Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Zwalczanie larw komarów Aedes albopictus za pomocą Carpesium abrotanoides L.

1.1K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/63976

⸱

23 sierpnia 2022

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Qiannan Medical College for Nationalities, 2Key Laboratory of Human Parasitic Diseases in Qiannan Prefecture, 3Guizhou Medical University

W tym artykule

Podsumowanie

Użycie rośliny Carpesium abrotanoides L. do zwalczania larw komarów może skutecznie zmniejszyć populację komarów Aedes albopictus i stanowić podstawę do projektowania insektycydów pochodzenia roślinnego.

Streszczenie

Jako istotny wektor gorączki denga, żółtej febry i innych chorób przenoszonych przez komary, Aedes albopictus (Diptera: Culicidae) może być szeroko rozpowszechniony na całym świecie i powodować poważne zagrożenie dla zdrowia publicznego. Do tej pory, biorąc pod uwagę szybko pojawiającą się oporność komarów na insektycydy, opracowanie nowych botanicznych środków owadobójczych w celu zwalczania i redukcji Ae. albopictus jest pilne i kluczowe. Dlatego, aby zbadać wpływ wywaru rośliny C. abrotanoides L. na zabijanie larw komarów, wykryliśmy śmiertelność larw po leczeniu różnymi stężeniami (60 mg / ml, 120 mg / ml i 180 mg / ml) wywaru w szeregu punktów czasowych (12 godzin, 24 godziny, 36 godzin i 48 godzin). Stwierdziliśmy, że 24 godziny leczenia wywarem C. abrotanoides L. w dawce 180 mg/ml zabiło 92,35% komarów w porównaniu z leczeniem kontrolnym. Tymczasem 36 godzin z 120 mg/ml może również zabić ponad 90% komarów. Ponadto populacje Carassius auratus były narażone na działanie wywaru C. abrotanoides L. w dawce 120 mg/ml przez 36 godzin i nie były martwe. Ocena śmiertelności wykazała, że stężenie to nie jest szkodliwym poziomem zanieczyszczenia środowiska ekologicznego. Badanie to dostarcza potencjalnego kandydata na roślinę, który można wykorzystać do projektowania insektycydów pochodzenia roślinnego. Dodatkowo metody te można zmienić i zastosować do innych gatunków komarów.

Wprowadzenie

Aedes albopictus, znany również jako "azjatycki komar tygrysi", może rozprzestrzeniać różne choroby, takie jak gorączka denga, gorączka chikungunya i choroba wirusa Zika, wysysając krew ludzką i zwierzęcą1. Ze względu na szerokie rozpowszechnienie Ae. albopictus, sytuacja epidemiczna chorób przenoszonych przez komary, takich jak gorączka denga, staje się w ostatnich latach coraz poważniejsza, stanowiąc poważne zagrożenie dla życia i zdrowia ludzi na całym świecie2. Obecnie w przypadku większości chorób przenoszonych przez komary nie ma skutecznej szczepionki ani specyficznego leku terapeutycznego. Zabijanie komarów chemicznymi środkami owadobójczymi jest nadal głównym sposobem zwalczania chorób przenoszonych przez komary3. Metoda kontroli chemicznej przy użyciu chemicznych środków owadobójczych może szybko i skutecznie zabijać komary i stała się głównym sposobem zwalczania wektorów komarów4. Jednak długotrwałe stosowanie insektycydów na dużą skalę doprowadziło do spadku wrażliwości Ae. albopictus na insektycydy i oporność na insektycydy, co stało się największą przeszkodą w zwalczaniu chorób przenoszonych przez komary. Dlatego ogromne znaczenie praktyczne ma opracowanie nowego rodzaju środka owadobójczego na komary o wysokiej skuteczności, bezpieczeństwie i ochronie środowiska.

W naturze rośliny są głównymi producentami. Owady i wiele zwierząt zjada rośliny. Kiedy rośliny cierpią z powodu różnych "klęsk żywiołowych i spowodowanych przez człowieka", wytwarzają metabolity wtórne, aby przetrwać. Substancje te często mają zdolność opierania się żerowaniu, chorobom i odporności owadów na inne organizmy. Mają one nie tylko wpływ na różne szkodniki, ale także mają niskie ryzyko toksyczności środowiskowej5. Carpesium abrotanoides L. to wieloletnie zioło z rodzaju Carpesium abrotanoides z Compositae, znane również jako "ropucha niebieska", "żywa trawa jelenia", "dziki tytoń" itp. Jest szeroko rozpowszechniony w Chinach i Azji Wschodniej. Jego łodygi i liście mogą być używane jako środki owadobójcze w tych obszarach do leczenia otarć i gorączki6. Jego owoc jest lokalnie znany jako "Bei-He-Shi" w Chinach i jest stosowany w leczeniu tasiemca i Ascaris lumbricoides w medycynie ludowej7,8. Doniesiono, że roślina jest bogata w monoterpeny, seskwiterpeny, fenole i inne charakterystyczne składniki oraz ma skuteczne działanie farmakologiczne, takie jak działanie przeciwzapalne, przeciwgrzybicze, przeciwpasożytnicze, przeciwnowotworowe i przeciwwirusowe7. Ostatnie badania wykazały, że ma działanie przeciwzapalne na Spodoptera exigua9, toksyczność kontaktową dla Sitophilus zeamais10, zdolność zabijania cysticercus cellulosae Taenia asiatica8, działanie przeciwfeedantowe i toksyczność kontaktową dla armyworm i Plutella xylostella11. Poczyniono wstępne postępy w badaniu toksycznego wpływu C. abrotanoides L. na niektóre pasożyty, szkodniki rolnicze i sanitarne, które mogą być wykorzystywane do zwalczania larw Aedes albopictus.

To badanie omawia protokół zwalczania larw Ae. albopictus za pomocą C. abrotanoides L. W tym protokole wywar z C. abrotanoides L. został użyty do działania na larwy Ae. albopictus w czwartym stadium rozwojowym, a śmierć larw wykryto po leczeniu wywarem z C. abrotanoides L. w różnych stężeniach (60 mg/ml, 120 mg/ml i 180 mg/ml) w szeregu punktów czasowych (12 godzin, 24 godziny, 36 godzin, i 48 godzin). Określenie zabijającego wpływu wywaru C. abrotanoides L. na larwy Ae. albopictus dostarcza nowego pomysłu na dalsze zwalczanie komarów z wysoką skutecznością, niską toksycznością i zastosowaniem przyjaznych dla środowiska botanicznych środków owadobójczych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Krew kozła używana do karmienia samic komarów została pobrana z lokalnej rzeźni w mieście Duyun, Guizhou, Chiny, i użyta zgodnie z wytycznymi etycznymi i przepisami Kluczowego Laboratorium Chorób Pasożytniczych Człowieka w prefekturze Qiannan, Duyun, Guizhou, Chiny.

1. Przygotowanie odczynników

UWAGA: Zapoznaj się z Tabelą Materiałów, aby uzyskać listę sprzętu, odczynników i innych materiałów eksploatacyjnych używanych w tym protokole.

  1. Ekstrakcja i identyfikacja C. abrotanoides L.
    1. Zebrać całą trawę C. abrotanoides L. Cała trawa C. abrotanoides L. w tym badaniu została zebrana z okręgu autonomicznego Sandu Shui w prowincji Guizhou (N: 25.95, E: 107.87) w kwietniu 2021 r.Zdjęcia z miejsca zbiórki C. abrotanoides L. w klasie Rysunek 1.
      UWAGA: Zgodnie z rozmieszczeniem zasobów, właściwościami leczniczymi, strukturą tkanek oraz fizycznymi i chemicznymi cechami identyfikacyjnymi C. abrotanoides L., identyfikacja C. abrotanoides L. była następująca: Cała roślina ma 30-100 cm wysokości, z wyprostowanymi łodygami, wieloma gałęziami w górnej części, naprzemiennymi liśćmi w dolnej części łodygi, lekko ogonkowatymi, owalnymi liśćmi o długości 10-15 cm i szerokości 5-8 cm, pełnymi lub nieregularnie ząbkowanymi, liście w górnej części łodygi są prawie siedzące, długie owalne, Stopniowo zmniejsza się ku górze, a głowa jest pachowa, prawie siedząca, z opadającymi kwiatami, specjalnym gazem, lekkim smakiem i ostrym. Roślina została zidentyfikowana jako C. abrotanoides L. przez nauczycieli specjalizujących się w tradycyjnej medycynie chińskiej w naszych oddziałach.
  2. C. abrotanoides L. czyszczenie, suszenie i kruszenie
    1. Usuń zanieczyszczenia, takie jak martwe liście i gleba z zebranego C. abrotanoides L. i oczyść go. Suszyć na powietrzu przez 10-15 dni w wentylowanych warunkach lub suszyć w suchym piecu w temperaturze 95 °C przez 6 godzin
      UWAGA: Podczas procesu suszenia C. abrotanoides L. należy go obrócić, aby mógł równomiernie wyschnąć. Jeśli tkanka C. abrotanoides L. nie zostanie łatwo zmiażdżona podczas procesu kruszenia, można ją ponownie wysuszyć, a następnie rozdrobnić.
  3. Przygotowanie wywaru z esencji C. abrotanoides L.
    1. Odważyć 360 g rafinowanego proszku C. abrotanoides L., dodać 1000 ml wody destylowanej i odkradać na wolnym ogniu (moc 800 W) przez 2 godziny.
    2. Przefiltruj wywar zwykłą bibułą filtracyjną, a następnie skoncentruj w wyparce obrotowej, aby uzyskać ekstrakt. Rozcieńczyć ekstrakt wodą destylowaną do objętości 1000 ml i przygotować C. abrotanoides L.wywar z wody rafinowanej zawierający 360 mg/ml oryginalnego materiału leczniczego.
    3. Weź 50 ml, 100 ml i 150 ml wywaru z rafinowanej wody C. abrotanoides L. i rozcieńcz je, aby przygotować wywary wodne zawierające 120 mg/ml, 240 mg/ml i 360 mg/ml oryginalnych materiałów leczniczych, po 150 ml każdy w trybie czuwania.
      UWAGA: Podczas procesu gotowania ciepło powinno być dobrze kontrolowane. Po ugotowaniu ciepło zostało zmniejszone, a ciecz utrzymywano w temperaturze 100 °C i lekko zagotowano.

2. Przygotowanie próbki komara

  1. Źródło komarów
    1. Kolekcja larw Ae. albopictus. W tym badaniu larwy Ae. albopictus zebrano w dzielnicy mieszkalnej miasta Duyun (N: 26.25, E: 107.52) w prowincji Guizhou w sierpniu 2020 r.
    2. Zgodnie z rozmieszczeniem, cechami morfologicznymi larw i osobników dorosłych Ae. albopictus, identyfikacja Aedes albopictus była następująca: Podstawa Ctenophora larw Aedes albopictus ma cienkie rysowanie; niekompletne siodło ogonowe; rurka oddechowa jest, krótka i gruba; dorosłe osobniki Aedes albopictus to małe i średnie komary. Samica komara jest średniej wielkości i. Tarczka w środkowej części klatki piersiowej ma biały podłużny pasek, zwykle zwężający się stopniowo z tyłu i rozwidlający się w przedniej części tarczki. Staw stopy ma podstawę biały pierścień, a całość lub większość stawu 5 jest biała. Komary zostały zidentyfikowane jako Ae. albopictus przez nauczycieli parazytologii i specjalizacji komarów w naszych afiliacjach.
    3. Utrzymuj konwencjonalne karmienie w temperaturze 25 ± 1 °C i wilgotności względnej 70% ± 10%, a jako źródło światła użyj świetlówki o mocy 80 W (światło: ciemno = 14 h: 10 h).
    4. Nakarm larwy sproszkowaną wątrobą kurczaka, a dorosłe komary 10% wodą z cukrem.
  2. Zbieranie jaj komarów
    1. Kiedy larwy Ae. albopictus wyrosną na poczwarki, należy je wyssać za pomocą jednorazowej plastikowej pipety Pasteura i przenieść do klatki dla dorosłych komarów.
    2. Po 3-5 dniach od pojawienia się dorosłego komara samica i samiec komara łączą się w pary. W tym czasie karm samice komarów krwią przez 4-8 godzin
      UWAGA: Krew z dodatkiem antykoagulantu umieszczono w naczyniu hodowlanym, podgrzano ciepłą wodą o temperaturze 37 °C i przykryto warstwą gazy dla samic komarów do wysysania krwi.
    3. Zbierz jaja Aedes albopictus za pomocą kubka do zbierania jaj (domowej roboty: 300 ml prostego, nieprzezroczystego plastikowego kubka zawierającego 250 ml wody destylowanej, a następnie bibułę filtracyjną zanurzono w połowie wewnętrznej krawędzi kubka).
      UWAGA: Jaja Ae. albopictus mogą być przechowywane przez 3-6 miesięcy.
  3. Wylęganie się i karmienie komarów
    1. Podczas eksperymentu Ae. albopictus wykluwał się zwykle 1 tydzień wcześniej. Umieść jaja Aedes albopictus na emaliowanej płytce, dodaj 1000 ml wody z kranu i odstaw na ponad 24 godziny. Z jaj wylęgają się larwy w ciągu 1-2 dni.
    2. Larwy linieją raz na 1-2 dni, to znaczy zwiększają się o jeden stopień rozwojowy. Do testu należy wybrać 1000 larw pod koniec trzeciego stadium rozwojowego lub na początku czwartego stadium rozwojowego po rozmnażaniu przez 2-3 pokolenia bez kontaktu z żadnymi chemicznymi środkami owadobójczymi w laboratorium.
      UWAGA: Jeśli zagęszczenie larw jest zbyt duże, podziel je na płytki, aby larwy mogły normalnie rosnąć.

3. Wykrywanie toksycznego wpływu wywaru z C. abrotanoides L. na larwy Ae. albopictus metodą zanurzania

  1. Grupowanie zestawów
    1. Ustaw grupę eksperymentalną: Przygotuj wywary z C. abrotanoides L. (50 ml) o trzech stężeniach leku (120 mg/mL, 240 mg/ml i 360 mg/ml).
    2. Ślepa grupa kontrolna: Użyj odchlorowanej wody (domowej roboty: woda z kranu stojąca dłużej niż 24 godziny) o tej samej objętości co lek.
    3. Grupa kontroli pozytywnej: Przygotuj lek deltametrynę, powszechny chemiczny środek owadobójczy, w końcowym stężeniu 0,05 mg / ml.
  2. Dodawanie płynnego leku
    1. Użyj kilku jednorazowych plastikowych kubków o pojemności większej niż 200 ml i dodaj 35 larw Ae. albopictus pod koniec trzeciego lub początku czwartego stadium do 50 ml odchlorowanej wody.
    2. W grupie eksperymentalnej dodać 50 ml wywaru z wody rafinowanej C. abrotanoides L. o każdym stężeniu, delikatnie wstrząsnąć i równomiernie wymieszać do całkowitej objętości 100 ml. Końcowe stężenia wywaru z wody rafinowanej C. abrotanoides L. wynoszą 60 mg/ml, 120 mg/ml i 180 mg/ml.
    3. W ślepej próbie kontrolnej dodać 50 ml odchlorowanej wody do całkowitej objętości 100 ml i oznaczyć ją jako ślepą próbę.
    4. W grupie kontroli dodatniej dodać 50 ml roztworu deltametryny o stężeniu 0,1 mg/ml, delikatnie wstrząsnąć i równomiernie wymieszać do całkowitej objętości 100 ml do końcowego stężenia 0,05 mg/ml i oznaczyć jako kontrolę pozytywną.
  3. Obserwacje
    1. Delikatnie przenieś oznaczone plastikowe kubki do pomieszczenia obserwacyjnego z tym samym środowiskiem karmienia i zapisz zgony larw Ae. albopictus w każdej grupie doświadczalnej i kontrolnej odpowiednio po 12 godzinach, 24 godzinach, 36 godzinach i 48 godzinach. Obserwuj martwe osobniki pod mikroskopem i porównaj je z normalnymi larwami Ae. albopictus.
    2. W powyższym punkcie obserwacyjnym, jeśli larwy zostały poruszone ostrą, cienką igłą i nie mogły uciec lub nie miały żadnej reakcji, należy je uznać za martwe. Powtórz test trzy razy.
      UWAGA: Jeśli śmiertelność larw w grupie kontrolnej przekraczała 20%, wyniki badań były nieważne i należało je powtórzyć. Ogólne podejście jest podsumowane w Rysunek 2.

4. Eksperyment symulacyjny na świeżym powietrzu

  1. Zastosować trzy stężenia wywaru C. abrotanoides L. do larw Ae. albopictus w warunkach zewnętrznych, aby zaobserwować śmierć larw. Porównaj, czy istnieje jakakolwiek różnica między działaniem toksycznym a tym w laboratorium.
  2. Zastosuj trzy stężenia wywaru z rafinowanej wody C. abrotanoides L. do dzikiego karasia w warunkach zewnętrznych, aby zaobserwować, czy wpłynęło to na wzrost karasia. Ma to na celu wstępne osądzenie, czy C. abrotanoides L.Odwar z wody rafinowanej powoduje szkody w środowisku ekologicznym.
    UWAGA: Stężenia były podobne do stężeń wymienionych w kroku 3.2.2. Używane punkty czasowe to odpowiednio 12 godzin, 24 godziny, 36 godzin i 48 godzin. Efekt eksperymentu symulacyjnego w terenie oceniano poprzez porównanie śmiertelności Ae. albopictus traktowanych wywarem z C. abrotanoides L. w warunkach żywienia laboratoryjnego i w naturalnych warunkach zewnętrznych.

5. Analiza statystyczna

  1. Wyrazić dane ilościowe w średniej ± SD, a dane dotyczące liczby w procentach (%).
    UWAGA: Zastosowana tutaj metoda wnioskowania statystycznego wynosiła p < 0,05, a różnica była istotna statystycznie.
  2. Do wstępnego określenia, które stężenie wywaru dla Ae. albopictus miało największy wpływ na larwy Ae. albopictus, należy użyć odpowiedniego oprogramowania do analizy statystycznej danych i toksyczności trzech różnych stężeń wywaru C. abrotanoides L. dla larw Ae. albopictus.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

W niniejszym badaniu zebrano w całości trawę C. abrotanoides L. z natury (Rycina 1). Po identyfikacji C. abrotanoides L. przygotowano odwar z C. abrotanoides L. metodą gotowania (Rycina 2) w różnych stężeniach (60 mg/mL, 120 mg/mL i 180 mg/mL). Zastosowano go wobec larw Ae. albopictus metodą zanurzania larw. Stwierdzono, że 24-godzinna ekspozycja na odwar z C. abrotanoides L. w stęż...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Obecnie Ae. albopictus stał się jednym ze 100 najbardziej inwazyjnych gatunków na świecie. Według statystyk Światowej Organizacji Zdrowia (WHO) w 2020 r. obszary najbardziej dotknięte przez Ae. albopictus w Azji będą odpowiadać za około 70% globalnego obciążenia chorobami12. Jako istotny wektor gorączki denga, żółtej febry i innych chorób przenoszonych przez komary, Ae. albopictus może być szeroko rozpowszechniony na całym świecie i stanowić poważne zagrożenie dla zdrowi...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają do zadeklarowania konfliktu interesów.

Podziękowania

Dziękujemy dr Xin-Ru Wang z University of Minnesota, za wnikliwe sugestie i wskazówki. Praca ta była wspierana przez fundusz badań naukowych Qiannan Medical College for Nationalities (Qnyz202112, QNYZ202205) oraz Fundusz Nauki i Technologii Komisji Zdrowia Prowincji Guizhou (qwjh [2022] nr 101, projekt gzwkj2023-251).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Aceton (czystość analityczna)Shanghai Shenbo Chemical Co., Ltd
Karp karaśGuangzhou Yunfeng aquaculture Co., Ltd
Wątroba drobiowa w proszkuwłasnej produkcji
Woda odchlorowanawłasnej produkcjiWoda z kranu stojąca przez ponad 24 godziny
Deltametryna technicznaNanjing Lesheng Biotechnology Co. , LtdCzystość: 94,62%
Jednorazowy plastikowy kubekGuizhou Fuqiang technology Packaging Co., Ltd220ML-A1
Kubek do zbierania jajwłasnej produkcji
Elektryczny piec do suszenia strumieniowegoHangzhou Aipu Instrument Equipment Co., LtdWGLL-230BE
Elektryczny destylator wodyBeijing Xinrun Kono Instrument Co., LtdTT-98-II
Oprogramowanie GraphPad PrismGraphPad Oprogramowanieprzetwarzania danych i grafiki
Zintegrowany mikroskop cyfrowyChongqing Aote Optical Instrument Co., LtdSMARTe-500
Klatka do karmienia komarówNanjing Lesheng Biotechnology Co., Ltdwykonana na zamówienie
wielofunkcyjna kuchenka indukcyjnaGuangdong Midea living appliance manufacturing Co., LtdC21-WK2102wykonany na zamówienie
wysokiej jakości bibuła filtracyjnaHangzhou Fuyang Beimu pulp and Paper Co., Ltd15cm-102
Parownik obrotowyHenan Jingbang Instrument Equipment Co., LtdR-1010
Mała kruszarkaJinhua Mofei AGD Co., LtdCHY-6001
SPSS Wersja 25.0Oprogramowanie
statystyczne IBMStandardowe sito do próbekHebei Hengshui Anping lvruo wire mesh products Co., Ltd100-30na zamówienie
Woda z cukrem, 10%własnej produkcji
do

Bibliografia

  1. Hou, J., Liu, Q., Wang, J., Gong, Z. Insecticide resistance of Aedes albopictus in Zhejiang Province, China. Bioscience Trends. 14 (4), 248-254 (2020).
  2. Deng, J., Guo, Y., Su, X., Liu, S., Chen, X. G. Impact of deltamethrin- resistance in Aedes albopictus on its fitness cost and vector competence. PLoS Neglected Tropical Diseases. 15 (4), 0009391(2021).
  3. Chebabi, A. G., David, R., Raimon, G., Salvador, Q., Nuria, G. Control of the asian tiger mosquito (Aedes albopictus) in a firmLy established area in spain: risk factors and people's involvement. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene. 107 (11), 706-714 (2013).
  4. Li, M. T., et al. The driving force for 2014 dengue outbreak in Guangdong, China. Plos One. 11 (11), 0166211(2016).
  5. Wu, H. B., et al. Insecticidal activity of sesquiterpene lactones and monoterpenoid from the fruits of carpesium abrotanoides. JIndustrial Crops and Products. 92, 77-83 (2016).
  6. Mayur, B., Sandesh, S., Shruti, S., Sung-Yum, S. Antioxidant and α-glucosidase inhibitory properties of Carpesium abrotanoides L. Journal of Medicinal Plant Research. 4 (15), 1547-1553 (2010).
  7. Zhang, J. P., et al. The genus carpesium: a review of its ethnopharmacology, phytochemistry and pharmacology. Journal of Ethnopharmacology. 163, 173-191 (2015).
  8. Liu, X. Y., Guo, G. W., Wang, H. Killing effect of Carpesium abrotanoides on Taenia asiatica Cysticercus. Chinese Journal of Parasitology & Parasitic Disease. 33 (3), 237-238 (2015).
  9. Feng, X. Insecticidal activities of ethanol extracts from thirty chinese medicinal plants against spodoptera exigua (lepidoptera: noctuidae). Journal of Medicinal Plants Research. 6 (7), 1263-1267 (2012).
  10. Ma, Z., Zhang, X., Li, X., He, J. Activity evaluation of extracts from 99 plants against sitophilus zeamais. Journal of the Chinese Cereals & Oils Association. 28 (9), 103-108 (2013).
  11. Li, X. J., He, J., Feng, J. T., Ma, Z. Q., Zhang, X. Screening of the insecticidal activity of extracts from 106 plants in northwest area of China. Journal of Northwest A & F University (Natural Science Edition). 40 (11), 120-126 (2012).
  12. Jayarajah, U., Dissanayake, U., Edirisinghe, K., Seneviratne, P. The world health organization dengue case classifications). Galle Medical Journal. 25 (3), 74-79 (2020).
  13. Zhang, Z. L., Yang, T., Zhang, Y. K., Wang, L. H., Xie, Y. J. Fumigant toxicity of monoterpenes against fruitfly, drosophila melanogaster. Industrial Crops and Products. 81, 147-151 (2016).
  14. Roman, P. Essential oils for the development of eco-friendly mosquito larvicides: A review. Industrial Crops and Products. 76 (4), 174-187 (2015).
  15. Yang, Y. X., Shan, L., Liu, Q. X., Shen, Y. H., Zhang, W. D. Cheminform abstract: carpedilactones a-d, four new isomeric sesquiterpene lactone dimers with potent cytotoxicity from carpesium faberi. Organic Letters. 46 (7), 4216-4219 (2015).
  16. Chen, D. L., Li, X., Zhou, X. J. Research progress on sesquiterpenes and its pharmacological activities in genus carpesium. China Journal of Chinese Materia Medica. 45 (1), 37-51 (2020).
  17. Xu, D. D., et al. Sesquiterpenes and diterpenes with cytotoxic activities from the aerial parts of Carpesium humile. Fitoterapia. 128, 50-56 (2018).
  18. Tian, L., et al. Cle-10 from Carpesium abrotanoides L. suppresses the growth of human breast cancer cells (mda-mb-231) in vitro by inducing apoptosis and pro-death autophagy via the pi3k/akt/mtor signaling pathway. Molecules. 24 (6), 1091-1102 (2019).
  19. Kim, J. -J., Chung, I. -M., Jung, J. -C. In vivo antiplasmodial activity of 11(13)-dehydroivaxillin from Carpesium ceruum. Journal of Enzyme Inhibition & Medicinal Chemistry. 24 (1), 247-250 (2009).
  20. He, Y. Q., Cai, L., Qian, Q. G., Yang, S. H., Zhou, X. J. Anti-influenza A (H1N1) viral and cytotoxic sesquiterpenes from Carpesium abrotanoides. Phytochemistry Letters. 35, 41-45 (2020).
  21. Zhang, L., Chen, F., Wang, J. Review on structural modifications, biological activities and structure-activity relationships of Parthenolide. Natural Product Research. 29, 1617-1620 (2017).
  22. Haris, A., Azeem, M., Binyameen, M. Mosquito repellent potential of carpesium abrotanoides essential oil and its main components against a dengue vector, Aedes aegypti (diptera: culicidae). Journal of Medical Entomology. 59 (3), 801-809 (2022).
  23. Hazarika, H., Tyagi, V., Kishor, S., Karmakar, S., Chattopadhyay, P. Toxicity of essential oils on Aedes aegypti: a vector of chikungunya and dengue fever. International Journal of Mosquito Research. 5 (3), 51-57 (2018).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Botaniczne insektycydyśmiertelność larwoporność na insektycydyzwalczanie komarówodwar roślinnywektor dengibezpieczeństwo ekologiczne

Ten artykuł został opublikowany

Film wkrótce dostępny

Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.