Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Kontrola geometrii komórki za pomocą mikromodelowania wspomaganego laserem w podczerwieni

3.3K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/62492

⸱

10 lipca 2021

 ,  ,  , 

W tym artykule

Podsumowanie

Przedstawiony tutaj protokół umożliwia zautomatyzowane wytwarzanie mikrowzorów, które standaryzują kształt komórki, do badania struktur cytoszkieletu w komórkach ssaków. Ta przyjazna dla użytkownika technika może być skonfigurowana z dostępnymi na rynku systemami obrazowania i nie wymaga specjalistycznego sprzętu niedostępnego dla standardowych laboratoriów biologii komórki.

Streszczenie

Mikrowzorcowanie jest uznaną techniką w społeczności biologii komórki, używaną do badania powiązań między morfologią a funkcją kompartmentów komórkowych przy jednoczesnym omijaniu komplikacji wynikających z naturalnych różnic między komórkami. Aby ustandaryzować kształt komórki, komórki są albo zamykane w formach 3D, albo kontrolowane pod kątem geometrii kleju za pomocą wysp klejowych. Jednak tradycyjne techniki mikrowzoru oparte na fotolitografii i głębokim trawieniu UV w dużym stopniu zależą od pomieszczeń czystych lub specjalistycznego sprzętu. Tutaj prezentujemy technikę mikromodelowania wspomaganego laserem w podczerwieni (mikrofotomodeling) zmodyfikowaną przez Doyle'a i wsp., którą można wygodnie skonfigurować za pomocą dostępnych na rynku systemów obrazowania. W tym protokole używamy systemu obrazowania Nikon A1R MP+ do generowania mikrowzorów z mikronową precyzją za pomocą lasera na podczerwień (IR), który abluje zaprogramowane obszary na szkiełkach nakrywkowych pokrytych alkoholem poliwinylowym. Stosujemy niestandardowy skrypt, aby umożliwić zautomatyzowane wytwarzanie szablonów z wysoką wydajnością i dokładnością w systemach niewyposażonych w sprzętowy autofokus. Pokazujemy, że ten protokół mikromodelowania wspomaganego laserem w podczerwieni (mikrofotomodeling) skutkuje zdefiniowanymi wzorami, do których komórki przyczepiają się wyłącznie i przybierają pożądany kształt. Ponadto dane z dużej liczby komórek można uśrednić ze względu na standaryzację kształtu komórek. Wzorce generowane za pomocą tego protokołu, w połączeniu z obrazowaniem o wysokiej rozdzielczości i analizą ilościową, mogą być wykorzystywane do badań przesiewowych o stosunkowo wysokiej przepustowości w celu identyfikacji graczy molekularnych pośredniczących w związku między formą a funkcją.

Wprowadzenie

Kształt komórki jest kluczowym wyznacznikiem podstawowych procesów biologicznych, takich jak morfogeneza tkanek1, migracja komórek2, proliferacja komórek3, oraz ekspresja genów4. Zmiany w kształcie komórki są napędzane przez skomplikowaną równowagę między dynamicznymi rearanżacjami cytoszkieletu, które deformują błonę plazmatyczną, a czynnikami zewnętrznymi, takimi jak siły zewnętrzne wywierane na komórkę oraz geometria zrostów komórka-komórka i komórka-matryca5. Migrujące komórki mezenchymalne, na przykład, polimeryzują gęstą sieć aktynową na krawęd....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Wstępne przetwarzanie szkiełek nakrywkowych

  1. Przygotuj nieskazitelnie czyste szkiełka nakrywkowe zgodnie z opisem w Waterman-Storer, 199825.
  2. Przygotować 1% roztwór (3-aminopropylo)trimetoksysilanu (APTMS) i inkubować szkiełka nakrywkowe w roztworze przez 10 minut, delikatnie mieszając. Upewnij się, że szkiełka nakrywkowe poruszają się swobodnie w roztworze.
  3. Szkiełka nakrywkowe myć dwukrotnie za pomocą dH2O przez 5 minut każde.
  4. Przygotować 0,5% roztwór aldehydu glutarowego (GA) i inkubować szkiełka nakrywkowe w roztworze przez 30 minut na shakerze. Na 25 szkiełek nakrywkowych użyj 50 ml rozt....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Jakość danych doświadczalnych uzyskanych za pomocą mikrowzorowania w dużej mierze zależy od jakości samych wzorów. Aby ocenić jakość wzorów generowanych powyższą metodą, zastosowano najpierw mikroskopię odbiciową w celu analizy kształtu i rozmiaru obszarów usuniętych metodą ablacji laserowej z krawędzi szkiełka podstawowego. Stwierdzono, że każdy pojedynczy wzór był bardzo podobny do maski ablacyjnej, posiadał wyraźne krawędzie oraz powierzchnię odbijającą światło w sposób jednorodny (Rycina 2B

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Powyższe wyniki pokazują, że opisany protokół mikrowzorcowania wspomaganego laserem IR (mikrofotowzorcowanie) zapewnia powtarzalne przylegające wzory o różnych kształtach, co umożliwia manipulowanie kształtem komórki i architekturą cytoszkieletu. Chociaż zarówno przed, jak i po debiucie mikrofotomodelowania opracowano wiele metod mikromodelowania, metoda ta ma kilka zalet. Po pierwsze, nie wymaga specjalistycznego sprzętu i pomieszczeń czystych, które zwykle znajdują się tylko w działach inżynieryjnych. W rzeczywistości,.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie ujawniają konfliktu interesów.

Podziękowania

Ta praca była wspierana przez Connaught Fund New Investigator Award dla S.P., Canada Foundation for Innovation, NSERC Discovery Grant Program (granty RGPIN-2015-05114 i RGPIN-2020-05881), University of Manchester i University of Toronto Joint Research Fund, oraz University of Toronto XSeed Program. C.T. był wspierany przez stypendium NSERC USRA.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
(3-Aminopropylo)trimetoksysilanAldrich281778
10 cm Naczynie do hodowli komórkowychVWR10062-880Polistyren, z powłoką TC, wentylowane
Obiektyw do zanurzania w wodzie 25X Apo LWDNikonMRD77225
3,5 cm Naczynie do hodowli komórkowychVWR10861-586Polistyren, poddany obróbce TC, wentylowany
4',6-diamidyn-2-fenyloindol (DAPI)Thermo622481mg/ml roztwór dichlorowodorku
Albumina seryny bydlęcejBioShopALB005
Dulbecco's Sulbecco's Salan-buffered SolanekŻubr311-425-CL
EtanoloaminaSigma-AldrichE9508
FibronektynaSigma-AldrichFC0101mg/ml w pH 7,5 bufor
Przeciwciało fibronektynyMysz BD610077
FijiImageJWersja 1.53c
Fluorescencyjny falloidynaInvitrogenA12380568nm
Szklane szkiełko nakrywkoweVWR16004-30222 i 22 mm
Aldehyd glutarowyMikroskopia elektronowa Sciences1622025% roztwór wodny
Kwas solnyCaledon6025-1-2937% roztwór wodny
IR LaserCoherentChameleon Vision
Minimal Essential Medium &Gibco12561-056
Medium montażoweSigmaF4680
Mysz Wtórnatechnologia sygnalizacji komórek4408SKoza,
mikroskop wielofotonowyNikonA1R MP+
Myozyna Łańcuch lekkiTechnologia sygnalizacji komórek3672SElementy
NISkrólika NikonWersja 5.21.03
Kwas azotowyCaledon7525-1-2970% roztwór wodny
PhotoshopAdobeWersja 21.2.1
Pluronic F-127SigmaP2443Proszek
Poli(alchohol winylowy)Aldrich341584MW 89000-98000, 98% hydrolizowana
technologia sygnalizacji komórekprzeciwciał wtórnych królika4412SKoza, 488nm
ShakerVWR10127-876Znany również jako wahacz analogowy
Borowodorek soduAldrich452882w proszku
Wodorotlenek soduSigma-AldrichS8045
Fosforan sodu dwuzasadowySigmaS5136w proszku
MonobasicSigmaS5011w proszku
SpyderAnaconda4.1.4
TrypsynaŻubr325-042-CL0,05% roztwór wodny z 0,53mM EDTA
przeciwciał 488nm przeciwciała

Bibliografia

  1. Harris, T. J. C., Sawyer, J. K., Peifer, M. How the Cytoskeleton Helps Build the Embryonic Body Plan Models of Morphogenesis from Drosophila. Current Topics in Developmental Biology. 89, 55-85 (2009).
  2. Keren, K., et al. Mechanism of shape deter....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Podczerwone mikrowzorowanie laserowekontrola geometrii komórektechnika mikrowzorowaniaszkiełka zakrywkowe z alkoholu poliwinylowegoobrazowanie wielofotonowezautomatyzowany wytwarzanie wzorówanaliza morfologii komórekobrazowanie o wysokiej rozdzielczościaktynowe włókna stresoweobrazowanie immunofluorescencyjne