Artykuł metodologiczny

Amplifikacja Escherichia coli w chipie mikroprzepływowym Continuous-Flow-PCR i jego wykrywanie za pomocą systemu elektroforezy kapilarnej

DOI:

10.3791/63523

21 listopada 2023

W tym artykule

Podsumowanie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ten protokół opisuje, jak zbudować system łańcucha polimerazy o ciągłym przepływie oparty na mikroprzepływowym chipie i jak zbudować system elektroforezy kapilarnej w laboratorium. Przedstawiono w nim prostą metodę analizy kwasów nukleinowych w laboratorium.

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Reakcja łańcuchowa polimerazy (PCR) to tradycyjna metoda stosowana do amplifikacji docelowego genu, który odegrał ważną rolę w diagnostyce biomolekularnej. Jednak tradycyjny PCR jest bardzo czasochłonny ze względu na wydajność zmienności w niskiej temperaturze. W niniejszej pracy zaproponowano system PCR Z CIĄGŁYM PRZEPŁYWEM (CF-PCR) oparty na chipie mikroprzepływowym. Czas amplifikacji można znacznie skrócić, wprowadzając roztwór PCR do mikrokanalika umieszczonego na grzejnikach ustawionych na różne temperatury. Ponadto, ponieważ elektroforeza kapilarna (CE) jest idealnym sposobem różnicowania dodatnich i fałszywie dodatnich produktów PCR, zbudowano system CE, aby osiągnąć skuteczną separację fragmentów DNA. W artykule opisano proces amplifikacji Escherichia coli (E. coli) przez zbudowany we własnym zakresie system CF-PCR oraz detekcję produktów PCR przez CE. Wyniki pokazują, że docelowy gen E. coli został pomyślnie amplifikowany w ciągu 10 minut, co wskazuje, że te dwa systemy mogą być wykorzystywane do szybkiej amplifikacji i wykrywania kwasów nukleinowych.

Wprowadzenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Reakcja łańcuchowa polimerazy (PCR) to technika biologii molekularnej używana do amplifikacji określonych fragmentów DNA, a tym samym do amplifikacji śladowych ilości DNA setki milionów razy. Jest szeroko stosowany w diagnostyce klinicznej, badaniach medycznych, bezpieczeństwie żywności, identyfikacji sądowej i innych dziedzinach. Proces PCR składa się głównie z trzech etapów: denaturacji w temperaturze 90-95 °C, wyżarzania w temperaturze 50-60 °C i przedłużania w temperaturze 72-77 °C. Cykle termiczne są ważną częścią procesu PCR; jednak tradycyjny termocykler PCR jest nie tylko nieporęczny, ale także niewydajny, wymaga około 40 minut na wykonanie 25 cykli. Aby przezwyciężyć te ograniczenia, zbudowano system PCR O CIĄGŁYM PRZEPŁYWIE (CF-PCR), oparty na chipie mikroprzepływowym. CF-PCR może znacznie zaoszczędzić czas, wprowadzając roztwór PCR do mikrokanalików umieszczonych na grzejnikach w różnych temperaturach1,2,3,4,5.

Ponieważ elektroforeza kapilarna (CE) ma wiele zalet, takich jak wysoka rozdzielczość, duża szybkość i doskonała odtwarzalność6,7,8,9,10,11, stał się popularnym narzędziem w laboratorium do analizy kwasów nukleinowych i białek. Jednak większość laboratoriów, zwłaszcza laboratoriów w krajach rozwijających się, nie może sobie pozwolić na tę technologię ze względu na wysoką cenę instrumentu CE. W tym artykule przedstawiliśmy protokoły wytwarzania chipa mikroprzepływowego CF-PCR i budowania wszechstronnego systemu CE w laboratorium. Demonstrujemy również proces amplifikacji E. coli przez ten system CF-PCR oraz wykrywanie produktów PCR przez system CE. Postępując zgodnie z procedurami opisanymi w tym protokole, użytkownicy powinni być w stanie wytworzyć chipy mikroprzepływowe, przygotować roztwory PCR, zbudować system CF-PCR do amplifikacji kwasów nukleinowych i skonfigurować prosty system CE, nawet przy ograniczonych zasobach, do separacji fragmentów DNA.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

UWAGA: Zobacz Tabelę Materiałów, aby uzyskać szczegółowe informacje dotyczące wszystkich materiałów, odczynników i sprzętu użytego w tym protokole.

1. Produkcja chipa mikroprzepływowego CF-PCR

  1. Podgrzej wafel silikonowy w temperaturze 200 °C przez 25 minut, aby usunąć wilgoć.
  2. Dozować 1 ml fotorezystu SU-8-2075 na cal płytki. Wirować na płytce krzemowej za pomocą powlekarki wirowej z prędkością 500 obr./min przez 5-10 s z przyspieszeniem 100 obr./min, a następnie z prędkością 2 000 obr./min przez 30 s z przyspieszeniem 500 obr./min/s.
  3. Miękki wafel silikonowy pieczemy w temperaturze 65 °C przez 3 minuty, a następnie w temperaturze 95 °C przez 15 minut.
  4. Ustaw 150 - 215 mJ/cm² jako energię ekspozycji dla maszyny fotolitograficznej i wygraweruj zaprojektowany wzór na fotorezyście za pomocą maski fotolitograficznej. Umieść wafel silikonowy i maskę gotowe do ekspozycji.
  5. Po naświetleniu piecz wafel krzemowy w temperaturze 65 °C przez 2 minuty, a następnie w temperaturze 95 °C przez 7 minut.
  6. Zanurz płytkę krzemową w roztworze wywoływacza, aby usunąć nadmiar fotorezystu i wyjmij go, gdy widoczne są mikrokanały (Rysunek 1). Użyj izopropanolu, aby spłukać pozostały roztwór wywoływacza.
  7. Wymieszać prepolimer polidimetylosiloksanu (PDMS) i utwardzacz w stosunku 10:1. Wlać zmieszany roztwór PDMS do formy repliki i zestalić go w temperaturze 80 °C przez 60 minut.
  8. Po aktywacji przymocuj chip mikroprzepływowy PDMS do szkiełka za pomocą myjki plazmowej i zestal je w temperaturze 80 °C przez 30 minut tak szybko, jak to możliwe (Rysunek 2).
    UWAGA: Wymiary zewnętrzne chipa to 80,0 mm × 30,0 mm × 0,4 mm. W chipie mikroprzepływowym znajduje się 40 kanałów serpentynowych (100 μm × 1,46 mm × 100 μm, szerokość × długość × głębokość).

2. Przygotowanie roztworu do PCR

  1. Całkowicie rozmrozić odczynniki przed konfiguracją. Użyj mieszalnika wirowego i wirówki, aby upewnić się, że odczynniki są dobrze wymieszane.
  2. Przygotuj probówkę wirówkową, dodając następujące składniki w następującej kolejności: 33,75 μl wody, 1,0 μl matrycy DNA, 0,5 μl startera, 5,0 μl buforu, 4,0 μl mieszaniny dNTP, 1,5 μl Tween 20, 3,5 μL PVP i na koniec 0,25 μl polimerazy DNA.
    UWAGA: W tym przypadku użytą matrycą DNA jest E. coli. Startery dla E. coli i składniki roztworu PCR są wymienione odpowiednio w Tabeli 1 i Tabeli 2.
  3. Wymieszaj roztwór, wirując.

3. Budowa systemu CF-PCR

  1. Przygotuj dwie grzałki ceramiczne o dodatnim współczynniku temperaturowym (PTC), dwa przekaźniki półprzewodnikowe, dwa regulatory temperatury PID, dwa czujniki temperatury i przewód zasilający.
    UWAGA: Rozmiar grzałek ceramicznych PTC zależy od wielkości chipa mikroprzepływowego; długość powinna być większa niż długość chipa - długość-szerokość-wysokość zastosowanych tutaj grzałek ceramicznych PTC wynosi 10 cm x 2 cm x 0,4 cm.
  2. Podłącz grzałkę do przekaźnika półprzewodnikowego.
  3. Podłącz przekaźnik półprzewodnikowy do regulatora temperatury PID.
  4. Przymocuj sondę czujnika temperatury do dolnej części dwóch grzałek i podłącz zacisk do regulatora temperatury PID.
  5. Podłącz szeregowo dwa przekaźniki półprzewodnikowe i podłącz przewód zasilający.
  6. Wydrukuj w 3D szczelinę dla dwóch grzejników i utrzymuj grzejniki w tej samej płaszczyźnie (patrz plik uzupełniający 1 dla plików STL wymaganych do drukowania 3D).
    UWAGA: Pozostaw 12-milimetrową szczelinę powietrzną między dwoma grzejnikami.
  7. Umieść chip mikroprzepływowy na dwóch grzejnikach.
  8. Przygotuj pompę strzykawkową i strzykawkę, zamocuj strzykawkę na pompie strzykawkowej, połącz silikonową rurkę (średnica wewnętrzna 0,8 mm [ID]) ze strzykawką i podłącz stalową igłę (0,7 mm ID) do górnej części rurki silikonowej (Rysunek 3).
  9. Włóż stalową igłę do wlotu chipa mikroprzepływowego.
  10. Umieść końcówkę pipety na wylocie chipa, aby zebrać produkty PCR.

4. Budowa systemu CE

  1. Użyj zasilacza wysokonapięciowego, aby wytworzyć pole elektryczne pola pulsacyjnego; zwróć uwagę na elektrody dodatnie i ujemne.
  2. Użyj lampy rtęciowej jako źródła światła i przefiltruj długość fali wzbudzenia z lampy rtęciowej przez filtr.
  3. Umieść kapilar na stoliku mikroskopu.
  4. Zbierz emisję fluorescencji za pomocą obiektywu, a następnie wykryj ją za pomocą fotopowielacza R928 (PMT). Obserwuj mikroskop i kapilarę. Włącz światło w ciemnym pomieszczeniu; Światło wzbudzenia jest zbierane przez obiektyw.
  5. Użyj samodzielnie opracowanego oprogramowania LABVIEW, aby sterować zasilaniem i zakończyć akwizycję danych (opisaną w krokach 6.3-6.6). Patrz https://github.com/starliyan/labview/blob/main/CZE20170723.vi.
    UWAGA: Wszystkie eksperymenty zostały przeprowadzone w ciemnym pomieszczeniu, a schemat systemu CE jest pokazany w Rysunek 4.

5. Uruchom rozwiązanie PCR

  1. Ustawić temperaturę grzałek systemu CF-PCR na 65 °C i 95 °C.
  2. Umieść chip mikroprzepływowy na dwóch blokach grzewczych.
  3. Włożyć końcówkę silikonowej probówki do probówki wirówkowej zawierającej 50 μl roztworu do PCR (od kroku 2.3). Pociągnąć za tłok strzykawki, aby powoli pobrać roztwór. Zamocować strzykawkę na pompie strzykawkowej. Włóż stalową igłę do wlotu chipa mikroprzepływowego.
  4. Ustaw natężenie przepływu pompy na 10 μl/min i naciśnij przycisk start, aby wepchnąć roztwór do mikrokanału na wlocie mikrochipa.
  5. Zbierz produkty PCR na wylocie chipa mikroprzepływowego.
    UWAGA: Przepłucz kanał ultraczystą wodą przed i po PCR, aby usunąć zanieczyszczenia.

6. Wykrywanie produktów PCR przez ten system CE zbudowany we własnym

zakresie
  1. Przygotuj kapilarnę o długości całkowitej 8 cm i długości efektywnej 6 cm.
  2. Przygotować bufor separacyjny, mieszając 100 μl 1% hydroksyetylocelulozy (HEC, w/v), 2 μl 100x SYBR Green I i 98 μl ultraczystej wody, aby otrzymać 0,5% HEC (w/v) zawierającego 1x SYBR Green I.
  3. Napełnić kapilarę przygotowanym buforem separacyjnym za pomocą pompy próżniowej.
  4. Wprowadź napięcie wtrysku (800 V) i czas wtrysku (2,0 s) w interfejsie oprogramowania, kliknij przycisk start i poczekaj, aż produkty PCR zostaną elektrodynamicznie wprowadzone do kapilary przy napięciu 100 V/cm (2,0 s).
    UWAGA: Na tym etapie produkty PCR umieszcza się na elektrodzie ujemnej, a bufor umieszcza się na elektrodzie dodatniej.
  5. Wprowadź napięcie stałe (800 V) do interfejsu oprogramowania, kliknij przycisk start i uruchom elektroforezę przy natężeniu pola elektrycznego 100 V/cm.
    UWAGA: Na tym etapie zarówno elektrody dodatnie, jak i ujemne są umieszczane z buforem.
  6. Kliknij przycisk stop po oddzieleniu wszystkich fragmentów DNA w kapilarze.
  7. Przepłukuj kapilarę wysterylizowaną wodą przez 1 minutę po każdym uruchomieniu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Rysunek 5 przedstawia elektroferogram produktów PCR i markerów DNA. Ślad (Rysunek 5A) to wynik CE produktu amplifikowanego CF-PCR, ślad (Rysunek 5B) to wynik CE produktu wzmocnionego przez cykle termiczne, a ślad (Rysunek 5C) to wynik CE drabiny DNA 100 pz. Najpierw amplifikowaliśmy docelowy gen E. coli w systemie CF-PCR; roztwór PCR trwał ~10 minut, 30 s od wlotu do wylotu chipa. Wielkość docelowego amplikonu E. coli

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zarówno PCR, jak i CE to dwie popularne biotechnologie w analizie kwasów nukleinowych. W artykule opisano amplifikację E. coli i wykrywanie produktów PCR przy użyciu systemów CF-PCR i CE, oba zbudowane we własnym zakresie. Docelowy gen E. coli został pomyślnie amplifikowany w ciągu 10 minut ze względu na wysokie szybkości wymiany ciepła. Fragmenty DNA mniejsze niż 1500 pz oddzielono w ciągu 8 minut (ryc. 5). Ogromną zaletą tych dwóch technik jest to, że mogą one znacznie za...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają do zadeklarowania konfliktu interesów.

Podziękowania

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca była wspierana przez Komisję Nauki i Technologii Gminy Szanghaj, Chiny (nr 19ZR1477500 i nr 18441900400). Z wdzięcznością dziękujemy za wsparcie finansowe ze strony Uniwersytetu w Szanghaju dla Nauki i Technologii (No.2017KJFZ049).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
100 pz drabinka DNATakara Bio Inc.3422A
10x Szybki bufor ITakara Bio Inc.RR070A
10x TBEPekin Solarbio Nauka & Technologia Co., Sp. z o.o.T1051
Alfa Aesar, USAL15459
mieszanina dNTP (2,5 μ M)Takara Bio Inc.RR070A
EC-FSangon Biotech, Szanghaj, Chiny
EC-RSangon Biotech, Szanghaj, Chiny
HEC, 1300KSigma-Aldrich, USA9004-62-0
izopropanolAladdin, Szanghaj, Chiny67-63-0
mikroskop Olympus, JaponiaBX51
fotolitografia& nbsp;SUSS MicroTec, NiemcyMJB4
 Hamamatsu Photonics, JaponiaR928
fotorezystorMicroChem, USASU-8 2075
Regulatory temperatury PID Szanghaj, ChinyXH-W2023
 Harrick PlasmaPDC-32G-2
poliwinylopirolidon (PVP)Aladyn, Szanghaj, Chiny
Aparatura HarvardaPHD2000
rurki silikonowe BIO-RAD,USA
przekaźniki półprzewodnikoweKZLTD, ChinyKS1-25LA
Polimeraza DNA SpeedSTAR HS Takara Bio Inc.RR070A stalowa
igłazhongxinqiheng, Suzhou, Chiny
SYBR ZIELONY figure-materials-1Solarbio, Pekin, ChinyCzujniki temperatury SY1020
EasyShining Technology, Chengdu, ChinyTCM-M207
(E. coli)Takara Bio Inc.AK601
Tween 20Aladdin, Szanghaj, ChinyT104863
zasilacz napięciowy Medina, Nowy Jork, Stany ZjednoczoneTrek Model 610E
Rozwiązanie deweloperskie Lampa fotopowielacza Myjka plazmowa Pompa P110608 7318210 Szablon

Bibliografia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Li, Z., et al. All-in-one microfluidic device for on-site diagnosis of pathogens based on an integrated continuous flow PCR and electrophoresis biochip. Lab on a Chip. 19 (16), 2663-2668 (2019).
  2. Crews, N., Wittwer, C., Gale, B. Continuous-flow thermal gradient PCR. Biomedical Microdevices. 10 (2), 187-195 (2008).
  3. Li, Z., et al. Design and fabrication of portable continuous flow PCR microfluidic chip for DNA replication. Biomedical Microdevices. 22 (1), 5(2019).
  4. Kim, J. A., et al. Fabrication and characterization of a PDMS-glass hybrid continuous-flow PCR chip. Biochemical Engineering Journal. 29 (1-2), 91-97 (2006).
  5. Shen, K., Chen, X., Guo, M., Cheng, J. A microchip-based PCR device using flexible printed circuit technology. Sensors and Actuators B: Chemical. 105 (2), 251-258 (2005).
  6. Harstad, R. K., Johnson, A. C., Weisenberger, M. M., Bowser, M. T. Capillary Electrophoresis. Analytical Chemistry. 88 (1), 299-319 (2016).
  7. Redman, E. A., Mellors, J. S., Starkey, J. A., Ramsey, J. M. Characterization of intact antibody drug conjugate variants using microfluidic capillary electrophoresis-mass spectrometry. Analytical Chemistry. 88 (4), 2220-2226 (2016).
  8. Britz-Mckibbin, P., Kranack, A. R., Paprica, A., Chen, D. D. Quantitative assay for epinephrine in dental anesthetic solutions by capillary electrophoresis. Analyst. 123 (7), 1461-1463 (1998).
  9. Maeda, H., et al. Quantitative real-time PCR using TaqMan and SYBR Green for Actinobacillus actinomycetemcomitans, Porphyromonas gingivalis, Prevotella intermedia, tetQgene and total bacteria. FEMS Immunology and Medical Microbiology. 39 (1), 81-86 (2003).
  10. Hajba, L., Guttman, A. Recent advances in column coatings for capillary electrophoresis of proteins. TrAC Trends in Analytical Chemistry. 90, 38-44 (2017).
  11. Kleparnik, K. Recent advances in combination of capillary electrophoresis with mass spectrometry: methodology and theory. Electrophoresis. 36 (1), 159-178 (2015).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Amplifikacja Escherichia colianaliza kwas w nukleinowychmikrokana PCRrozdzia fragment w DNAdetekcja produkt w PCRprzygotowanie roztworu do PCRdetekcja patogen w

Powiązane artykuły