RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
Research Article
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Erratum Notice
Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice
Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
Obecny protokół opisuje konstrukcję specjalnie wykonanych układów mikroelektrod do rejestrowania lokalnych potencjałów pola in vivo z wielu struktur mózgu jednocześnie.
Badacze często muszą rejestrować lokalne potencjały pola (LFP) jednocześnie z kilku struktur mózgu. Nagrywanie z wielu pożądanych obszarów mózgu wymaga różnych konstrukcji mikroelektrod, ale dostępne na rynku układy mikroelektrod często nie oferują takiej elastyczności. W tym przypadku obecny protokół nakreśla prostą konstrukcję niestandardowych układów mikroelektrod do rejestrowania LFP z wielu struktur mózgu jednocześnie na różnych głębokościach. W pracy opisano jako przykład budowę obustronnych mikroelektrod korowych, prążkowiowych, brzuszno-bocznych wzgórzowych i nikralnych. Nakreślona zasada projektowania zapewnia elastyczność, a mikroelektrody można modyfikować i dostosowywać do rejestrowania LFP z dowolnej struktury, obliczając współrzędne stereotaktyczne i szybko zmieniając odpowiednio konstrukcję, aby celować w różne obszary mózgu u swobodnie poruszających się lub znieczulonych myszy. Montaż mikroelektrod wymaga standardowych narzędzi i materiałów eksploatacyjnych. Te niestandardowe matryce mikroelektrod umożliwiają badaczom łatwe projektowanie układów mikroelektrod w dowolnej konfiguracji w celu śledzenia aktywności neuronalnej, zapewniając nagrania LFP z rozdzielczością milisekundową.
Lokalne potencjały pola (LFP) to potencjały elektryczne rejestrowane z przestrzeni pozakomórkowej w mózgu. Są one generowane przez nierównowagę stężenia jonów poza neuronami i reprezentują aktywność małej, zlokalizowanej populacji neuronów, co pozwala na precyzyjne monitorowanie aktywności określonego obszaru mózgu w porównaniu z zapisami EEG w makroskali1. Szacuje się, że mikroelektrody LFP oddalone od siebie o 1 mm odpowiadają dwóm zupełnie różnym populacjom neuronów. Podczas gdy sygnał EEG jest filtrowany przez tkankę mózgową, płyn mózgowo-rdzeniowy, czaszkę, mięśnie i skórę, sygnał LFP jest wiarygodnym markerem lokalnej aktywności neuronalnej1.
Badacze często muszą jednocześnie rejestrować LFP z kilku struktur mózgu, ale komercyjnie dostępne układy mikroelektrod często nie oferują takiej elastyczności. W tym przypadku obecny protokół opisuje w pełni konfigurowalne, łatwe do skonstruowania mikroelektrody do jednoczesnego rejestrowania LFP z dowolnego pożądanego obszaru mózgu na różnych głębokościach. Chociaż LFP są szeroko stosowane do rejestrowania aktywności neuronalnej określonego regionu mózgu2,3,4,5,6,7,8,9, obecny, łatwy do dostosowania projekt pozwala na nagrywanie LFP z dowolnej wielu powierzchownych lub Głębokie regiony mózgu11,12. Protokół można również zmodyfikować w celu skonstruowania dowolnej pożądanej matrycy mikroelektrod, określając współrzędne stereotaktyczne regionów mózgu i odpowiednio składając matrycę. Te mikroelektrody o częstotliwości próbkowania 10 kHz i rezystancji 60-70 kΩ (2 cm długości) pozwalają nam rejestrować LFP z milisekundową precyzją. Dane mogą być następnie wzmacniane przez 16-kanałowy wzmacniacz, filtrowane (dolnoprzepustowy 1 Hz, górnoprzepustowy 5 kHz) i digitalizowane.
Obecna praca została zatwierdzona przez Komitet ds. Opieki i Użytkowania Zwierząt Uniwersytetu Wirginii. Do eksperymentów wykorzystano myszy C57Bl/6 obu płci (7-12 tygodni). Zwierzęta były utrzymywane w cyklu 12 godzin światła/12 godzin ciemności i miały dostęp ad libitum do pożywienia i wody.
1. Budowa mikroelektrod

Rysunek 1: Schemat budowy mikroelektrody. (A) Ustawienie przewodów na platformie z prętami napinającymi poniżej przewodów. (B) Przerwa między przewodami. (C) Cztery kawałki plastiku są przyklejone do drutów. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.
| Kontroler | Str | Vl | Snr | |
| AP (przedni/tylny) | 2.2 | Rozdział 1.2 | -1,3 jezdnego | -3,3 | pkt.
| ML (przyśrodkowy/boczny) | 1.8 | 1,5 | 1 | 1,5 |
| DV (grzbietowy/brzuszny) | 0,5 | 3,5 | 4 | Godzina 4,75 |
| Długość elektrody | 4 | Godzina 4,75 | Godzina 5,25 | 6 |
Tabela 1: Stereotaktyczne współrzędne implantacji i wymiary mikroelektrod.
2. Zespół matrycy mikroelektrod

3. Podłączenie mikroelektrody do zestawu słuchawkowego

4. Oznaczanie lokalizacji elektrody po nagraniach
5. Pomiar rezystancji elektrody
W tej pracy mikroelektrody LFP zostały użyte do mapowania rozprzestrzeniania się napadu przez zwoje podstawy 11. Równoczesne zapisy LFP wykonano z prawej kory przedruchowej (gdzie znajdowało się ognisko napadu) oraz z lewej VL, prążkowia i SNR (Ryc. 4). Początek zatarcia został zidentyfikowany jako odchylenie ścieżki napięcia co najmniej dwukrotnie w stosunku do linii podstawowej (Rysunek 4A, czerwona strzałka). Wykres widma mocy11 pokazuje rozkłady częstotliwości dla zarejestrowanych LFP (Rysunek 4A). Opóźnienia początku napadu (czerwone paski) można porównać między każdą strukturą z dokładnością do milisekundy (Rysunek 4A). Na końcu nagrań zastosowano impuls prądowy, aby zaznaczyć i potwierdzić położenie końcówek elektrod, tworząc zmianę (Rysunek 4B,C).

Rysunek 4: Reprezentatywne nagrania LFP. (A) Napad został zarejestrowany z prawej kory przedruchowej i lewego VL, prążkowia i SNR przy użyciu mikroelektrod LFP o odpowiednich widmach mocy. Czerwona strzałka wskazuje początek napadu. Czerwone poziome paski wskazują opóźnienie początku napadu w każdej strukturze. Schemat mózgu pokazuje położenie mikroelektrod (czerwone kropki). (B,C) Struktury zostały uszkodzone po nagraniach w celu oznaczenia lokalizacji końcówek mikroelektrod w VL i SNR. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.
Autorzy nie mają nic do ujawnienia.
Obecny protokół opisuje konstrukcję specjalnie wykonanych układów mikroelektrod do rejestrowania lokalnych potencjałów pola in vivo z wielu struktur mózgu jednocześnie.
Ta praca była wspierana przez National Institute of Health (RO1 NS120945, R37NS119012 do JK) oraz UVA Brain Institute.
| Wzmacniacz 16-kanałowy | system AM | Model 3600 | Wzmacniacz |
| Cement do kranioplastyki | Coltene | Perm Reeline/Repair Resin Typ II Klasa I Odcień - Przezroczysty | Cement do przechowywania mikroelektrod |
| Mikrotom Kriostatu | Precyzyjny | CF-6100 | Do krojenia mózgu |
| Drut niklowo-chromowy pokryty Diamel | Johnson Matthey Inc. | 50 &mikro; m | Drut mikroelektrodowy |
| Dremel Dremel | Seria 300 | Do wiercenia otworów w czaszce myszy | |
| Epoksyd | CEC Corp | C-POXY 5 | Klej szybkowiążący |
| Hemostat | Dowolny | Do trzymania zestawu słuchawkowego | |
| Kleszcze | Dowolna | Do trzymania mikroelektrod | |
| świetlny | Nikon | SMZ-10 | Aby zobaczyć wyrównanie |
| Omomierz | Dowolna | do pomiaru rezystancji | |
| Pny (nagłówki i pasujące gniazda) | Mill-Max | Interkonekty, seria 833, 2 mm siatka mewa skrzydło mewa do montażu powierzchniowego Nagłówki i gniazda | Do mocowania mikroelektrod do |
| zestawu rurek Polymicro | Neuralynx | ID 100 ± 04 µ m, OD 164 ± 06 &mikro; m, grubość powłoki 12 i mikro; m | Rurki szklane |
| Stymulator impulsów | Systemy AM | Model 2100 | Aby oznaczyć położenie mikroelektrody na końcu nagrań |
| Nożyczki | Dowolne | Do cięcia mikroelektrod | |
| Superglue | Gorilla | Adhesive | |
| Gruby drut 0,008 cala – 0,011 cala | AM Systems | 791900 | Drut kleszczowy do przytrzymywania układu mikroelektrod |
| Cienki drut 0,005 cala - 0,008 cala | AM Systems | 791400 | Cienki przewód do odniesienia i uziemienia |