) inversion in field-flow fractionation: practical implications in particle size, density and shape analysis. Analyst. 118 (12), 1487-1494 (1993).
  45. Wahlund, K. G. Flow field-flow fractionation: Critical overview. Journal of Chromatography. A. 1287, 97-112 (2013).
  46. Bendixen, N. L., Adlhart, S., Lattuada, C., Ulrich, A. Membrane-particle interactions in an asymmetric flow field flow fractionation channel studied with titanium dioxide nanoparticles. Journal of Chromatography A. 1334, 92-100 (2014).
  47. Qu, H., Quevedo, I. R., Linder, S. W., Fong, A., Mudalige, T. K. Importance of material matching in the calibration of asymmetric flow field-flow fractionation: material specificity and nanoparticle surface coating effects on retention time. Journal of Nanoparticle Research. 18 (10), 292(2016).
  48. Giddings, J. C. Field-flow fractionation: analysis of macromolecular, colloidal, and particulate materials. Science. 260 (5113), 1456-1465 (1993).
  49. Cascio, C., Gilliland, D., Rossi, F., Calzolai, L., Contado, C. Critical experimental evaluation of key methods to detect, size and quantify nanoparticulate silver. Analytical Chemistry. 86 (24), 12143-12151 (2014).
  50. Caputo, F., et al. Measuring particle size distribution by asymmetric flow field flow fractionation: a powerful method for the pre-clinical characterisation of lipid-based nanoparticles. Molecular Pharmaceutics. 16 (2), 756-767 (2019).
  51. Parot, J., Caputo, F., Mehn, D., Hackley, V. A., Calzolai, L. Physical characterization of liposomal drug formulations using multi-detector asymmetrical-flow field flow fractionation. Journal of Controlled Release: Official Journal of the Controlled Release Society. 320, 495-510 (2020).
  52. ASTM. ASTM WK68060 - New Test Method for Analysis of Liposomal Drug Formulations using Multidetector Asymmetrical-Flow Field-Flow Fractionation (AF4). ASTM. , (2019).

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Wyznaczanie rozmiaru nanocz stek z otazewn trzna kalibracja rozmiarusystem AF4 UV visrozk ad wielko ci cz stekpomiar promienia hydrodynamicznegoobliczanie odzysku masywzorce rozmiaru nanocz stekprotok kwalifikacji systemuschemat analizy danych

Powiązane artykuły