Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Pomostowanie dwunastnicy i jelita krętego z pojedynczym zespoleniem z rękawowym modelem resekcji żołądka u myszy

2.5K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/64610

⸱

10 lutego 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1CHU Nantes, CNRS, INSERM, l'institut du thorax, Nantes Université, 2Chirurgie Cancérologique, Digestive et Endocrinienne, Institut des Maladies de l'Appareil Digestif, Hôtel Dieu, CHU Nantes

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

Jednoczęściowe obejście dwunastnicy i jelita krętego (SADI-S) to nowa procedura bariatryczna o ważnych efektach metabolicznych. W tym artykule przedstawiamy wiarygodny i powtarzalny model SADI-S u myszy.

Streszczenie

Otyłość jest poważnym problemem zdrowotnym na całym świecie. W odpowiedzi pojawiły się operacje bariatryczne w celu leczenia otyłości i powiązanych z nią chorób współistniejących (np. cukrzycy, dyslipidemii, niealkoholowego stłuszczeniowego zapalenia wątroby, zdarzeń sercowo-naczyniowych i nowotworów) poprzez mechanizmy restrykcyjne i malabsorpcyjne. Zrozumienie mechanizmów, dzięki którym procedury te pozwalają na takie ulepszenia, często wymaga ich transpozycji na zwierzęta, zwłaszcza u myszy, ze względu na łatwość generowania genetycznie modyfikowanych zwierząt. Ostatnio pomostowanie dwunastnicy i jelita krętego z pojedynczym zespoleniem z rękawową resekcją żołądka (SADI-S) stało się procedurą wykorzystującą zarówno działanie restrykcyjne, jak i malabsorpcyjne, która jest stosowana jako alternatywa dla pomostowania żołądka w przypadku dużej otyłości. Do tej pory zabieg ten wiązał się ze znaczną poprawą metaboliczną, co doprowadziło do znacznego wzrostu jego stosowania w codziennej praktyce klinicznej. Jednak mechanizmy leżące u podstaw tych efektów metabolicznych zostały słabo zbadane w wyniku braku modeli zwierzęcych. W artykule przedstawiono wiarygodny i powtarzalny model SADI-S u myszy, ze szczególnym uwzględnieniem postępowania okołooperacyjnego. Opis i zastosowanie tego nowego modelu gryzoni będzie pomocne dla społeczności naukowej w lepszym zrozumieniu zmian molekularnych, metabolicznych i strukturalnych wywołanych przez SADI-S oraz w lepszym zdefiniowaniu wskazań chirurgicznych do praktyki klinicznej.

Wprowadzenie

Otyłość to pojawiająca się i endemiczna sytuacja, której częstość występowania rośnie, dotykająca około 1 na 20 dorosłych na całym świecie1. Chirurgia bariatryczna stała się w ostatnich latach najskuteczniejszą opcją leczenia osób dorosłych dotkniętych chorobą, poprawiając zarówno utratę wagi, jak i zaburzenia metaboliczne2,3, z różnymi wynikami w zależności od rodzaju zastosowanego zabiegu chirurgicznego.

Istnieją dwa główne mechanizmy, które są związane z efektami procedur bariatrycznych: ograniczenie, które ma na celu zwiększenie sytości (takie jak w przypadku rękawowej resekcji żołądka (SG), gdzie usuwa się 80% żołądka) oraz złe wchłanianie. Wśród procedur, które implikują zarówno ograniczenie, jak i złe wchłanianie, pomostowanie dwunastnicy i jelita krętego z pojedynczym zespoleniem z rękawową resekcją żołądka (SADI-S) zostało zaproponowane jako alternatywa dla obejścia żołądka Roux-en-Y (RYGB), w którym u około 20% pacjentów obserwuje się ponowny przyrost masy ciała4,5. W tej technice rękawowa resekcja żołądka wiąże się z przestawieniem jelita cienkiego, dzieląc je na żółć i krótką wspólną kończynę (jedna trzecia całkowitej długości jelita cienkiego) (Ryc. 1A). Pod względem technicznym SADI-S ma tę przewagę nad RYGB, że wymaga tylko jednego zespolenia, co skraca czas operacji o około 30%. Ponadto metoda ta zachowuje odźwiernik, co pomaga zmniejszyć ryzyko choroby wrzodowej i ogranicza przeciek zespolenia. SADI-S jest również związany z wysokim tempem poprawy metabolicznej, co zdecydowanie sprzyja jego stosowaniu w ciągu ostatnich kilku lat6,7.

Ponieważ efekty metaboliczne stają się coraz bardziej fundamentalne dla procedur bariatrycznych, wyjaśnienie ich mechanizmów wydaje się kluczowe. Dlatego wykorzystanie modeli zwierzęcych w procedurach bariatrycznych ma ogromne znaczenie dla lepszego zrozumienia ich skutków metabolicznych oraz zaangażowanych szlaków komórkowych i molekularnych8. Modele te przyczyniły się na przykład do lepszego zrozumienia zmian w spożyciu pokarmu po SG lub RYGB w kontrolowanym środowisku9 oraz do badania przepływów glukozy lub cholesterolu przez barierę jelitową10,11; Informacje te są rzadko dostępne w badaniach klinicznych. Wiedza ta może pomóc w określeniu ich optymalnych wskazań chirurgicznych. Wcześniej opisaliśmy modele myszy SG i RYGB12. Jednak pomimo obiecujących wyników w praktyce klinicznej, SADI-S został opracowany i opisany tylko w rats13,14,15. Jednakże, biorąc pod uwagę jego genetyczną plastyczność, model mysi był przydatny w przeszłości do badania różnych efektów metabolicznych takich procedur16,17,18, a mysi model SADI-S może być przydatny do oceny efektów SADI-S pomimo trudności technicznych.

W tym artykule opisujemy adaptację procedury SADI-S u myszy (Rysunek 1B) w powtarzalny sposób. Szczególną uwagę zwrócono na opis opieki okołooperacyjnej.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Ten protokół został zatwierdzony przez lokalną francuską komisję etyki ds. eksperymentów na zwierzętach (Comité d'éthique en expérimentation animale; odniesienie CEEA-PdL n 06).

1. Przygotowanie przedoperacyjne

  1. Dodaj pokarm w żelu do normalnej diety na 3 dni przed zabiegiem. Pościć myszy 6 godzin przed zabiegiem.
  2. Znieczulenie indukować 5% izofluranem (1 l/min) w dedykowanej komorze z tlenem (1 l/min). Myszy należy wstrzyknąć podskórnie buprenorfinę (0,1 mg/kg), amoksycylinę (15 mg/kg), metoklopramid (1 mg/kg), meloksykam (1 mg/kg) i żelazo (0,5 mg/kg).
  3. Ogol pierwsze 2/3 części brzucha myszy, zaczynając od wyrostka mieczykowatego za pomocą elektrycznej maszynki do golenia. Zdezynfekuj brzuch myszy w dwóch krokach za pomocą roztworu jodu poliwidonu .
  4. Umieść mysz na wznak na dedykowanej podkładce grzewczej pokrytej czystym podkładem. Utrzymuj znieczulenie za pomocą stożka nosowego z 2%-2,5% izofluranu (0,4 l/min) z tlenem (0,4 l/min). Użyj testu szczypania palców u stóp, aby potwierdzić głębokość znieczulenia.
  5. Przykryj mysz wysterylizowaną folią. Aby zastosować przeprost na brzuchu myszy, przymocuj dolną część łapy i użyj strzykawki o pojemności 1 ml lub jej odpowiednika umieszczonej za grzbietem myszy. Wytnij otwór w sterylnym kompresie o wielkości przyszłego nacięcia i użyj go jako pola operacyjnego do zakrycia myszy. Ogólna instalacja jest pokazana w Rysunek 2A.
  6. Przed zabiegiem należy założyć maseczkę na twarz, czepek do szorowania i wysterylizowane rękawiczki. Do operacji używaj wysterylizowanych narzędzi.

2. Protokół SADI-S

  1. Laparotomia medianowa
    1. Pod mikroskopem dwuokularowym (powiększenie 8x) wykonaj laparotomię środkową za pomocą nożyczek lub skalpela, otwierając skórę brzucha od wyrostka mieczykowatego do środka brzucha. Upewnij się, że wyrostek mieczykowaty i warstwa mięśniowo-rozcięgnowa są widoczne (Rysunek 2B).
      UWAGA: Bupiwakainę (3 mg/kg) podawać podskórnie w miejscu operowanym na 5 minut przed wykonaniem nacięcia skóry.
    2. Otwórz ścianę brzucha wzdłuż kresy białej nożyczkami między mięśniami brzucha. Uważaj, aby nie dostać się do jamy klatki piersiowej (Rysunek 2C).
  2. Wykluczenie dwunastnicy
    1. Delikatnie zmobilizuj dwunastnicę z jamy brzusznej za pomocą zwilżonego bawełnianego wacika, aby zobaczyć jej przednią i tylną stronę. Zlokalizuj główny przewód żółciowy, który jest natychmiast widoczny pod mikroskopem lornetkowym po tylnej stronie sieci mniejszej i dwunastnicy (Rysunek 3A, czarne strzałki).
    2. Proksymalnie od głównego przewodu żółciowego uwidocznij obszar między tętnicami dwunastnicy pod mikroskopem dwuokularowym (Rysunek 3A, B, niebieskie kropkowane kółka). Penetruj ten obszar za pomocą zakrzywionych mikrokleszczyków z jednej strony dwunastnicy na drugą i wykonaj podwiązanie dwunastnicy między tętnicami za pomocą niewchłanialnego szwu 6-0 (Rysunek 3C-E). Uważaj, aby nie podwiązywać gałęzi tętnic dwunastnicy.
  3. Rękawowa resekcja żołądka
    1. Zmobilizuj żołądek z jamy brzusznej za pomocą zwilżonego wacika i nieurazowego zacisku. Oddziel żołądek od otaczających narządów za pomocą mikronożyczek: oddziel większą sieć żołądkową, przetnij krótkie tętnice żołądkowe (gałąź tętnicy śledzionowej) między żołądkiem a śledzioną oraz tłuszczak łączący żołądek z dolną częścią przełyku (Rysunek 4A,B).
    2. Za pomocą mikronożyczek wykonaj gastrotomię 5 mm, otwierając dno i usuwając resztki jedzenia za pomocą bawełnianego wacika (Rysunek 4C, strzałka). Przepłukać miejsce gastrotomii sterylnym roztworem soli fizjologicznej (37 °C), aby uniknąć zanieczyszczenia usuniętą treścią żołądkową.
    3. Zastosuj klipsy chirurgiczne (średniej wielkości, 5,6 mm) wzdłuż większej krzywizny żołądka, aby wykluczyć około 80% żołądka. Wystarczą dwa klipsy. Usuń wykluczony żołądek, przecinając go mikronożyczkami (Rysunek 4D-G).
    4. Zakotwicz klipsy chirurgiczne, aby upewnić się o nieprzepuszczalności, wykonując szew biegnący (8-0) od początku do końca resekcji żołądka (Rysunek 4H).
  4. Zespolenie dwunastniczo-kręte
    1. Pod mikroskopem lornetkowym uwidocznij ostatnią pętlę jelita krętego, która znajduje się tuż przed kątnicą (Rysunek 5A). Delikatnie zmobilizuj jelito cienkie na zewnątrz jamy brzusznej z ostatniej pętli jelita krętego. Ułóż jelito cienkie, jak pokazano w Rysunek 5B, tak aby ostatnia pętla jelita krętego znajdowała się po lewej stronie. Używając wcześniej dobranego sznurka do szycia, zmierz 10 cm (około 1/3 całkowitej długości jelita cienkiego) od ostatniej pętli jelita krętego; Będzie to miejsce przyszłego zespolenia.
    2. Aby upewnić się, że przyszła kończyna żółciowa dotrze do miejsca zespolenia z lewej strony, należy wykonać dużą pętlę jelita cienkiego wokół miejsca przyszłego zespolenia. Za pomocą mikronożyczek wykonaj enterotomię 4 mm, otwierając w tym miejscu jelito cienkie (Rysunek 5C-E). Przepłukać miejsce enterotomii sterylnym roztworem soli fizjologicznej (37 °C), aby uniknąć zanieczyszczenia.
    3. Wykonać enterotomię 4 mm na wyłączonej części dwunastnicy, bezpośrednio za odźwiernikiem, między żołądkiem a podwiązaniem wykonanym w kroku 2.2.2 (Rysunek 5F). Umieść wchłanialny hemostatyczny kompres kolagenowy o wymiarach 5 mm x 5 mm, aby sprzyjać homeostazie.
    4. Za pomocą niewchłanialnego 8-0 szew, wykonać zespolenie dwunastniczo-kręte z boku na bok. Zacznij od zespolenia po stronie tylnej, a następnie zespolenia po stronie przedniej (Rysunek 5G-I).
  5. Zamknięcie brzucha
    1. Wyświetlić jelito cienkie w jamie brzusznej tak, aby kończyna żółciowa dochodziła do zespolenia z lewej górnej strony brzucha, a wspólna kończyna opadała do dolnej części brzucha.
      UWAGA: Przepłukać jamę brzuszną trzykrotnie około 5 ml sterylnego 0,9% roztworu soli fizjologicznej (37 °C). Następnie odessaj płyn z jamy brzusznej, aby usunąć resztki płynu żołądkowo-jelitowego i strawiony pokarm, aby uniknąć infekcji bakteryjnej i późniejszego zapalenia jamy brzusznej.
    2. Nawodnij mysz 500 μl roztworu soli fizjologicznej o temperaturze 37 °C, aplikując go bezpośrednio do jamy brzusznej za pomocą strzykawki o pojemności 1 ml.
    3. Zamknij warstwę mięśniowo-rozcięgnową za pomocą pojedynczego niewchłanialnego szwu biegowego 6-0. Zamknij skórę brzucha za pomocą 6-0 niewchłanialnych oddzielnych szwów (Rysunek 5J, K).

3. Ogólna opieka pooperacyjna

  1. Po odstawieniu izofluranu pozwól myszy obudzić się na poduszce grzewczej poniżej 0,4 l/min O2 wdmuchiwanej za pomocą maski na nos. Po całkowitym wybudzeniu, które można zapewnić dzięki całkowitej rekuperacji motorycznej, umieść mysz samą w klatce w inkubatorze o temperaturze 30 °C. Pozostaw mysz w inkubatorze w temperaturze 30 °C na 5 dni (bez szczególnych warunków dotyczących gazu lub wilgotności).
    UWAGA: Klatka powinna być wcześniej rozgrzana.
  2. Zapewnij swobodny dostęp do wody bezpośrednio po zabiegu. Suplementy witaminowe, w tym witaminy B1, B9, B12 i witaminy rozpuszczalne w tłuszczach (A, D, E, K), należy dodawać do wody (800 mg/180 ml wody) do końca protokołu.
  3. Utrzymuj analgezję poprzez podskórne wstrzyknięcia buprenorfiny (0,1 mg/kg) dwa razy dziennie od 1 do 3 dnia, a następnie raz dziennie do 5 dnia. Amoksycylinę (15 mg/kg mc.), meloksykam (1 mg/kg mc.) i metoklopramid (1 mg/kg mc.) należy kontynuować wstrzyknięcia podskórne raz na dobę do 3. dnia. Zapewnij podskórne wstrzyknięcia żelaza (0,5 mg/kg) raz dziennie do końca protokołu.

4. Pomiary ogólne i eutanazja

  1. Waż myszy codziennie aż do 5 dnia po operacji. Następnie waż w 7 dniu, a następnie co tydzień.
  2. Aby zmierzyć dzienne spożycie pokarmu, umieść jedną mysz w klatce. Umieść znaną masę ciała stałego i zmierz wagę stałej diety pozostałej po 24 godzinach. Mierz spożycie pokarmu w 3, 4, 5, 7, a następnie co tydzień.
  3. Eutanazja myszy przez zwichnięcie szyjki macicy w znieczuleniu ogólnym (5% izofluranu (1 l / min) z tlenem (1 l / min)) z podskórnym wstrzyknięciem buprenorfiny (0,1 mg / kg) po nacięciu lewego przedsionka serca w celu pobrania krwi (500 do 600 μl krwi).
  4. Zmierz stężenie hemoglobiny we krwi za pomocą automatycznego analizatora hematologicznego wymagającego 20 μl krwi.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Krzywa uczenia się
Krzywa uczenia się dla tego modelu przedstawiona jest na ryc. 6. Obserwuje się stopniowy spadek czasu operacji, który po 4 tygodniach intensywnego treningu osiągnął około 60 min (ryc. 6A). 5-dniowa przeżywalność pooperacyjna również poprawiła się z czasem, osiągając 77% podczas regularnej praktyki (ryc. 6B). Najczęstszymi przyczynami śmiertelności były nieszczelności zespolenia oraz zespół pęt...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Operacje bariatryczne, których techniki stale ewoluują, wydają się być obecnie najskuteczniejszym sposobem leczenia otyłości i związanych z nią chorób współistniejącychmetabolicznych 3,19,20. Procedura SADI-S, po raz pierwszy opisana w 2007roku4, jest obiecującą procedurą wiążącą się z większymi efektami metabolicznymi niż inne operacje malabsorpcyjne. Modele zwierzęce, w szczególności myszy, które pozwal...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Claire Blanchard otrzymała wynagrodzenie od firmy Medtronic za prowadzenie kursów klinicznych.

Podziękowania

Dziękujemy firmie Ethicon (Johnson and Johnson surgical technologies) za uprzejme dostarczenie sznurka do szwów i klipsów chirurgicznych. Prace te były wspierane przez granty z NExT Talent Project, Université de Nantes, CHU de Nantes.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Igła Agagani 26 GTerumo050101BIgła 26 G
Betadine dermique Pharma-gdd3300931499787roztwór powidonu
Peeling BetadinePharma-gdd  3400931499787roztwór powidonu
Mikroskop lornetkowyOptika Microscopes WłochySZN-9Lornetka stereomikroskopowa
BuprecareAnimalcare3760087151244Buprenorphin
Castroviejo, prosta 9 cmFST12060-02Mikronożyczki
Castroviejo, proste 9 cmFST12060-02Uchwyt
na igłęChlorure de sodium Fresenius 0.9%Fresenius Kabi BE182743NaCl 0,9%
ClamoxylMed'vet5414736007496Amoxicilline
Patyczki kosmetyczneComed2510805Waciki bawełniane
Element HT5ScilvetElement HT5Automatyczny analizator hematologiczny
EmepridCEVA3411111914365Metoclopramid
Extra Fine Kleszczyki Graefe, zakrzywione (szerokość końcówki: 0,5 mm)F.S.T11152-10Kleszcze chirurgiczne
Extra Fine Graefe Kleszcze, proste (szerokość końcówki: 0,5 mm)FST11150-10Kleszcze chirurgiczne
FercobsangVetopriceQB03AE04Żelazo, multiwitaminy i minerały 
ForaneBaxter1001936060Isoflurane
Graefe Szczypce, proste (szerokość końcówki: 0,8 mm)FST11050-10Kleszcze
Graphpad Prism wersja 8.0GraphPad Software, Inc.Wersja 8.0Oprogramowanie do analizy statystycznej
Poduszka termicznaIntellibio innowacjaA-2101-00300Inkubator z poduszką termiczną
Bioconcept TechnologieProdukowane na żądanieInkubator 
OświetlenieOptika Mikroskopy WłochyCL-30Oświetlenie do mikroskopii
OcrygelMed'vet3700454505621Carboptol 980 NF
Pangen 2,5 cm x 3,5 cmUrgovetA02978Hemostatyczny kompres kolagenowy
Prolene 6/0B.Braun3097915Optilene 6/0 (0,7 metrycznego) 75 cm 2XDR13 CV2 RCP, sznurek do szycia
Prolene 8/0Ethicon87322 x BV175-6 MP, 3/8 Koło, 8 mm,  sznurek do szycia
NożyczkiFST146168-09Nożyczki chirurgiczne
Sterylne kompresy Laboartoire Sylamed211S05-50Włóknina sterylnie skompresowana
strzykawka TerumoTerumo50828Strzykawka 1 ml
Tytanowy klips hemostatycznyPé ters SurgicalB2180-1Klips chirurgiczny
Vannas WolffFST15009-08Mikronożyczki
Vita RongeurVirbac3597133087611Suplementacja witamin
Vitaltec nierdzewnyPé ters SurgicalPB 220-EB MediumAplikator do klipsów chirurgicznych

Bibliografia

  1. Flegal, K. M., Carroll, M. D., Kit, B. K., Ogden, C. L. Prevalence of obesity and trends in the distribution of body mass index among US adults, 1999-2010. JAMA. 307 (5), 491-497 (2012).
  2. Sjöström, L., et al. Association of bariatric surgery with long-term remission of type 2 diabetes and with microvascular and macrovascular complications. JAMA. 311 (22), 2297-2304 (2014).
  3. Dyson, J., et al. Hepatocellular cancer: the impact of obesity, type 2 diabetes and a multidisciplinary team. Journal of Hepatology. 60 (1), 110-117 (2014).
  4. Sánchez-Pernaute, A., et al. Proximal duodenal-ileal end-to-side bypass with sleeve gastrectomy: proposed technique. Obesity Surgery. 17 (12), 1614-1618 (2007).
  5. Himpens, J., Verbrugghe, A., Cadière, G. B., Everaerts, W., Greve, J. W. Long-term results of laparoscopic Roux-en-Y Gastric bypass: evaluation after 9 years. Obesity Surgery. 22 (10), 1586-1593 (2012).
  6. Sánchez-Pernaute, A., et al. Long-term results of single-anastomosis duodeno-ileal bypass with sleeve gastrectomy (SADI-S). Obesity Surgery. 32 (3), 682-689 (2022).
  7. Shoar, S., Poliakin, L., Rubenstein, R., Saber, A. A. Single anastomosis duodeno-ileal switch (SADIS): A systematic review of efficacy and safety. Obesity Surgery. 28 (1), 104-113 (2018).
  8. Rao, R. S., Rao, V., Kini, S. Animal models in bariatric surgery--a review of the surgical techniques and postsurgical physiology. Obesity Surgery. 20 (9), 1293-1305 (2010).
  9. Lutz, T. A., Bueter, M. The use of rat and mouse models in bariatric surgery experiments. Frontiers in Nutrition. 3, 25(2016).
  10. Baud, G., et al. Bile diversion in Roux-en-Y Gastric Bypass modulates sodium-dependent glucose intestinal uptake. Cell Metabolism. 23 (3), 547-553 (2016).
  11. Blanchard, C., et al. Sleeve gastrectomy alters intestinal permeability in diet-induced obese mice. Obesity Surgery. 27 (10), 2590-2598 (2017).
  12. Ayer, A., et al. Techniques of sleeve gastrectomy and modified Roux-en-Y Gastric Bypass in mice. Journal of Visualized Experiments. (121), e54905(2017).
  13. Wang, T., et al. Comparison of diabetes remission and micronutrient deficiency in a mildly obese diabetic rat model undergoing SADI-S versus RYGB. Obesity Surgery. 29 (4), 1174-1184 (2019).
  14. Wu, W., et al. Comparison of the outcomes of single anastomosis duodeno-ileostomy with sleeve gastrectomy (SADI-S), single anastomosis sleeve ileal (SASI) bypass with sleeve gastrectomy, and sleeve gastrectomy using a rodent model with diabetes. Obesity Surgery. 32 (4), 1209-1215 (2022).
  15. Laura, M., et al. Establishing a reproducible murine animal model of single anastomosis duodenoileal bypass with sleeve gastrectomy (SADl-S). Obesity Surgery. 28 (7), 2122-2125 (2018).
  16. Meoli, L., et al. Intestine-specific overexpression of LDLR enhances cholesterol excretion and induces metabolic changes in male mice. Endocrinology. 160 (4), 744-758 (2019).
  17. Abu El Haija, M., et al. Toll-like receptor 4 and myeloid differentiation factor 88 are required for gastric bypass-induced metabolic effects. Surgery for Obesity and Related Diseases. 17 (12), 1996-2006 (2021).
  18. Kumar, S., et al. Lipocalin-type prostaglandin D2 synthase (L-PGDS) modulates beneficial metabolic effects of vertical sleeve gastrectomy. Surgery for Obesity and Related Diseases. 12 (8), 1523-1531 (2016).
  19. Heffron, S. P., et al. Changes in lipid profile of obese patients following contemporary bariatric surgery: A meta-analysis. The American Journal of Medicine. 129 (9), 952-959 (2016).
  20. Carswell, K. A., Belgaumkar, A. P., Amiel, S. A., Patel, A. G. A systematic review and meta-analysis of the effect of gastric bypass surgery on plasma lipid levels. Obesity Surgery. 26 (4), 843-855 (2016).
  21. Surve, A., Zaveri, H., Cottam, D. Retrograde filling of the afferent limb as a cause of chronic nausea after single anastomosis loop duodenal switch. Surgery for Obesity and Related Diseases. 12 (4), 39-42 (2016).
  22. Uysal, M., et al. Caecum location in laboratory rats and mice: an anatomical and radiological study. Laboratory Animals. 51 (3), 245-255 (2017).
  23. Sánchez-Pernaute, A., et al. Single-anastomosis duodeno-ileal bypass with sleeve gastrectomy: metabolic improvement and weight loss in first 100 patients. Surgery for Obesity and Related Diseases. 9 (5), 731-735 (2013).
  24. Wei, J. H., Yeh, C. H., Lee, W. J., Lin, S. J., Huang, P. H. Sleeve gastrectomy in mice using surgical clips. Journal of Visualized Experiments. (165), e60719(2020).
  25. Ying, L. D., et al. Technical feasibility of a murine model of sleeve gastrectomy with ileal transposition. Obesity Surgery. 29 (2), 593-600 (2019).
  26. Bruinsma, B. G., Uygun, K., Yarmush, M. L., Saeidi, N. Surgical models of Roux-en-Y gastric bypass surgery and sleeve gastrectomy in rats and mice. Nature Protocols. 10 (3), 495-507 (2015).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Model mysi SADI-Schirurgia bariatrycznamodel otyłościchirurgia metabolicznatechnika operacyjna u myszyopieka okołooperacyjnachirurgia redukcji masy ciałaanastomoza jelita cienkiego
Pomostowanie dwunastnicy i jelita krętego z pojedynczym zespoleniem z rękawowym modelem resekcji żołądka u myszy
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.