$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
ES to użycie EF w celu kontrolowania komórek biologicznych i tkanek. Jego mechanizm opiera się na bodźcu fizycznym przekazywanym do komórki, gdy biomolekuły wewnątrz i wokół niej są wystawione na działanie generowanego zewnętrznie gradientu napięcia. Naładowane cząstki są zaangażowane w zorganizowany ruch regulowany prawem Coulomba, generując siły oporu na nienaładowane cząstki. Wynikający z tego przepływ płynu i rozkład ładunku zmieniają aktywność i funkcje komórki, takie jak adhezja, kurczenie się, migracja, orientacja, różnicowanie i proliferacja1, gdy komórka próbuje przystosować się do zmiany warunków mikrośrodowiskowych.
Ponieważ EF są kontrolowane, nieinwazyjne, niefarmakologiczne i wykazują skuteczny wpływ na podstawowe zachowanie komórek, ES jest cennym narzędziem dla inżynierii tkankowej i medycyny regeneracyjnej. Jest z powodzeniem stosowany do kierowania rozwojem neural2, skeletal3, mięsień sercowy4, bone5 i skin6. Ponadto, ponieważ wzmacnia jonoforezę7, jest stosowany jako alternatywa lub uzupełnienie leczenia konwencjonalnych farmakologicznych. Jego skuteczność w leczeniu bólu jest nadal przedmiotem dyskusji, ponieważ oczekuje się na wyższą jakość badań klinicznych8,9,10. Niemniej jednak nie zgłoszono żadnych działań niepożądanych i może to poprawić dobrostan pacjentów11,12,13,14,15.
Chociaż tylko badania kliniczne mogą wydać ostateczny werdykt co do skuteczności procedury, modele in vitro i in silico są niezbędne do opracowania przewidywalnego leczenia ES, ponieważ oferują one większą kontrolę nad szerszym zakresem warunków eksperymentalnych. Badane zastosowania kliniczne ES to regeneracja kości16,17, regeneracja znerwionych mięśni18,19, regeneracja aksonów po operacji20,21, pain relief22, gojenie się ran23,24,25 i dostarczanie leków jonoforetycznych 26. Aby urządzenia ES mogły być powszechnie stosowane we wszystkich możliwych zastosowaniach docelowych, badania kliniczne nie dostarczyły jeszcze silniejszych dowodów na skuteczne leczenie. Nawet w dziedzinach, w których zarówno badania in vivo na zwierzętach, jak i na ludziach konsekwentnie wykazują pozytywne wyniki, duża liczba zgłoszonych metod w połączeniu ze zbyt małą ilością wskazówek dotyczących wyboru między nimi i wysoką ceną zakupu zniechęca klinicystów do inwestowania w urządzenia ES27. Aby temu zaradzić, tkanka docelowa nie może być już traktowana jako skrzynka (limit eksperymentów in vivo), ale musi być postrzegana jako złożona synergia wielu podsystemów (Rysunek 1).
Na przestrzeni lat przeprowadzono wiele eksperymentów ES in vitro28,29,30,31,32,33,34. Większość z nich charakteryzuje ES tylko poprzez spadek napięcia między elektrodami podzielony przez odległość między nimi - przybliżone przybliżenie wielkości pola elektrycznego. Jednak samo pole elektryczne wpływa tylko na naładowane cząstki, a nie bezpośrednio na komórki. Ponadto, gdy między urządzeniem a ogniwami umieszczonych jest wiele materiałów, przybliżone przybliżenie może nie być utrzymane.
Lepsza charakterystyka sygnału wejściowego wymaga jasnego spojrzenia na to, w jaki sposób bodziec jest przekazywany do komórki. Główne metody dostarczania ES to sprzężenie bezpośrednie, pojemnościowe i indukcyjne35,36. Urządzenia do każdej metody różnią się typem elektrody (prętowa, płaska lub uzwojeniowa) i umiejscowieniem względem tkanki docelowej (w kontakcie lub izolowana)35. Urządzenia używane in vivo do dłuższych zabiegów muszą nadawać się do noszenia, dlatego elektrody i w większości przypadków źródło energii są wszczepiane lub mocowane do skóry jako opatrunki na rany lub plastry elektroaktywne. Wygenerowany gradient napięcia przemieszcza naładowane cząstki w obszarze zabiegowym.
Ponieważ wpływa na wynikowy przepływ naładowanych cząstek w pobliżu komórek, struktura rusztowania ma ogromne znaczenie przy projektowaniu protokołów ES. Różne konfiguracje transportu ładunku powstają, gdy zmienia się materiał platformy, technika syntezy, struktura lub orientacja względem gradientu napięcia. In vivo na dostępność i ruch naładowanych cząstek mają wpływ nie tylko komórki, ale także sieć kolagenowa i płyn śródmiąższowy tworzące wspierający ECM. Rusztowania inżynieryjne są coraz częściej wykorzystywane do lepszego odtwarzania naturalnych mikrośrodowisk komórkowych in vitro1,35. Jednocześnie ECM jest złożonym naturalnym rusztowaniem.
Sztuczne rusztowania oparte są na metalach, polimerach przewodzących i węglu, zaprojektowane z naciskiem na równowagę między biokompatybilnością a wydajnością elektrochemiczną i długoterminową stabilnością36. Jednym z wszechstronnych typów rusztowań jest elektroprzędzona mata włóknista, która zapewnia kontrolowaną topografię w nanoskali. Można go zaprojektować tak, aby przypominał ECM, a tym samym dostarczał podobne mechaniczne sygnały, które wspomagają regenerację szerokiej gamy tkanek37. Aby znacząco wpłynąć na ES, maty muszą być w pewnym stopniu przewodzące. Jednak polimery przewodzące są trudne do elektrowirowania, a mieszanie z nośnikami izolacyjnymi ogranicza przewodność powstałych włókien38. Jednym z rozwiązań jest polimeryzacja przewodzącego monomeru na powierzchni włókna dielektrycznego, co skutkuje dobrą wytrzymałością mechaniczną i właściwościami elektrycznymi produktu końcowego38. Przykładem jest powlekanie elektroprzędzonych włókien jedwabiu półprzewodnikowym PEDOT-PSS39. Połączenie sygnałów mechanicznych i elektromagnetycznych znacznie przyspiesza wzrost neurytów40,41,42. Neuryty podążają za ułożeniem włókien rusztowania i wydłużają się bardziej po wystawieniu na EF równoległy do włókien niż do pionowego43. Podobnie, ustawienie rusztowań włóknistych do EF również sprzyja dojrzewaniu miogennemu33.
ECM składa się głównie z białek tworzących włókna44, z czego kolagen typu I jest głównym składnikiem we wszystkich tkankach zwierzęcych z wyjątkiem chrząstki (bogatej w kolagen typu II)44. Tropokolagen (TC), potrójna helisowa konformacja nici polipeptydowych, jest motywem strukturalnym włókien kolagenowych45. Obrazy włókien kolagenowych z transmisyjnej mikroskopii elektronowej i mikroskopii sił atomowych pokazują D-okresowy wzór pasmowy46 wyjaśniony przez model Hodge'a i Petruski47 jako regularne tablice przerw TC i nakładań się45. Ścięgna składają się z wyrównanej kolagenowej macierzy fibrylarnej osłoniętej przez niekolagenową, wysoce hydrofilową matrycę proteoglikanową48,49. Decorin to mały proteoglikan bogaty w leucynę (SLRP) zdolny do wiązania regionów szczelinowych włókien kolagenowych i łączenia się z innymi SLRP poprzez ich łańcuchy boczne glikozaminoglikanu (GAG)49. Badania przeprowadzone na ścięgnach pokazują, że ich właściwości elektryczne zmieniają się znacząco, gdy są uwodnione50,51, mechanizm transportu ładunku zmienia się z protonowego na jonowy wraz ze wzrostem poziomu nawodnienia51. Sugeruje to, że przewodnictwo elektryczne wzdłuż włókienka kolagenu typu I może być możliwe dzięki powłoce wodnej Decorin, z obszarami szczelinowymi i nakładającymi się na siebie o różnej przewodności elektrycznej i stałych dielektrycznych.
Ponieważ identyczne odtworzenie ECM za pomocą sztucznych rusztowań jest nieprawdopodobne, wiedza wytwarzająca synergię między in vivo i in vitro, możliwa dzięki możliwym do przełożenia wynikom, wydaje się być w ślepym zaułku. Modelowanie in silico nie tylko umożliwia translację między nimi, ale także dostarcza ważnych korzyści w charakterystyce nieznanych procesów związanych z ES. Porównanie obserwacji in vivo z obserwacjami in vitro może dostarczyć informacji na temat siły sprzężenia między tkanką docelową a resztą organizmu, ale nie ujawnia obecnych granic wiedzy. Nieznane można ujawnić, obserwując różnicę między tym, co ma się wydarzyć w oparciu o obecną wiedzę, a tym, co się dzieje. Eksperymenty in silico oparte na modelowaniu matematycznym pozwalają na podzielenie procesu na znane i nieznane podprocesy. W ten sposób zjawiska nieuwzględnione w modelu wychodzą na jaw, gdy przewidywania in silico są porównywane z eksperymentami in vitro i in vivo.
Formułowanie i testowanie hipotez dotyczących mechanizmów leżących u podstaw wpływu pól elektrycznych na komórki i tkanki jest utrudnione przez dużą liczbę parametrów52, które muszą być testowane oddzielnie. Aby zdefiniować reprezentatywne warunki eksperymentalne, proces ES musi zostać podzielony na podprocesy (Rysunek 1) i należy zidentyfikować dominujące sygnały wejściowe wpływające na zachowanie komórki. Modele reprezentujące fundamentalne fizyczne efekty ES na komórki opisują domenę, która sprzęga EF z komórką - domenę naładowanych cząstek53. Zachowanie cząstek znajdujących się na zewnątrz komórki zależy od mikrośrodowiska i może być badane oddzielnie od komórki. Dominującym sygnałem wejściowym dla komórki jest podzbiór wyjść urządzenia ES, który powoduje największy stopień zmienności odpowiedzi komórki. Najmniejszy podzbiór pełnych parametrów eksperymentalnych, który może generować zmiany we wszystkich dominujących sygnałach wejściowych komórki, może być wykorzystany do zmniejszenia wymiaru przestrzeni parametrów i liczby przypadków testowych.
Dane wejściowe biologicznego modelu docelowego ES muszą być podzbiorem sygnałów wyjściowych wytwarzanych przez urządzenie ES, które są użyteczne do opisania fizycznych efektów ES na komórkach. Prosty bioreaktor z bezpośrednim sprzężeniem ma taką samą budowę jak elektrolityczne ogniwa elektrochemiczne. Ich modele pokazują pierwszorzędowy (z uwzględnieniem rezystancji roztworu), wtórny (uwzględniający również reakcje faradiczne) lub trzeciorzędowy (również uwzględniający dyfuzję jonów) rozkład gęstości prądu. Ponieważ złożoność przekłada się na koszt obliczeniowy, najprostszy model jest najbardziej odpowiedni do eksploracji przestrzeni parametrów. Symulacje kompozytów włóknistych motywowane właściwościami materiału54 koncentrują się na właściwościach materiałów sypkich w wyniku złożonej mikroarchitektury, dlatego nie mogą opisać lokalnych skutków ekspozycji na EF. Istniejące modele in silico, motywowane przez ES, koncentrują się na próbce biologicznej, czy to pojedynczej komórce zanurzonej w jednorodnym podłożu55,56,57, czy złożone tkanki z jednorodną przestrzenią zewnątrzkomórkową58. Gęstość ładunku i prądu (Rysunek 2) mogą działać jako sygnały interfejsu między modelami urządzenia ES a próbką biologiczną lub między różnymi komponentami urządzenia ES. Proponowany protokół oparty na MES wykorzystuje równania opisane w Rysunek 2 i został wykorzystany do zbadania, w jaki sposób parametry zależne od rusztowania mogą być wykorzystane do modulacji tych dwóch sygnałów, niezależnie od EF generowanego przez konfigurację bezpośredniego sprzężenia. Wyniki podkreślają, że konieczne jest uwzględnienie właściwości elektrycznych rusztowania lub ECM podczas badania, w jaki sposób ES wpływa na komórki docelowe.