Opisujemy technikę intubacji dotchawiczej u nowonarodzonych królików po cewnikowaniu przełyku za pomocą sondy żołądkowej.
Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.
Artykuł metodologiczny
Ślepa intubacja dotchawicza u nowonarodzonych królików
W tym artykule
Podsumowanie
Streszczenie
Nowonarodzony królik jest użytecznym modelem zwierzęcym do różnych patologii i procedur. Udrażnianie dróg oddechowych królika jest złożone ze względu na jego cechy anatomiczne, co jest jeszcze bardziej skomplikowane w przypadku noworodka. Spośród różnych metod zaawansowanego udrażniania dróg oddechowych, intubacja dotchawicza jest mniej agresywna niż tracheostomia i jest bardziej wykonalna niż leczenie nadgłośniowe, biorąc pod uwagę brak urządzeń nadgłośniowych o tak małych rozmiarach. Ponieważ bezpośrednia wizualizacja głośni jest bardzo trudna u zwierząt tej wielkości, ten ślepy model intubacji jest przedstawiany jako skuteczna alternatywa, szczególnie w przypadku eksperymentów wymagających przedłużonego znieczulenia. Tą metodą przeprowadziliśmy intubacje na ślepo z 90% skutecznością.
Wprowadzenie
Specyficzna anatomia układu oddechowego królika komplikuje intubację dotchawiczą. Jama ustna jest głęboka i wąska, z ograniczonym zakresem otwierania ust i stosunkowo dużym językiem, co utrudnia bezpośrednią wizualizację krtani nawet przy użyciu laryngoskopu1,2. Co więcej, intubacja nowonarodzonego królika, który jest 10-20 razy mniejszy niż u dorosłego osobnika, jest jeszcze bardziej wymagającą procedurą. Oprócz tych cech anatomicznych króliki są podatne na skurcz krtani wtórny do manipulacji dróg oddechowych.
Kilka technik intubacji zostało opisanych w literaturze, takich jak laryngoskopowa intubacja tchawicy, ślepa intubacja, intubacja otoskopowa, intubacja wsteczna, intubacja endoskopowa, tracheostomia i wentylacja urządzenia nadgłośniowego3,4,5,6,7,8,9. Wszystkie te techniki zostały z powodzeniem przeprowadzone na dorosłych królikach; Istnieje jednak niewiele publikacji dotyczących zaawansowanego udrażniania dróg oddechowych u nowonarodzonego królika10. Jedno z badań opisuje wykonywanie tracheostomii u zwierząt w tym wieku w celu oceny mechaniki oddychania i objętości płuc, chociaż jest to agresywna i nieodwracalna technika11. Ta metoda intubacji dotchawiczej okazała się skuteczną i tanią metodą udrażniania dróg oddechowych u nowonarodzonych królików.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Protokół
Procedura intubacji opisana poniżej została zatwierdzona przez Komitet ds. Opieki i Użytkowania Zwierząt Uniwersytetu w Barcelonie (CEEA 180/19)
1. Przygotowanie eksperymentalne
- Zaopatrz się w następujące materiały: rurkę dotchawiczą z polichlorku winylu (PVC) o średnicy 2 mm, 6 francuskich (Fr) poliuretanowych rurek do karmienia, kleszcze do preparowania z płaską i szeroką końcówką oraz sterylny smar (Rysunek 1).
- Podczas procesu intubacji i zabiegu chirurgicznego należy zachować sterylne warunki.
2. Znieczulenie
- Znieczulić zwierzę 5 mg/kg ksylazyny i 25 mg/kg ketaminy podawanych razem domięśniowo w obszerny boczny mięsień czworogłowy uda. Agoniści receptorów alfa-2, tacy jak deksmedetomidyna, mogą być również stosowane zamiast ksylazyny.
- Odczekaj 3-5 minut, aby lek zaczął działać.
- Tę samą dawkę należy podawać aż do uzyskania głębokiego znieczulenia (ujemne odruchy pedałowe, powiekowe i rogówkowe). Idealnie byłoby, gdyby królik utrzymywał spontaniczny oddech aż do intubacji.
3. Intubacja dotchawicza
- Umieść królika na kocu termicznym w temperaturze 37 °C. Umieść zwierzę w pozycji leżącej grzbietowej z głową w przeprostze. Ustaw głowę tak prosto i w linii środkowej, jak to możliwe. Czterocentymetrowy zwój wykonany ze sterylnej gazy umieszczony w grzbietowej części szyi może być pomocny w osiągnięciu co najmniej 45° rozciągnięcia (Rysunek 2).
- Użyj kleszczy preparacyjnych z płaską i szeroką końcówką, aby otworzyć jamę ustną o szerokości około jednego centymetra. Używaj kleszczy z i szerokim końcem, aby uniknąć urazu jamy ustnej.
- Zmierz odległość między ustami a okolicą brzucha (pierwsze żebro). Wprowadzić nasmarowaną 6-francuską (Fr) poliuretanową rurkę żołądkową do wstępnie zmierzonego znaku (Rysunek 3-4).
- Przesuń rurkę do karmienia w lewo i przymocuj taśmą klejącą do pola operacyjnego.
- Wprowadzić rurkę intubacyjną z PVC o średnicy 2 mm, pokrytą sterylnym smarem, do znaku 3 cm.
- Jeśli wystąpią jakiekolwiek trudności z przesuwaniem rury, przesuń ją całkowicie i spróbuj ponownie, aż do uzyskania płynnego ślizgu. Ryzyko urazu krtani i nagłośni jest znaczne w przypadku wielokrotnych prób intubacji. Przymocuj rurkę za pomocą taśmy klejącej do pola operacyjnego (Rysunek 5-6).
- Podłącz rurkę dotchawiczą do respiratora z następującymi ustawieniami: Objętość oddechowa - 10 ml / kg; częstość oddechów: 40 oddechów/min; FiO2 100%, PEEP 6.
- Potwierdź prawidłowe położenie rurki poprzez wykrycie CO2 w wydychanym powietrzu (ETCO2), bezpośrednią wizualizację rozszerzania się klatki piersiowej i zaparowanie rurki. Pomocne może być również monitorowanie zwierzęcia za pomocą pulsoksymetrii i osłuchiwania płuc (Ryc. 7).
- Na zakończenie eksperymentu należy zastosować standaryzowany protokół eutanazji, który polega na dożylnym podaniu pentobarbitalu w dawce 120-240 mg/kg. Dawki należy powtarzać aż do ustania oddechu, braku odruchów i asystolii.
UWAGA: W eksperymentach chirurgicznych zwierzę jest żywe podczas procesu wentylacji i ostatecznie zostaje poddane eutanazji.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Wyniki
W laboratorium technikę tę wykonuje personel medyczny posiadający doświadczenie w eksperymentach z królikami nowozelandzkimi oraz wiedzę specjalistyczną w zakresie udrażniania dróg oddechowych u dzieci. Procedura została przeprowadzona przez jednego badacza u 10 zwierząt, przy czym ogólny wskaźnik sukcesu wyniósł 90%. Wcześniej inny badacz ćwiczył optymalizację zarówno ułożenia zwierzęcia, jak i prawidłowej długości fiksacji rurki. Żadne z zwierząt nie zostało intubowane do przełyku. Tylk...
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Dyskusja
Króliki są szeroko stosowane w eksperymentach na zwierzętach ze względu na ich dostępność, wysoki wskaźnik reprodukcji z krótkim czasem międzypokoleniowym i łatwą obsługę2. W naszym centrum wykorzystujemy 5-7-dniowe króliki nowozelandzkie (Oryctolagus cuniculus) jako model noworodka do badania neurologicznych następstw operacji pozaustrojowej na rozwijający się mózg. W związku z tym stosujemy zabiegi, które wymagają głębokiego znieczulenia i musimy stosować intubację dotchawiczą przez okr...
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Oświadczenia
Autorzy nie mają nic do ujawnienia.
Podziękowania
Ta praca była wspierana przez granty z Instituto de Salud Carlos III [PFIS2017-0224], "Beca Ruza" z Sociedad Española de Cuidados Intensivos Pediátricos oraz Vanderbilt Medical Scholars Program.
Sponsorzy nie byli zaangażowani w zbieranie, analizę ani interpretację danych.
Chcielibyśmy podziękować Isabel Salas za pomoc udzieloną w laboratorium zwierzęcym oraz Panu Carlesowi Fábredze i Pani Gemmie Fernandez-Asensio z Zespołu Techników Audiowizualnych ze Szpitala Sant Joan de Déu za ich wsparcie techniczne przy nagrywaniu i produkcji wideo.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Materiały
| Nazwa | Firma | Numer katalogowy | Komentarze |
|---|---|---|---|
| Rurka dotchawicza z polichlorku winylu (PVC) o średnicy 2 mm | Vygon | 520.20 | |
| 6 Francuska poliuretanowa rurka zasilająca | Vygon | 310.06 | |
| Znieczulenie (ketamina i ksylazyna) | |||
| Monitor wieloparametrowy Intellivue MP5 | Phillips | ||
| Kleszcze preparacyjne z gładką i szeroką końcówką | LensforVision | AK005 | |
| Sterylny smar (Silkospray) | Wentylator Rush | ||
| Servo 900c | Maquet |
Bibliografia
- Gilroy, B. A. Endotracheal intubation of rabbits and rodents. Journal of the American Veterinary Medical Association. 179 (11), 1295(1981).
- Graham, J. Common procedures in rabbits. The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 9 (2), 367-388 (2006).
- Fick, T. E., Schalm, S. W. A simple technique for endotracheal intubation in rabbits. Laboratory Animals. 21 (3), 265-266 (1987).
- Conlon, K. C., et al. Atraumatic endotracheal intubation in small rabbits. Laboratory Animal Science. 40 (2), 221-222 (1990).
- Johnson, D. H. Endoscopic intubation of exotic companion mammals. The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 13 (2), 273-289 (2010).
- Falcão, S. C., et al. Technique of blind tracheal intubation in rabbits (Oryctolagus cuniculi) supported by previous maneuver of esophageal cannulization. Acta Cirurgica Brasileira. 26 (5), 352-356 (2011).
- Miura, H., et al. Endotracheal intubation in rabbits. The Japanese Journal of Veterinary Anesthesiology. 19 (1), 25-29 (2012).
- Thompson, K. L., et al. Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter. Journal of Visualized Experiments. (129), (2017).
- Comolli, J., et al. Comparison of endoscopic endotracheal intubation and the v-gel supraglottic airway device for spontaneously ventilating New Zealand white rabbits undergoing ovariohysterectomy. Veterinary Record. , 1-8 (2020).
- Hua, S., et al. Effects of different ventilation strategies on lung injury in newborn rabbits. Pediatric Pulmonology. 47 (11), 1103-1112 (2012).
- Kitchen, M. J., et al. The role of lung inflation and sodium transport in airway liquid clearance during lung aeration in newborn rabbits. Pediatric Research. 73 (4-1), 443-449 (2012).
- Boon, M. S., et al. Tubeless tracheotomy for survival airway surgery in the leporine model. The Laryngoscope. 125 (3), 680-684 (2015).
- Dion, G. R., et al. Morbidity and mortality associated with preclinical tracheostomy models. The Laryngoscope. 128 (2), 68-71 (2018).
- Phaneuf, L. R., et al. Tracheal injury after endotracheal intubation and anesthesia in rabbits. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 45 (6), 67-72 (2006).
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Przedruki i uprawnienia
