Artykuł metodologiczny

Przeszczep skóry u myszy

DOI:

10.3791/634

16 stycznia 2008

W tym artykule

Podsumowanie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Allogeniczny przeszczep skóry jest standardowym modelem do oceny odpowiedzi limfocytów T gospodarza na antygeny dawcy o odmiennej strukturze MHC. Niniejszy artykuł wideo stanowi wizualny samouczek każdego etapu przeprowadzania przeszczepu skóry BALB/c-->C57BL/6.

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Przeszczep skóry, będący jednym z najbardziej rygorystycznych i najmniej wymagających technicznie modeli, jest standardową metodą oceny odpowiedzi limfocytów T biorcy na antygeny dawcy różniące się pod względem MHC. Celem niniejszego artykułu wideo jest przedstawienie widzowi krok po kroku wizualnej demonstracji przeszczepu skóry z wykorzystaniem modelu mysiego. Protokół został podzielony na 5 głównych elementów: 1) pobieranie skóry dawcy; 2) przygotowanie biorcy do przeszczepu; 3) przeszczep skóry; 4) usuwanie opatrunku i monitorowanie odrzucenia przeszczepu; 5) pomocne wskazówki. Po osiągnięciu biegłości sama procedura powinna zająć mniej niż 10 min.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Przed rozpoczęciem eksperymentu:

  • Uzyskać zgodę IACUC
  • Zsterylizować narzędzia chirurgiczne i patyczki higieniczne

I. Pobieranie tkanki dawcy

  1. Uśmierć mysz dawcę (zgodnie z SOP instytucji)
  2. Zwilżyć alkohollem sierść z tyłu u podstawy ucha
  3. Pobrać skórę dawcy, odcinając ucho u nasady
  4. Umieścić tkankę na płytce w lodzie
  5. Rozdzielić ucho: ująć pęsetą z ząbkami strony brzuszną i grzbietną tkanki u podstawy ucha; delikatnie rozdzielić tkankę; umieścić tkankę grzbietową powierzchnią wewnętrzną do dołu w PBS w lodzie; odrzucić kolagenową płat brzuszny

II. Przygotowanie biorcy do transplantacji

  1. Zanestezjować mysz zgodnie z zatwierdzoną procedurą
  2. Podać lek przeciwbólowy w celu uśmierzenia bólu pooperacyjnego (np. 0,05-0,1 mg/g Bupernex ip)
  3. Ułożyć mysz w pozycji bocznej
  4. Wykonać ucisk palca stopy, aby upewnić się, że zwierzę jest odpowiednio uspokojone
  5. Zmoczyć sierść alkoholem i ogolić klatkę piersiową
  6. Oczyścić obszar za pomocą gazika nasączonego alkoholem

III. Przeszczep skóry

  1. Wykonaj nacięcie o długości ~ 1 cm: unieś skórę za pomocą pęsety ząbkowej i przetnij tkankę ~ 0,25-0,5 cm poniżej pęsety
  2. Wyjmij skórę dawcy z PBS, umieść ją na łożu przeszczepu (wewnętrzną stroną skóry ucha skierowaną w stronę łoża) i usuń nadmiar PBS za pomocą sterylnego patyczka do uszu
  3. Ostrożnie odetnij nadmiar skóry dawcy, aby przeszczep przylegał płasko do łoża (upewniając się, że brzegi przeszczepu nie są podwinięte i że przeszczep nie wystaje poza obszar łoża na skórę tułowia biorcy)
  4. Owiń biorcę sterylnym bandażem (umieszczając nieprzylepny fragment gazy nad przeszczepem skórnym)
  5. Upewnij się, że bandaż nie jest zbyt ciasny (oceń oddychanie zwierzęcia) oraz że kończyny górne mogą się swobodnie poruszać
  6. Zabezpiecz bandaż pojedynczym szwem z jedwabnej nici 2-0
  7. Umieść zwierzę w czystej klatce (pod lampą grzewczą, aż zwierzę w pełni wybudzi się z narkozy)
  8. Monitoruj biorcę 1-2 razy dziennie pod kątem objawów stresu i podawaj leki przeciwbólowe w razie potrzeby

IV. Zdjęcie opatrunku (6–7 dni po przeszczepieniu)

  1. Zanurzyć mysz w znieczuleniu zgodnie z zatwierdzoną procedurą
  2. Przeciąć i usunąć szew jedwabny
  3. Za pomocą nożyczek z tępym końcem ostrożnie przeciąć opatrunek (dbając o to, aby nie uszkodzić przeszczepu) i delikatnie go usunąć
  4. Przenieść mysz do czystej klatki
  5. Około 8 h po usunięciu opatrunku sprawdzić przeszczep pod kątem oznak strupienia lub kurczenia się. Jeśli wystąpią, można uznać, że unaczynienie przeszczepu nie powiodło się, co należy traktować jako błąd techniczny
  6. Monitorować codziennie pod kątem oznak odrzucenia (zazwyczaj definiowanego jako ok. 80% martwicy tkanki dawcy)
  7. Allogeniczne przeszczepy skóry są zazwyczaj odrzucane między 8. a 12. dniem po operacji

V. Przydatne wskazówki

  1. Pobranie tkanki donora blisko podstawy ucha pozwoli na: 1) maksymalizację wielkości przeszczepu oraz 2) uzyskanie nierównego brzegu brzusznego, który ułatwi rozdzielanie
  2. Do golenia biorcy zawsze należy używać nowej żyletki
  3. Jeśli lek przeciwbólowy ma być podany d.o.p., należy go podać przed procedurą transplantacji, aby zminimalizować manipulacje pooperacyjne (zmniejszyć ryzyko uszkodzenia przeszczepu)
  4. Jeśli to możliwe, należy zdjąć rękawiczki przed nałożeniem bandaża. Rękawiczki mają tendencję do przyklejania się do bandaża, co utrudnia jego aplikację
  5. Umieszczenie pojedynczego szwu na końcu bandaża zminimalizuje ryzyko jego przedwczesnego usunięcia
  6. Bandaż należy owinąć tak ciasno, jak to możliwe, a następnie ocenić oddychanie PRZED nałożeniem szwu. Jeśli bandaż będzie zbyt ciasny, zwierzę przestanie oddychać. Jeśli bandaż będzie zbyt luźny, zwierzę go usunie.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Jak wykazano w niniejszym artykule wideo, model przeszczepu skóry jest szybką i prostą metodą monitorowania allogenicznych odpowiedzi limfocytów T. Allogeniczne przeszczepy skóry znajdują szerokie zastosowanie i są wykorzystywane do oceny skuteczności różnych czynników immunosupresyjnych i protokołów indukcji tolerancji, a także do badania biologicznych efektów różnych przeciwciał blokujących.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Grant szkoleniowy NIH w dziedzinie immunologii T32 AI 60573 (KRG) oraz grant NIH GM 41514 (MDC)

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Pęseta mikrosekcyjna (zakrzywiona)Sigma-AldrichF4142
Pęseta ząbkowana do szczurów (1x2 zęby, prosta)Fine Science Tools11053-10n=2
Nożyczki do zeza (tępy koniec)Fine Science Tools14074-11
Pęseta irydowa (zakrzywiona)Fine Science Tools11065-07
Nożyczki sprężynowe (kątowe)Fine Science Tools15006-09
Mikroigłownik HalseyFine Science Tools12500-12
Płytki 10 cmCorning430167
PBSCellgro21-040-CV
Bupernex (hydrochlorowodorek buprenorfiny)Reckitt Benckiser517201
Strzykawki insulinowe (29 Ga)Monoject8881 600145
Patyczki higieniczne (Q-tips)Solon Manufacturing Company362
Jednostronne żyletki (#9)Smith & Nephew Inc.67-0238
Sznur jedwabny (2-0; PS-2)Ethicon Inc.583H

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Model mysiodrzucanie przeszczepuodpowied allogenicznapobieranie sk ry dawcyprzygotowanie biorcyusuwanie opatrunkumonitorowanie przeszczeputest immunosupresyjnyindukcja tolerancji

Powiązane artykuły