Method Article

Wizualizacja procedur gromadzenia danych terenowych dotyczących oceny narażenia i biomarkerów na potrzeby badania sieci interwencyjnej ds. zanieczyszczenia powietrza w gospodarstwach domowych w Indiach

DOI:

10.3791/64144

⸱

December 23rd, 2022

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Environmental Health Engineering, ICMR Center for Advanced Research on Air Quality, Climate and Health, Faculty of Public Health, Sri Ramachandra Institute of Higher Education and Research (Deemed University), 2Division of Environmental Health Sciences, University of California, Berkeley, 3Berkeley Air Monitoring Group, 4Division of International Epidemiology and Population Studies, National Institutes of Health, 5Gangarosa Department of Environmental Health, Rollins School of Public Health, Emory University, 6Department of Environmental and Radiological Health Sciences, Colorado State University, 7Department of Biostatistics and Informatics, Rollins School of Public Health, Emory University, 8Department of Disease Control, Faculty of Infectious and Tropical Diseases, London School of Hygiene and Tropical Medicine, 9Department of Global Health & Population, Harvard, T.H. Chan School of Public Health, 10Cardiovascular Division, Washington University School of Medicine, Washington University, 11Centro de Estudios en Salud, Universidad del Valle de Guatemala, 12Division of Pulmonary and Critical Care, School of Medicine, Johns Hopkins University

* These authors contributed equally

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Szczegółowo opisujemy spójne, wysokiej jakości procedury stosowane w procesach pobierania próbek powietrza i biologicznych w indyjskich obiektach terenowych podczas dużego randomizowanego kontrolowanego badania. Informacje uzyskane w wyniku nadzoru nad zastosowaniami innowacyjnych technologii, dostosowanych do oceny narażenia w regionach wiejskich, umożliwiają lepsze praktyki gromadzenia danych w terenie z bardziej wiarygodnymi wynikami.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tutaj prezentujemy wizualną reprezentację standardowych procedur zbierania danych na poziomie populacji na temat osobistego narażenia na zanieczyszczenie powietrza w gospodarstwach domowych (HAP) z dwóch różnych ośrodków badawczych w środowisku o ograniczonych zasobach w Tamil Nadu w Indiach. Pył zawieszony PM2,5 (cząstki o średnicy aerodynamicznej mniejszej niż 2,5 mikrona), tlenek węgla (CO) i sadza (BC) mierzono u matek w ciąży (M), innych dorosłych kobiet (OAW) i dzieci (C) w różnym czasie przez okres 4 lat. Ponadto przeprowadzono monitoring zużycia pieców (SUMs) za pomocą termometrów rejestrujących dane oraz pomiary zanieczyszczenia powietrza w otoczeniu. Ponadto z powodzeniem wykazano możliwość pobierania próbek biologicznych (moczu i zaschniętych plam krwi [DBS]) od uczestników badania w miejscach pracy w terenie. Opierając się na wynikach tego i wcześniejszych badań, zastosowane tu metody poprawiły jakość danych i pozwoliły uniknąć problemów z zanieczyszczeniem powietrza w gospodarstwach domowych i pobieraniem próbek biologicznych w sytuacjach ograniczonych zasobów. Ustanowione procedury mogą być cennym narzędziem edukacyjnym i zasobem dla naukowców prowadzących podobne badania nad zanieczyszczeniem powietrza i zdrowiem w Indiach i innych krajach o niskich i średnich dochodach (LMIC).

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Globalnie, narażenie na zanieczyszczenie powietrza w gospodarstwach domowych (HAP), głównie z gotowania na paliwo stałe, jest główną przyczyną zachorowalności i śmiertelności1,2,3. Gotowanie i ogrzewanie paliwami stałymi (biomasa, taka jak drewno, obornik, resztki pożniwne i węgiel) jest szeroko rozpowszechnione w krajach o niskich i średnich dochodach (LMIC), stwarzając różne problemy zdrowotne, środowiskowe i ekonomiczne. PM2.5 to 'cichy zabójca', występujący zarówno w pomieszczeniach, jak i na zewnątrz4,5. Jakość powietrza w pomieszczeniach w Indiach jest często znacznie gorsza niż jakość powietrza na zewnątrz i zyskała wystarczająco dużo uwagi, aby uznać ją za poważne zagrożenie dla zdrowia środowiskowego4. Niedostatek ilościowych danych dotyczących narażenia opartych na pomiarach utrudnił oceny globalnego obciążenia chorobami (GBD) związane z HAP6,7.

Obecne badania często ignorują fakt, że pomiar ekspozycji na HAP jest skomplikowany i różni się w zależności od wielu czynników, w tym rodzaju paliwa, rodzaju pieca i mieszanego użycia wielu czystych i nieczystych pieców, zjawisko znane jako "układanie pieców". Inne czynniki wpływające na ekspozycję to ilość zużytego paliwa, poziom wentylacji w kuchni, czas spędzony w pobliżu kuchenki, wiek i płeć8. Najszerzej mierzonym i prawdopodobnie najlepszym wskaźnikiem narażenia na HAP jest PM2,5; jednak ze względu na brak niedrogiego, przyjaznego dla użytkownika i niezawodnego oprzyrządowania, pomiar drobnego pyłu zawieszonego (PM2,5) był szczególnie trudny.

Różne badania wykazały pomiar poziomu pojedynczych lub wielu zanieczyszczeń powietrza przy użyciu różnych metod8,9,10,11,12. W ostatnich latach pojawiają się stosunkowo tanie czujniki, które są w stanie mierzyć te zanieczyszczenia w pomieszczeniach i otoczeniu. Jednak nie wszystkie z tych czujników nadają się do pracy w terenie z różnych powodów, w tym kosztów konserwacji, wyzwań związanych z wdrożeniem, problemów z porównywalnością z konwencjonalnymi metodami pomiarowymi, ograniczonych zasobów ludzkich do walidacji tych czujników pod kątem metod referencyjnych, trudności w regularnym sprawdzaniu jakości danych (za pośrednictwem chmury) oraz ograniczonych lub żadnych zdecentralizowanych możliwości rozwiązywania problemów. W wielu badaniach z tego typu pomiarami wykorzystano je jako wskaźnik zastępczy dla ekspozycji lub łącząc pomiary środowiskowe z rekonstrukcją ekspozycji za pomocą ocen aktywności w czasie8,9,12,13,14.

Monitorowanie osobiste - w którym monitor jest przenoszony przez osobę w czasie i przestrzeni - może lepiej uchwycić ich 'prawdziwą' całkowitą ekspozycję. Badania, które mierzą osobiste narażenie, często tylko krótko informują o swoich dokładnych protokołach, często w materiałach uzupełniających do manuskryptów naukowych9,12,13,14,15. Chociaż techniki wyszczególnione w tych badaniach zapewniają solidne ogólne zrozumienie metodologii doboru próby, często brakuje szczegółów etapów zbierania danych terenowych12,16.

W tych rezydencjach można monitorować wiele dodatkowych cech, oprócz stężeń zanieczyszczeń. Monitorowanie użytkowania pieców, metoda oceny czasu i intensywności użytkowania domowych urządzeń energetycznych, jest główną częścią wielu ostatnich ocen wpływu i narażenia16,17,18,19. Wiele z tych monitorów koncentruje się na pomiarze temperatury w punkcie spalania lub w pobliżu punktu spalania na kuchenkach. Chociaż stosowane są termopary i termistory, brakuje protokołów operacyjnych dla monitorów, w tym sposobu najlepszego umieszczania ich na kuchenkach, aby uchwycić zmienność wzorców użytkowania kuchenek.

Biomonitoring, podobnie, jest skutecznym narzędziem do oceny narażenia środowiskowego, chociaż kilka czynników wpływa na wybór optymalnej matrycy biologicznej20. W idealnych warunkach pobieranie próbek musi być nieinwazyjne lub minimalnie inwazyjne. Zastosowane metody powinny zapewnić łatwość obsługi, nierestrykcyjną wysyłkę i przechowywanie, dobre dopasowanie proponowanego biomarkera do matrycy biologicznej, stosunkowo niskie koszty i brak obaw etycznych.

Pobieranie próbek moczu ma kilka ważnych zalet dla biomonitoringu. Podobnie jak w przypadku innych technik pobierania próbek, istnieje szereg potencjalnych metod. Zbieranie moczu z pustki przez 24 godziny może być uciążliwe dla uczestników, prowadząc do nieprzestrzegania zasad pobierania próbek20,21. W takich przypadkach zaleca się pobieranie próbek wyrywkowych, porannych pustek lub inne "wygodne" pobieranie próbek. Objętość zbieranego moczu może być poważną wadą podczas pobierania próbek punktowych, prowadząc do zmienności stężeń endogennych i egzogennych substancji chemicznych. W tym przypadku korekta za pomocą stężenia kreatyniny w moczu jest powszechnie stosowaną metodą korekty rozcieńczenia22.

Innym często pobieranym próbką biologiczną jest krew żylna. Próbki krwi żylnej są często trudne do uzyskania do biomonitoringu; Są natrętne, wywołują strach i wymagają odpowiedniego obchodzenia się z próbkami, przechowywania i transportu. Alternatywne podejście wykorzystujące suche plamy krwi (DBS) może być przydatne do pobierania próbek od dorosłych i dzieci w celu biomonitoringu23.

Istnieje znaczna luka w literaturze pomiędzy prostym opisem metod terenowych a publikacją szczegółowych, powtarzalnych instrukcji dotyczących użytkowania i wdrażania monitorów, które odzwierciedlają prawdziwą złożoność zbierania danych terenowych z próbek o gwarantowanej jakości24,25. W niektórych badaniach przedstawiono standardowe procedury operacyjne (SOP) do pomiaru zanieczyszczeń powietrza (w pomieszczeniach i otoczenia) oraz monitorowania użytkowania kuchenki.

Jednak bardzo rzadko opisuje się podstawowe kroki związane z pomiarami terenowymi, wsparciem laboratoryjnym oraz transportem przyrządów i próbek do monitorowania8,11,25. Wyzwania i ograniczenia związane z monitorowaniem w terenie, zarówno w warunkach wysokich, jak i niskich zasobów, mogą być odpowiednio uchwycone za pomocą wideo, które może uzupełnić pisemne procedury operacyjne i zapewnić bardziej bezpośrednią metodę pokazania, w jaki sposób wykonywane są urządzenia oraz techniki pobierania próbek i analizy.

W randomizowanym, kontrolowanym badaniu Household Air Pollution Intervention Network (HAPIN), użyliśmy wideo i pisemnych protokołów, aby opisać procedury pomiaru trzech zanieczyszczeń (PM2.5, CO i BC), monitorowania użytkowania pieca i pobierania próbek biologicznych. HAPIN polega na stosowaniu zharmonizowanych protokołów, które wymagają ścisłego przestrzegania SOP w celu maksymalizacji jakości danych z próbek zebranych w wielu punktach czasowych w czterech ośrodkach badawczych (w Peru, Rwandzie, Gwatemali i Indiach).

Kryteria projektowania badań, wyboru miejsca i rekrutacji są opisane wcześniej24,26. Badanie HAPIN przeprowadzono w czterech krajach; Clasen i wsp. szczegółowo opisali ustawienia badania26. W każdym ośrodku badawczym zrekrutowano 800 gospodarstw domowych (400 interwencyjnych i 400 kontrolnych) z kobietami w ciąży w wieku od 18 do 35 lat, które są w 9-20 tygodniu ciąży, używają biomasy do gotowania w domu i są niepalące. W podgrupie tych gospodarstw domowych (~120 na kraj) do tego badania włączono również inne dorosłe kobiety.

Po rekrutacji odbyło się w sumie osiem wizyt. Pierwsza, na początku badania (BL), wystąpiła przed randomizacją. Kolejne siedem zostało podzielonych według okresu przed urodzeniem (w 24-28 tygodniu ciąży [P1], 32-36 tygodnia ciąży [P2]), przy urodzeniu (B0) i po urodzeniu (3 miesiące [B1], 6 miesięcy [B2], 9 miesięcy [B3] i 12 miesięcy [B4]). Dla M przeprowadzono trzy oceny (BL, P1 i P2), dla OAW sześć ocen (BL, P1, P2, B1, B2 i B4), a dla C przeprowadzono cztery oceny (B0, B1, B2 i B4). W B0 przeprowadzono oceny biomarkerów i stanu zdrowia, podczas gdy podczas wizyty B3 przeprowadzono tylko oceny stanu zdrowia.

Wszystkie cztery kraje stosowały identyczne protokoły. W tym manuskrypcie opisujemy kroki, jakie podjęto w Indiach. Badanie przeprowadzono w dwóch lokalizacjach w Tamil Nadu: Kallakurichi (KK) i Nagapattinam (NP). Miejsca te znajdują się w odległości od 250 do 500 kilometrów od głównego ośrodka badawczego na Wydziale Inżynierii Zdrowia Środowiskowego w Instytucie Szkolnictwa Wyższego i Badań Sri Ramachandra (SRIHER) w Chennai w Indiach. Złożoność protokołów gromadzenia danych w terenie wymaga zaangażowania wielu pracowników o różnym poziomie umiejętności i doświadczenia.

Prezentujemy pisemny i wizualny opis kroków związanych z szacowaniem próbek mikrośrodowiskowych i osobistych ekspozycji u ciężarnych matek (M), innych/starszych dorosłych kobiet (OAW) i dzieci (C) na drobny pył zawieszony, tlenek węgla (CO) i węgiel (BC). Przedstawiono również protokoły terenowe dotyczące (1) monitorowania jakości powietrza atmosferycznego za pomocą monitorów klasy referencyjnej i tanich czujników, (2) długoterminowego monitorowania użytkowania pieców w piecach konwencjonalnych i na gaz płynny oraz (3) pobierania próbek biologicznych (moczu i DBS) do biomonitoringu. Obejmuje to metody transportu, przechowywania i archiwizowania próbek środowiskowych i biologicznych.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Instytucjonalna Komisja Etyki w Instytucie Szkolnictwa Wyższego i Badań Sri Ramachandra (IEC-N1/16/JUL/54/49), Emory University Institutional Review Board (00089799), oraz Indyjska Rada Badań Medycznych-Komisja Przesiewowa Ministerstwa Zdrowia (5/8/4-30/(Env)/ Indo-US/2016-NCD-I) zatwierdziły badanie HAPIN. Badanie HAPIN zostało zidentyfikowane jako NCT02944682 na clinicaltrials.gov. Pisemne świadome zgody zostały zebrane od uczestników badania przed ich udziałem, a badanie zostało przeprowadzone zgodnie z wytycznymi etycznymi.

UWAGA: Formularze opisu przypadku (CRF) podawane podczas pobierania próbek i zbierania danych są dostępne w bazie danych RedCap, przechowywanej na Uniwersytecie Emory i są utrzymywane na podstawie umowy o udostępnianiu danych między wszystkimi współpracownikami, która może być dostarczona czytelnikom na żądanie.

1. Instrumenty i materiały

  1. Do monitorowania zanieczyszczenia powietrza należy używać następujących przyrządów: mikrowagi do ważenia filtrów, do mikrośrodowiska/osobistego pobierania próbek - Enhanced Children's MicroPEM (ECM) dla PM2,5, transmisometr optyczny do pomiaru sadzy (BC), rejestratory danych dla radiolatarni CO i Bluetooth, rejestratory beaconów do pośredniego pomiaru PM2,5 (podczas każdej wizyty - BL, P1, P2, B1, B2 i B4), połączony monitor grawimetryczny i nefelometryczny do pomiarów PM2,5 w otoczeniu oraz rejestratory temperatury do monitorowania użytkowania pieca.
  2. Do biomonitoringu należy używać następujących przyrządów: chłodziarki i torby na szczepionki do wysyłki próbek biologicznych, karty oszczędzające białko, karty wskaźników wilgotności, lancet dla dorosłych, bezpieczny lancet dla niemowląt i rurki kapilarne (40 μl).

2. Kondycjonowanie i ważenie filtrów

  1. Do obsługi filtrów używaj czystych, bezpudrowych rękawiczek. Sprawdź filtry (wielkość porów 2 μm, średnica 15 i 47 mm) pod kątem uszkodzeń za pomocą lightboxa i umieść sprawdzone filtry w oczyszczonym zbiorniku filtra w klimatyzowanym pomieszczeniu (19-23 °C i 35%-45% wilgotności względnej [RH]) na 24 godziny.
  2. Połóż czysty kawałek folii na biurku i włącz mikrowagę. Ustaw jednostkę skali na miligramy (0,001 mg) i postępuj zgodnie z kalibracją wewnętrzną.
  3. Zapisz datę/godzinę, nazwisko technika, wilgotność względną, temperaturę, numer partii filtra, rozmiar filtra i identyfikator filtra w arkuszu wprowadzania danych.
  4. Weź kondycjonowany filtr i dejonizuj przez 10 sekund. Ostrożnie umieść filtr na tacy wagowej i zapisz masę jako "Waga 1" w CRF (Rysunek uzupełniający 1).
  5. Wyjmij filtr, umieść go na szalce Petriego/uchwycie filtra i poczekaj, aż waga powróci do zera, zanim zważysz następny filtr.
  6. Powtórz kroki 2.4 i 2.5 i wprowadź je jako "Waga 2" w CRF.

3. Mikrośrodowisko/osobiste pobieranie próbek powietrza

UWAGA: Szczegółowy zarys oprzyrządowania i kroków związanych z mikrośrodowiskiem/osobistym pobieraniem próbek powietrza znajduje się na rysunku uzupełniającym 2.

  1. W celu osobistego monitorowania umieść instrumenty w kamizelce (Rysunek 1 Ai) i zainstruuj uczestnikowi, aby nosił ją przez 24 godziny, z wyjątkiem kąpieli i snu.
  2. Podczas kąpieli i snu poinstruuj uczestników, aby umieścili kamizelkę w odległości <1 m na specjalnie zaprojektowanym metalowym stojaku (Rysunek 1Aii) dostarczonym przez zespół terenowy.
  3. Do monitorowania mikrośrodowiska wybierz odpowiednie miejsce i umieść metalowe stojaki z instrumentami (Rysunki 1C,D; Tabela uzupełniająca 1) na wysokości 1.5 m nad poziomem gruntu, w miarę możliwości w odległości 1 m od drzwi i okien oraz 1 m od strefy spalania głównej kuchenki (w przypadku umieszczenia w kuchni).
  4. Wykonaj 5-minutowy spacer po obszarze monitorowania, zapisz czas START i KONIEC dla wszystkich przyrządów monitorujących (PM2.5, BC, CO oraz monitor czasu i lokalizacji) w odpowiednich CRF.
  5. W dniu usunięcia (Dzień 2, po 24 godzinach) należy zebrać i zawinąć narzędzia w folię aluminiową i umieścić je w zamykanym pokrowcu do transportu do biura terenowego. Do czasu wyjęcia filtra próbnik ECM należy umieścić w chłodziarce (w celu utrzymania łańcucha chłodniczego).
  6. Pomiar PM2,5
    UWAGA: Użyj ECM, który dobrze nadaje się do tego zastosowania ze względu na swoje niewielkie rozmiary (wysokość: 12 cm; szerokość: 6,7 cm) i wagę (~150 g). ECM pobiera próbki nefelometryczne i grawimetryczne z prędkością 0,3 l/min (przez okres do 48 godzin), zasysając powietrze przez impaktor przymocowany do kasety zawierającej 15-milimetrowe filtry politetrafluoroetylenowe19,26,27.
    1. Wyczyść wszystkie części ECM (głowica wlotowa, elementy udaru, zamek kasetowy w kształcie litery U) za pomocą wacika nasączonego alkoholem (70% alkoholu izopropylowego) i uruchom próbnik za pomocą oprogramowania ECM (np. stacji dokującej MicroPEM).
    2. Umieść nasadkę kalibracyjną na wlocie ECM i podłącz przepływomierz z filtrem HEPA do nasadki kalibracyjnej.
    3. Po ustawieniu zestawu kalibracyjnego naciśnij przycisk Start i odczekaj 5 minut, aż się ustabilizuje. Wyreguluj natężenie przepływu (w zakresie 5% od 0.3 l/min) i zapisz w CRF-H48.
    4. Podłącz filtr HEPA bezpośrednio do wlotu ECM, wyreguluj przesunięcie nefelometru, aż wartość wskaże 0,0 i zapisz odczyt w CRF-H48.
    5. Ustaw program na 24 godziny i naciśnij przycisk Submit Calibration Values; ECM jest teraz gotowy do pobierania próbek.
    6. Po pobraniu próbek należy pozostawić pobrane ECM w temperaturze pokojowej na co najmniej 20 minut i zapisać natężenie przepływu po pobraniu próbek w CRF-H48. Pobierz i zapisz dane ECM zgodnie z konwencją nazw plików.
    7. Wyjmij filtr, umieść go w uchwycie filtra, a następnie przechowuj w temperaturze -20 °C.
  7. Pomiar sadzy (BC)
    1. Użyj transmisometru, aby zmierzyć tłumienie światła przez filtr o długości fali 880 nm19,26,27.
    2. Włącz i ustabilizuj na 15 minut. Upewnij się, że wkłady o odpowiednim rozmiarze (tj. wkłady 15 i 47 mm) są dostępne zarówno w szczelinie ślepej, jak i na próbki w przyrządzie BC.
    3. Wykonaj skanowanie na neutralnym filtrze o gęstości (ND) i ślepej próbie o przypisanym identyfikatorze (rysunek uzupełniający 3 i tabela uzupełniająca 2).
    4. Po zeskanowaniu ślepego filtra umieść ślepą próbę laboratoryjną w gnieździe wkładu na próbkę nad dyfuzorem próbki i włóż do szczeliny przyrządu w pozycji 2.
    5. Usuń ślepą próbę laboratoryjną i kontynuuj skanowanie za pomocą filtrów testowych i filtrów do próbek.
    6. Po zakończeniu skanowania filtra wyjmij filtr i zwróć go do szalki Petriego/uchwytów filtra. Wybierz zeskanowane dane, kliknij przycisk Zaakceptuj, a następnie Zapisz dane.
  8. Pomiar tlenku węgla (CO)
    UWAGA: Przyrząd CO jest mały (mniej więcej wielkości dużego długopisu), może rejestrować w sposób ciągły przez ~ 32 000 punktów, ma zakres 0-1 000 ppm i był używany do oceny ekspozycji i HAP w różnych innych działaniach monitorujących19,26,27.
    1. Uruchom i skonfiguruj rejestrator danych CO na 1 minutę za pomocą oprogramowania. Na ekranie pojawi się komunikat "Rejestrator CO został pomyślnie skonfigurowany". Przyrząd jest gotowy do pobierania próbek.
    2. Po próbkowaniu otwórz rejestrator CO za pomocą oprogramowania, naciśnij Stop, aby zatrzymać rejestrator danych USB i zapisz dane po pobraniu.
    3. Skalibruj rejestrator CO
      1. Ustaw rejestrator CO z częstotliwością próbkowania 1 minuty i umieść go w skrzynce kalibracyjnej, tak aby otwór wlotowy czujników był skierowany w stronę portu wlotowego powietrza w skrzynce kalibracyjnej.
      2. Na 5 minut ustawić natężenie przepływu powietrza o niskiej czystości powietrza lub powietrza w pomieszczeniu na 2 l/min. Zanotuj czas rozpoczęcia i zakończenia. Zmniejsz przepływ powietrza do 1 l/min. Ponownie zanotuj czas rozpoczęcia i zakończenia.
      3. Powtórz procedurę z gazem wzorcowym do ustawiania zakresu (50-150 ppm normy CO w powietrzu o zerowej klasie), a następnie z powietrzem o zerowej klasie, jak opisano w poprzednim kroku.
      4. Pobierz skalibrowane dane do określonego folderu. Otwórz plik danych kalibracyjnych i wprowadź dane monitora rejestratora CO do CRF-H47.
  9. Rejestrator czasu i lokalizacji (TLL)
    UWAGA: Użyj dwóch typów przyrządów Bluetooth do monitorowania czasu i lokalizacji dziecka. Poproś dziecko, aby założyło kamizelkę zawierającą dwa monitory czasu i lokalizacji (TLM) wielkości monety, połączone z rejestratorem znajdującym się w pobliżu ECM i kamizelką do pobierania próbek matki, jak pokazano na Rysunek 1Aiii. Oblicz narażenie dziecka, całkując odpowiednie stężenia obszaru w czasie spędzonym w tym miejscu19,26,27.
    1. Naładuj power bank i upewnij się, że rejestrator działa, łącząc się z nim.
    2. Monitor czasu i lokalizacji (TLM)
      1. Włóż baterię CR2032 do monitora (kontrolki powinny mignąć kilka razy, jeśli bateria ma wystarczającą moc).
      2. W przypadku modelu TLM "O" naciśnij miękką osłonę, aby usłyszeć kliknięcie, a zielone światło powinno migać, wskazując, że TLM jest teraz włączony i przesyła swój sygnał. W przypadku modelu TLM "EM" naciśnij miękką osłonę, aby włączyć pierwszy tryb (lampka powinna migać na zielono). Naciśnij ponownie, aby przejść do trybu środkowego (lampka powinna ponownie migać na zielono).
      3. Po próbkowaniu pobierz dane z dysku rozruchowego, który pojawia się na karcie SD rejestratora. Skopiuj i zapisz pliki z określonego folderu "TLL".

4. Monitorowanie zużycia pieca

  1. Gromadzenie szczegółowych informacji na temat wzorców użytkowania pieców za pomocą ankiet i wdrażania obiektywnych środków opartych na czujnikach. Umieść rejestratory temperatury zarówno na piecach na LPG, jak i na biomasę18,19,28. Szczegółowy zarys oprzyrządowania i kroków związanych z monitorowaniem użytkowania pieca podczas gromadzenia danych w laboratorium centralnym, laboratorium terenowym i działaniach w terenie przedstawiono na rysunku uzupełniającym 4.
  2. Umieść sondę termopary w pobliżu kłopotliwej strefy kuchenki, jak pokazano na rysunku uzupełniającym 5, i zainstaluj kropki.
  3. Otwórz aplikację Geocene i wprowadź nazwę misji, interwał próbkowania, identyfikator gospodarstwa domowego, typy pieców, szczegóły losowania, kampanię, tagi i notatki. Naciśnij przycisk Rozpocznij nową misję. Zapisz szczegóły instalacji w CRF-H40.
  4. Co 2 tygodnie pobieraj dane za pomocą aplikacji i przesyłaj je przez Bluetooth z Dot na serwer w chmurze. Zapisz informacje w CRF-H40.

5. Monitorowanie otoczenia

UWAGA: Przyrząd PM2.5 rejestruje PM2.5 w czasie rzeczywistym i ma wbudowany filtr 47 mm, który może zbierać PM2.5 do oceny grawimetrycznej19,26,29. Szczegółowy zarys oprzyrządowania i kroków związanych z monitorowaniem otoczenia podczas gromadzenia danych w laboratorium centralnym, laboratorium terenowym i działaniach w terenie przedstawiono na rysunku uzupełniającym 6.

  1. Postępuj zgodnie z wytycznymi US EPA30 na instrumencie i umiejscowieniu wlotu: a) >2 m od ścian; b) >10 m od drzew; c) 2-7 m nad ziemią; oraz d) >2 m od jezdni.
  2. Zamontuj przyrząd do pomiaru ciśnienia PM2.5 na platformie z uziemieniem. Upewnij się, że nie ma zanieczyszczenia powietrza w tle otoczenia i wprowadź szczegóły pobierania próbek w CRF-H46.
    1. W opcji menu ustaw interwał próbkowania na 5 min. Zanotuj czas rozpoczęcia i wykonaj kalibrację przepływu przy użyciu filtra zerowego. Zbieraj dane w czasie rzeczywistym przez 6 dni.
    2. W dniu rozpoczęcia pobierania próbek grawimetrycznych pobierz i zapisz dane w czasie rzeczywistym.
    3. Wyjmij wcześniej zainstalowany filtr zerowy i wyczyść uchwyt filtra za pomocą chusteczek laboratoryjnych. Umieść wstępnie zważony filtr i napełnij CRF-H46.
    4. Po 24 godzinach zatrzymaj próbnik i pobierz dane w czasie rzeczywistym. Zapisz informacje o pobieraniu próbek w CRF-H46. Wyjmij filtr, owiń folią aluminiową i umieść go w zamykanej torbie podczas transportu w łańcuchu chłodniczym.

6. Biomonitoring

  1. Pobieranie, przetwarzanie i przechowywanie próbek moczu
    UWAGA: Postępuj zgodnie z krokami związanymi z pobieraniem porannych próbek moczu z mimoczu w domu uczestnika zgodnie z wytycznymi amerykańskiego CDC19,31,32. Pobranie próbek moczu od matek w ciąży (wizyty BL, P1 i P2) oraz innych dorosłych kobiet (wizyty BL, P1, P2, B1, B2 i B4); u dzieci (wizyty B1, B2 i B4) z podaniem odpowiedniego CRF-B10 w 2 dniu. Szczegółowy zarys etapów biomonitoringu w laboratorium centralnym, laboratorium terenowym i działaniach terenowych przedstawiono na rysunku uzupełniającym 7.
    1. W celu pobrania próbki moczu należy dostarczyć kubek do zbierania moczu (M i OAW) w dniu 1. Podobnie, poinstruuj matkę, aby następnego dnia rano pobrała próbkę moczu dziecka w worku na mocz lub bezpośrednio do kubka i przechowywała ją w torbie na szczepionkę.
    2. W laboratorium polowym pobrane próbki moczu należy przechowywać w temperaturze 1-8 °C. Przed podaniem rozmrozić kubek na mocz.
    3. Aby podsycić, przetwarzaj jedną próbkę moczu na raz. Odessać 2 ml próbki i dodać do dwóch kriowialiów o pojemności 4 ml, 5 ml do dwóch kriowiali po 10 ml, 15 ml do probówki archiwalnej i przechowywać w temperaturze -20 °C.
    4. Tę samą procedurę poddawania stosuje się w odniesieniu do ślepej próby polowej (wody).
  2. Zbieranie, suszenie i przechowywanie DBS
    UWAGA: Przeszkol geodetów w zakresie pobierania DBS poprzez nakłucie palca u matek w ciąży (wizyty BL, P1 i P2) i innych dorosłych kobiet (wizyty BL, P1, P2, B1, B2 i B4) oraz nakłucia pięty lub palca u dzieci (wizyty B0, B1, B2 i B4), zgodnie z zaleceniami WHO33,34. Szczegółowa procedura pobierania DBS od M i OAW znajduje się w załączniku H do pliku uzupełniającego.
    1. Dla dziecka należy pobrać nakłucie pięty DBS zgodnie z wytycznymi WHO, używając odpowiednich lancetów.
    2. Wybierz lewą lub prawą piętę i przetrzyj miejsce nakłucia wacikiem nasączonym alkoholem.
    3. Trzymaj lancet w pozycji poziomej w miejscu nakłucia skóry i nakłucia. Po nakłuciu zetrzyj pierwszą kroplę krwi sterylną bawełnianą gazą.
    4. Umieść rurkę kapilarną w pobliżu miejsca nakłucia na warstwie krwi i pozwól krwi przepływać do rurki poprzez działanie kapilarne.
    5. Po napełnieniu wystarczającej objętości krwi w rurce kapilarnej natychmiast nałóż krew w okręgu karty oszczędzania białka.
    6. Pozostaw próbkę do wyschnięcia na powietrzu (przez noc) w kierunku poziomym w temperaturze pokojowej.
    7. Upewnij się, że plamy krwi mają ciemnobrązowy kolor i nie są widoczne żadne czerwone obszary.
    8. Po wysuszeniu umieścić kartę DBS w zamykanej torbie na próbki biologiczne zawierającej środek osuszający (co najmniej dwie saszetki) ze wskaźnikiem wilgotności i przechowywać w temperaturze -20 °C.

7. Łańcuch dowodowy (COC) próbkowanych filtrów

  1. Zapoznaj się z plikiem uzupełniającym, aby uzyskać szczegółowe instrukcje. Kroki wyjaśniające kondycjonowanie filtra są opisane w załączniku A, mikrośrodowisko/pobieranie próbek powietrza z powietrza PM2,5 jest obecne w załączniku B, pomiar BC jest opisany w załączniku C, pomiar CO w załączniku D, monitorowanie czasu i lokalizacji w załączniku E, monitorowanie użytkowania pieca w załączniku F, monitorowanie otoczenia w załączniku G, biomonitoring w załączniku Horaz transport próbek w załączniku I. Wykaz stosowanych CRF znajduje się w tabeli uzupełniającej 3.
    UWAGA: Rysunek 2A pokazuje ECM pobrany po pobraniu próbki i owinięty folią aluminiową. Owinięte filtry zapakowano w oddzielne worki na próbki biologiczne i umieszczono w workach na szczepionki zawierających wstępnie zamrożony żelowy pak. Pobrane próbki filtrów przetransportowano do laboratorium terenowego (Rysunek 2B). Jak pokazano w Rysunek 2C, filtry transportowane z terenu były przechowywane w głębokiej zamrażarce (-20 °C) w laboratorium polowym i przechowywane w nienaruszonym stanie do momentu transportu do laboratorium centralnego. Co 15 do 30 dni próbki były wysyłane drogą lądową do laboratorium centralnego; Pobrane próbki filtrów zapakowano w suchy lód i żelowe opakowania z COC. Po otrzymaniu próbek z biura terenowego, próbki zostały sprawdzone krzyżowo z COC i zarchiwizowane w zamrażarce (-20 °C).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Metodologie pobierania próbek powietrza w mikrośrodowisku/na osobach:
Rysunek 1Ai pokazuje ciężarną matkę noszącą spersonalizowaną kamizelkę podczas 24-godzinnego okresu próbkowania. Kamizelka zawiera ECM, rejestrator CO oraz rejestrator czasu i lokalizacji wraz z power bankiem. Upewniono się, że uczestnicy nosili kamizelkę przez cały okres pobierania próbek, z wyjątkiem kąpieli i snu. Stojak, który został dostarczony do zawieszenia kamizelki na obrzeżach spania, ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zademonstrowaliśmy i wizualnie przedstawiliśmy standardowe procedury gromadzenia danych na poziomie populacji na temat osobistego narażenia na zanieczyszczenie powietrza w gospodarstwach domowych w wielonarodowym badaniu HAPIN19, 24. Opisane w niniejszym dokumencie metody pobierania próbek środowiskowych i biomarkerów w terenie są odpowiednie i wykonalne, w szczególności w populacjach wrażliwych w warunkach ograniczonych zasobów, gdzie narażenie na PM2,5

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

*4 Ustalenia i wnioski zawarte w niniejszym raporcie są ustaleniami i wnioskami autorów i niekoniecznie reprezentują oficjalne stanowisko Narodowych Instytutów Zdrowia Stanów Zjednoczonych, Departamentu Zdrowia i Opieki Społecznej lub Fundacji Billa i Melindy Gatesów. Agencje finansujące nie odgrywały żadnej roli w gromadzeniu i analizie danych przedstawionych w dokumencie.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Badacze chcieliby podziękować członkom komitetu doradczego - Patrickowi Brysse, Donnie Spiegelman i Joelowi Kaufmanowi - za ich cenne spostrzeżenia i wskazówki podczas realizacji badania. Pragniemy również podziękować całemu personelowi badawczemu i uczestnikom badania za ich zaangażowanie i udział w tym ważnym badaniu.

To badanie zostało sfinansowane przez U.S. National Institutes of Health (umowa o współpracy 1UM1HL134590) we współpracy z Fundacją Billa i Melindy Gatesów (OPP1131279). Multidyscyplinarna, niezależna Rada ds. Monitorowania Danych i Bezpieczeństwa (DSMB) powołana przez Narodowy Instytut Serca, Płuc i Krwi (NHLBI) monitoruje jakość danych i chroni bezpieczeństwo pacjentów włączonych do badania HAPIN. NHLBI DSMB: Nancy R. Cook, Stephen Hecht, Catherine Karr (przewodnicząca), Joseph Millum, Nalini Sathiakumar, Paul K. Whelton, Gail Weinmann i Thomas Croxton (sekretarze wykonawczy). Koordynacja programu: Gail Rodgers, Fundacja Billa i Melindy Gatesów; Claudia L. Thompson, Narodowy Instytut Nauk o Zdrowiu Środowiskowym; Mark J. Parascandola, Narodowy Instytut Raka; Marion Koso-Thomas, Narodowy Instytut Zdrowia Dziecka i Rozwoju Człowieka im. Eunice Kennedy Shriver; Joshua P. Rosenthal, Międzynarodowe Centrum Fogarty; Koncepcja R. Nierras, Biuro Koordynacji Strategicznej NIH Wspólny Fundusz; Katherine Kavounis, Dong-Yun Kim, Antonello Punturieri i Barry S. Schmetter, NHLBI.

HAPIN Badacze: Vanessa Burrowes, Alejandra Bussalleu, Devan Campbell, Eduardo Canuz, Adly Castañaza, Howard Chang, Yunyun Chen, Marilú Chiang, Rachel Craik, Mary Crocker, Victor Davila-Roman, Lisa de las Fuentes, Oscar De León, Ephrem Dusabimana, Lisa Elon, Juan Gabriel Espinoza, Irma Sayury Pineda Fuentes, Dina Goodman, Meghan Hardison, Stella Hartinger, Phabiola M Herrera, Shakir Hossen, Penelope Howards, Lindsay Jaacks, Shirin Jabbarzadeh, Abigail Jones, Katherine Kearns, Jacob Kremer, Margaret A Laws, Pattie Lenzen, Jiawen Liao, Fiona Majorin, McCollum, John McCracken, Julia N McPeek, Rachel Meyers, Erick Mollinedo, Lawrence Moulton, Luke Naeher, Abidan Nambajimana, Florien Ndagijimana, Azhar Nizam, Jean de Dieu Ntivuguruzwa, Aris Papageorghiou, Usha Ramakrishnan, Davis Reardon, Barry Ryan, Sudhakar Saidam, Priya Kumar, Meenakshi Sundaram, Om Prashanth, Jeremy A Sarnat, Suzanne Simkovich, Sheela S Sinharoy, Damien Swearing, Ashley Toenjes, Jean Damascene Uwizeyimana, Viviane Valdes, Kayla Valentine, Amit Verma, Lance Waller, Megan Warnock, Wenlu Ye.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Lancet BD dla dorosłychKolekcja BD Biosciences366594DBS z palca
Bezpieczny lancet dla niemowląt BD QuikheekBD Biosciences368100 & 368101Nakłucie pięty Kolekcja DBS
BeaconRoximityO/EMMonitor czasu i lokalizacji [TLM] (monitor osobisty)
Beacon LoggerBerkley Grupa monitorowania powietrzaxxxxRejestrator czasu i lokalizacji [TLL] (pomiar pośredni)
Crfigure-materials-1do ProMed Pelican BagPeli Biothermal USATorba termoizolacyjna 
Ulepszony MicroPEM dla dzieci (ECM) RTI International, Durham, NC, USxxxxOsobisty monitor e-samplera PM2.5
Met One Instruments9800Pośredni pomiar otoczenia PM2.5
Geocene Geocene Inc., Vallejo, CAxxxxdo monitorowania użytkowania w piecu
Karta wskazująca wilgotnośćDESSICARE, INC.04BV14C10Wskaźnik integralności próbki
LascarLascar ElectronicsEL-USB-300 Rejestrator tlenku węgla (CO)
Rurki kapilarne zbierające PTS - 40 i mikro; LPTS collect2866Aby pobrać nakłucie pięty DBS od dzieci
SartoriusSartorius Lab Instruments, GmbH & Co, NiemcyMikrowaga MSA6-6S-000-DF(filtry wagowe)
SootScanTM Magee Scientific Co, Berkeley, USAOT21Pomiar sadzy Worek
na szczepionkęApex International, IndieAIVC-46 Torba na szczepionki
Karta oszczędzania białka Whatman 903GE Healthcare Life Sciences10534612Pobieranie próbek krwi włośniczkowej (sucha plamka krwi)

References

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Odo, D. B., Yang, I. A., Knibbs, L. D. A systematic review and appraisal of epidemiological studies on household fuel use and its health effects using demographic and health surveys. International Journal of Environmental Research and Public Health. 18 (4), 1411(2021).
  2. Pope, D., et al. Are cleaner cooking solutions clean enough? A systematic review and meta-analysis of particulate and carbon monoxide concentrations and exposures. Environmental Research Letters. 16 (8), 083002(2021).
  3. Smith, K. R., Pillarisetti, A. Household air pollution from solid cookfuels and its effects on health. Injury Prevention and Environmental Health. , at https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK525225/ (2017).
  4. Balakrishnan, K., et al. Air pollution from household solid fuel combustion in India: an overview of exposure and health related information to inform health research priorities. Global Health Action. 4 (1), 5638(2011).
  5. Balakrishnan, K., et al. State and national household concentrations of PM2.5 from solid cookfuel use: Results from measurements and modeling in India for estimation of the global burden of disease. Environmental Health. 12 (1), 77(2013).
  6. Corsi, D. J., et al. Prospective Urban Rural Epidemiology (PURE) study: Baseline characteristics of the household sample and comparative analyses with national data in 17 countries. American Heart Journal. 166 (4), 636-646 (2013).
  7. Keller, J. P., et al. A hierarchical model for estimating the exposure-response curve by combining multiple studies of acute lower respiratory infections in children and household fine particulate matter air pollution. Environmental Epidemiology. 4 (6), 119(2020).
  8. Arku, R. E., et al. Characterizing exposure to household air pollution within the Prospective Urban Rural Epidemiology (PURE) Study. Environment international. 114, 307-317 (2018).
  9. Jack, D. W., et al. Ghana randomized air pollution and health study (GRAPHS): study protocol for a randomized controlled trial. Trials. 16 (1), 420(2015).
  10. Liang, L., et al. Assessment of personal exposure to particulate air pollution: The first result of City Health Outlook (CHO) project. BMC Public Health. 19 (1), 711(2019).
  11. Chowdhury, S., et al. Indian annual ambient air quality standard is achievable by completely mitigating emissions from household sources. Proceedings of the National Academy of Sciences. 116 (22), 10711-10716 (2019).
  12. Checkley, W., et al. Effects of a household air pollution intervention with liquefied petroleum gas on cardiopulmonary outcomes in Peru. A randomized controlled trial. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 203 (11), 1386-1397 (2021).
  13. Ranzani, O. T., et al. Association between ambient and household air pollution with carotid intima-media thickness in peri-urban South India: CHAI-Project. International Journal of Epidemiology. 49 (1), 69-79 (2020).
  14. Ranzani, O. T., et al. Personal exposure to particulate air pollution and vascular damage in peri-urban South India. Environment International. 139, 105734(2020).
  15. Balakrishnan, K., et al. Establishing integrated rural-urban cohorts to assess air pollution-related health effects in pregnant women, children and adults in Southern India: an overview of objectives, design and methods in the Tamil Nadu Air Pollution and Health Effects (TAPHE) study. BMJ Open. 5 (6), 008090(2015).
  16. Shupler, M., et al. Multinational prediction of household and personal exposure to fine particulate matter (PM2.5) in the PURE cohort study. Environment International. 159, 107021(2022).
  17. Smith, K. R. Effect of reduction in household air pollution on childhood pneumonia in Guatemala (RESPIRE): A randomised controlled trial. The Lancet. 378 (9804), 1717-1726 (2011).
  18. Pillarisetti, A., et al. Patterns of stove usage after introduction of an advanced cookstove: The long-term application of household sensors. Environmental Science and Technology. 48 (24), 14525-14533 (2014).
  19. Johnson, M. A., et al. Air pollutant exposure and stove use assessment methods for the household air pollution intervention network (HAPIN) trial. Environmental Health Perspectives. 128 (4), 047009(2020).
  20. Barr, D. B., Wang, R. Y., Needham, L. L. Biologic monitoring of exposure to environmental chemicals throughout the life stages: requirements and issues for consideration for the National Children's Study. Environmental Health Perspectives. 113 (8), 1083-1091 (2005).
  21. Puttaswamy, N., et al. Cross-validation of biomonitoring methods for polycyclic aromatic hydrocarbon metabolites in human urine: Results from the formative phase of the household air pollution intervention network (HAPIN) trial in India. Journal of Chromatography B. 1154, 122284(2020).
  22. Barr, D. B., et al. Urinary creatinine concentrations in the U.S. population: implications for urinary biologic monitoring measurements. Environmental Health Perspectives. 113 (2), 192-200 (2005).
  23. McDade, T. W., Williams, S., Snodgrass, J. J. What a drop can do: dried blood spots as a minimally invasive method for integrating biomarkers into population-based research. Demography. 44 (4), 899-925 (2007).
  24. Sambandam, S., et al. Exposure contrasts associated with a liquefied petroleum gas (LPG) intervention at potential field sites for the multi-country household air pollution intervention network (HAPIN) trial in India: Results from pilot phase activities in rural Tamil Nadu. BMC Public Health. 20 (1), 1799(2020).
  25. Clark, S. N., et al. High-resolution spatiotemporal measurement of air and environmental noise pollution in Sub-Saharan African cities: Pathways to equitable health cities study protocol for Accra, Ghana. BMJ Open. 10 (8), 035798(2020).
  26. Clasen, T., et al. Design and rationale of the HAPIN study: A multicountry randomized controlled trial to assess the effect of liquefied petroleum gas stove and continuous fuel distribution. Environmental Health Perspectives. 128 (4), 47008(2020).
  27. Liao, J., et al. LPG stove and fuel intervention among pregnant women reduce fine particle air pollution exposures in three countries: Pilot results from the HAPIN trial. Environmental Pollution (Barking). 291, 118198(2021).
  28. Wilson, D. L., Williams, K. N., Pillarisetti, A. An integrated sensor data logging, survey, and analytics platform for field research and its application in HAPIN, a multi-center household energy intervention trial. Sustainability. 12 (5), 1805(2020).
  29. Rooney, B., et al. Impacts of household sources on air pollution at village and regional scales in India. Atmospheric Chemistry and Physics. 19 (11), 7719-7742 (2019).
  30. Review of the National Ambient Air Quality Standards for Particulate Matter. Environmental Protection Agency. , Available from: https://www.epa.gov (2020).
  31. Barr, D. B., et al. Design and rationale of the biomarker center of the household air pollution intervention network (HAPIN) trial. Environmental Health Perspectives. 128 (4), 47010(2020).
  32. Cross Sectional Assessment Study Appendix D, biologic sample collection and analysis plans. CDC/NCEH. , Available from: https://www.cdc.gov/inceh/clusters/fallon/6_ApdxD_Biomethods.pdf (2022).
  33. Practical guidance on capillary sampling (finger and heel-prick). World Health Organization. , Available from: https://cdn.who.int/media/docs/default-source/integrated-health-sevices-(his)/injction-safety/job-aids/5card_capillary_web.pdf?sfvrsn=78f3be94_5 (2010).
  34. WHO guidelines on drawing blood: best practices in phlebotomy. World Health Organization. , Available from: https://apps.who.int/iris/handle/10665/44294 (2010).
  35. Johnson, M., et al. Exposure contrasts of pregnant women during the household air pollution intervention network randomized controlled trial. Environmental Health Perspectives. 130 (9), 097005(2022).
  36. Piedrahita, R., et al. Exposures to carbon monoxide in a cookstove intervention in northern Ghana. Atmosphere. 10 (7), 402(2019).
  37. Balakrishnan, K., Cohen, A., Smith, K. R. Addressing the burden of disease attributable to air pollution in india: the need to integrate across household and ambient air pollution exposures. Environmental Health Perspectives. 122 (1), 6-7 (2014).
  38. CPCB. Air quality monitoring, emission inventory and source apportionment study for Indian cities. Central Pollution Control Board. , Available from: https://www.epa.gov (2011).
  39. Stove, C. P., Ingels, A. -S. M. E., De Kesel, P. M. M., Lambert, W. E. Dried blood spots in toxicology: from the cradle to the grave. Critical Reviews in Toxicology. 42 (3), 230-243 (2012).
  40. Grüner, N., Stambouli, O., Ross, R. S. Dried blood spots - preparing and processing for use in immunoassays and in molecular techniques. Journal of Visualized Experiments. (97), e52619(2015).
  41. Ostler, M. W., Porter, J. H., Buxton, O. M. Dried blood spot collection of health biomarkers to maximize participation in population studies. Journal of Visualized Experiments. (83), e50973(2014).
  42. Shan, M., et al. A feasibility study of the association of exposure to biomass smoke with vascular function, inflammation, and cellular aging. Environmental Research. 135, 165-172 (2014).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Household Air PollutionExposure AssessmentBiomarker SamplingField Data CollectionParticulate Matter PM2 5Carbon Monoxide MonitoringBlack Carbon MeasurementDried Blood SpotsStove Usage MonitoringAmbient Air Monitoring

Related Articles