To badanie przedstawia nowy protokół bezpośredniego przykładania siły mechanicznej do jądra komórkowego za pomocą mikrokulek magnetycznych dostarczanych do cytoplazmy i jednoczesnego obrazowania fluorescencyjnego żywych komórek.
Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.
Artykuł metodologiczny
To badanie przedstawia nowy protokół bezpośredniego przykładania siły mechanicznej do jądra komórkowego za pomocą mikrokulek magnetycznych dostarczanych do cytoplazmy i jednoczesnego obrazowania fluorescencyjnego żywych komórek.
Fundamentalnym pytaniem w mechanobiologii jest to, jak żywe komórki odbierają zewnętrzne bodźce mechaniczne w kontekście fizjologii i patologii komórki. Uważa się, że mechano-odczucie zewnątrzkomórkowe bodźców mechanicznych odbywa się za pośrednictwem receptorów błonowych, powiązanego kompleksu białkowego i cytoszkieletu. Ostatnie postępy w mechanobiologii pokazują, że jądro komórkowe w cytoplazmie samo w sobie może niezależnie odczuwać bodźce mechaniczne jednocześnie. Brakuje jednak mechanistycznego zrozumienia, w jaki sposób jądro komórkowe wyczuwa, przekształca i reaguje na bodźce mechaniczne, głównie z powodu wyzwań technicznych związanych z dostępem i ilościowym określeniem mechaniki jądra za pomocą konwencjonalnych narzędzi. W artykule opisano projekt, produkcję i wdrożenie nowego siłownika siły magnetycznej, który stosuje precyzyjne i nieinwazyjne bodźce mechaniczne 3D do bezpośredniego deformowania jądra komórkowego. Wykorzystując komórki zmodyfikowane za pomocą CRISPR/Cas9, badanie to pokazuje, że narzędzie to, w połączeniu z konfokalnym obrazowaniem fluorescencyjnym o wysokiej rozdzielczości, umożliwia ujawnienie w czasie rzeczywistym dynamiki mechano-wrażliwego białka związanego z tak (YAP) w pojedynczych komórkach w funkcji deformacji jądra. Ta prosta metoda ma potencjał, aby wypełnić obecną lukę technologiczną w społeczności mechanobiologii i dostarczyć odpowiedzi na lukę w wiedzy, która istnieje w związku między mechanotransdukcją jądra a funkcją komórki.
To badanie ma na celu opracowanie i zastosowanie nowej techniki do wyjaśnienia mechanobiologii jądra poprzez połączenie magnetycznych siłowników, które przykładają siłę mechaniczną bezpośrednio do jądra komórkowego i konfokalnej mikroskopii fluorescencyjnej, która jednocześnie obrazuje strukturalne i funkcjonalne zmiany subkomórkowe. Komórki wyczuwają zewnątrzkomórkowe sygnały biofizyczne, w tym sztywność tkanki1,2,3,4, ciśnienie płynu śródmiąższowego i naprężenie ścinające5,6,<....
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
1. Konserwacja komórek B2B zaprojektowanych przez CRISPR/Cas9
2. Hodowla komórkowa
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Projekt urządzenia do przesuwania magnesu i zastosowanie siły magnetycznej
W celu przyłożenia siły do jądra komórkowego za pomocą magnetycznych mikrokulek, zaprojektowano i zbudowano urządzenie do przesuwania magnesu, które pozwala kontrolować jego pozycję przestrzenną. Urządzenie do przesuwania magnesu składa się z centralnej ramy, trzech pokręteł oraz szyn umożliwiających niezależne przesuwanie przymocowanego magnesu w kierunkach x, y i z z rozdzielczością przestrzenną 1,59 mm na cykl (
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Internalizacja mikrokulek magnetycznych (sekcja 2.2) ma kluczowe znaczenie, ponieważ mikrogranulki zewnątrzkomórkowe nie mogą wywierać siły bezpośrednio na jądro. Przyłożenie siły i obrazowanie (sekcja 5.3) są krytycznymi etapami tego eksperymentu, a siła potrzebna do deformacji jądra i wywołania znaczących konsekwencji biologicznych może być zależna od próbki. Wielkość siły w tym eksperymencie (0,8 nN i 1,4 nN) może być jeszcze większa, aby uruchomić mechano-wykrywanie jądra w mniej wrażliwych komórkach.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Nie ma żadnych konfliktów interesów, które można by zadeklarować.
Ten projekt jest finansowany przez UF Gatorade Award Start-up Package (X. T.), UFHCC Pilot Award (X. T. i Dr. Dietmar Siemann), UF Opportunity Seed Fund (X. T.) oraz UFHCC University Scholars Program (H. Y. Wang). Serdecznie dziękujemy za intelektualne dyskusje i wsparcie techniczne ze strony dr Jonathana Lichta (UFHCC), dr Rolfa Renne (UFHCC), dr Christophera Vulpe (UFHCC), dr Blanki Sharmy (BME), dr Marka Sheplaka (MAE i ECE), dr Daniela Ferrisa (BME), dr Malisy Sarntinoranont (MAE), dr Ashoka Kumara (MAE), dr Benjamina Keselowsky'ego (BME), dr Brenta Gila (RSC), dr Philipa Fenga (ECE), dr Gregory A. Hudalla (BME), dr Steven Ghivizzani (OSSM), dr Yenisel Cruz-Almei....
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
| Nazwa | Firma | Numer katalogowy | Komentarze |
|---|---|---|---|
| 0,05 % Trypsyna | Corning | 25-051-CI | |
| 25 cm2 kolba | Corning | 156340 | |
| 7-µ m mikrokulki karbonylowo-żelazowe o średniej średnicy | nie | ||
| Nie dotyczy A1R System konfokalny | Nikon | ||
| Karbonylowo-żelazowy w proszku CM | BASF | 30042253 | Mikrokulki magnetyczne |
| Pożywka hodowlana (RPMI-1640) | Komputer | ||
| z systemem operacyjnym Windows 10 | |||
| Tokai Hit | TIZB | ||
| Płodowa surowica bydlęca (FBS) | Gibco | 26140 | |
| Fiji ImageJ | Narodowe Instytuty Zdrowia i Laboratorium Oprzyrządowania | ||
| Szalka Petriego ze szklanym dnem | MatTek | P35G-1.5-14-C | |
| Magnes | K& J Magnetics, Inc. | D99-N52 | |
| Monochromatyczny Aparat | FLIR BFS-U3-70S7M-C | ||
| PLATFORMA OPROGRAMOWANIA NIS-Elements | Platforma oprogramowania | Nikon | |
| Maska Nucleus Maska makro | https://github.com/KOLIUG/Nuclear | ||
| ImageJ NucSpot Live 650 | Biotium | #40082 | Barwnik jądrowy |
| Penicylina-streptomycyna | Gibco | 15140122 | |
| Buforowany fosforanem sól fizjologiczna (PBS) | Gibco | 10010023 | |
| Ti2-E | Nikon | ||
| XYZ mover (pliki CAD) | https://github.com/KOLIUG/XYZ-mover |
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.