Artykuł metodologiczny

Najnowsze osiągnięcia i najlepsze praktyki w zakresie analizy krio-EM w celu określenia struktury białek

2K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/64907

⸱

10 lutego 2023

 , 

W tym artykule

Streszczenie

OMÓWIONE ARTYKUŁY:

de Martin Garrido, N., Ramlaul, K., Aylett, C. H. S. Przygotowanie warstw nośnika próbki w transmisyjnej mikroskopii elektronowej przy użyciu bloku flotacji nośnika. Dziennik Eksperymentów Wizualnych. (170), doi:10.3791/62321 (2021).

Klebl, D. P., Sobott, F., White, H. D., Muench, S. P. Szybkie przygotowanie siatki do czasowo-rozdzielczej mikroskopii krioelektronowej. Dziennik Eksperymentów Wizualnych. (177), doi:10.3791/62199 (2021).

Budell, W. C., Allegri, L., Dandey, V., Potter, C. S., Carragher, B. Przygotowanie mikroskopowej siatki krioelektronowej do badań czasowo-rozdzielczych przy użyciu nowatorskiego systemu robotycznego, Spotiton. Dziennik Eksperymentów Wizualnych. (168), doi:10.3791/62271 (2021).

Nguyen, H. P. M., McGuire, K. L., Cook, B. D., Herzik, M. A., Jr. Ręczne zamrażanie próbek biologicznych metodą blot and plunge do kriogenicznej mikroskopii elektronowej pojedynczych cząstek. Dziennik Eksperymentów Wizualnych. (180), doi:10.3791/62765 (2022).

Martynowycz, M. W., Gonen, T. Dyfrakcja elektronów mikrokrystalicznych małych cząsteczek. Dziennik Eksperymentów Wizualnych. (169), doi:10.3791/62313 (2021).

Bisson, C., Hecksel, C. W., Gilchrist, J. B., Fleck, R. A. Przygotowanie blaszek z próbek biologicznych ciała szklistego za pomocą dwuwiązkowego skaningowego mikroskopu elektronowego do tomografii krioelektronowej. Dziennik Eksperymentów Wizualnych. (174), doi:10.3791/62350 (2021).

Wypych, D., Kierecki, D., Gołębiowski, F. M., Rohou, A. gP2S, system zarządzania informacją dla eksperymentów CryoEM. Dziennik Eksperymentów Wizualnych. (172), doi:10.3791/62377 (2021).

Artykuł redakcyjny

Od czasu pojawienia się bezpośrednich detektorów elektronów oraz ulepszenia oprogramowania i sprzętu, mikroskopia krioelektronowa (cryo-EM) stała się techniką, która rutynowo pozwala naukowcom określać strukturę makrocząsteczek z dokładnością bliską atomowi 1,2. Przyspieszenie to zostało skatalizowane przez niezwykle szybką serię nowych rozwiązań, od przygotowania próbek po gromadzenie i przetwarzanie danych. Aby umożliwić szeroką demokratyzację tej techniki dla osób niebędących ekspertami, stworzono bardziej wydajne i dostępne rurociągi. Uderzające jest to, że niecałe 10 lat po "rewolucji rozdzielczościowej" krio-EM stał się podstawową techniką charakteryzacji białek, zarówno w środowisku akademickim, jak i w przemyśle 3,4.

Jednym z najbardziej niezwykłych aspektów społeczności badawczej zajmującej się krio-EM jest gotowość do otwartego dzielenia się protokołami, strategiami i oprogramowaniem5. Ta otwartość technologii i wiedzy specjalistycznej w znacznym stopniu przyczyniła się do bardzo szybkiego tempa rozwoju, ale niektóre wąskie gardła nadal uniemożliwiają jej pełną dostępność. W tym zbiorze metod staramy się opisać niektóre z najnowszych osiągnięć w zakresie przygotowania siatek odpowiednich do analizy statyczno-wytrzymałościowej za pomocą cryo-EM, co wraz z dostępem do sprzętu do analizy danych stanowi główne wąskie gardło dla wielu projektów. Omawiamy również nowe protokoły, które są obecnie opracowywane w tej dziedzinie, dla nowych podejść w analizach krio-EM.

Jak wspomniano powyżej, jednym z obecnych wąskich gardeł w rutynowym stosowaniu krio-EM w laboratorium jest przygotowanie próbek. Na poziomie aplikacji próbki do siatek można napotkać kilka problemów: najczęściej preferowaną orientację próbki w lodzie oraz jej denaturację na granicy faz powietrze-woda. Jednym z rozwiązań tego problemu jest osłona próbki przed powierzchnią międzypowietrzno-wodną, polegającą na zastosowaniu warstw nośnych z węgla lub grafenu, które fizycznie zapobiegają kontaktowi próbki z powietrzem. Aby ułatwić nakładanie cienkich warstw na siatki, de Martin Garrido i wsp.6 opracowali nośny blok pływający wytwarzany przez drukarkę 3D, który umożliwia kontrolowane nakładanie małych kropel wody i próbki. Za pomocą tego bloku warstwy grafenu i węgla są osadzane w niedrogi i przyjazny dla użytkownika sposób.

Innym sposobem zapobiegania uszkodzeniom na granicy faz powietrze-woda jest ograniczenie czasu, w którym białko jest wystawione na działanie atmosfery. W tym celu dwa różne instrumenty, opracowane przez Klebsa i wsp.7 oraz Budella i wsp.8, wykorzystują nowatorskie podejścia do szybkiego (już 10 ms) przygotowania siatki, zmniejszając prawdopodobieństwo wystąpienia problemów z orientacją cząstek. Kolejną zaletą tych urządzeń jest możliwość przeprowadzania eksperymentów z rozdzielczością czasową, co stanowi nową, ekscytującą granicę dla badań strukturalnych.

W przeciwieństwie do tego, Nguyen i wsp.9 opisują metodę zamrażania siatek do analizy krio-EM w przypadku braku komercyjnych lub niestandardowych urządzeń, które są albo bardzo kosztowne, albo trudne do zbudowania. Pokazują one, w jaki sposób można uzyskać siatki o podobnej jakości za pomocą taniego, domowego urządzenia, które nie wymaga drogiego oprzyrządowania, przyczyniając się do demokratyzacji krio-EM.

W cryo-EM próbka będąca przedmiotem zainteresowania nie zawsze jest białkiem, ale może być małą cząsteczką lub dużym systemem biologicznym, takim jak cała komórka. Przygotowanie takich próbek jest wyjątkowe i wymaga określonych kroków, a także różnych strategii gromadzenia danych.

W przypadku dyfrakcji elektronów mikrokrystalicznych (MicroED) próbka, która ma być badana, jest małą substancją chemiczną, która zwykle występuje w postaci proszku. Proszek nakłada się bezpośrednio na siatkę EM w celu utrzymania krystalicznej formy. Zbieranie danych odbywa się następnie w trybie dyfrakcji, jak pokazują Martynowycz i Gonen10. W przeciwieństwie do tego, całe komórki są zbyt grube do analizy krio-EM. Aby rozwiązać ten problem, Bisson i in. opisują metodę wykorzystania SEM do fizycznego wiercenia w takiej próbce, w celu uzyskania cienkich przekrojów odpowiednich do badań strukturalnych11.

Od próbki do struktury, ważne jest, aby prowadzić rejestr dla każdego etapu procesu, ponieważ dla każdej próbki białka zmienia się wiele parametrów, od stężenia białka po ustawienia mikroskopu i analizę danych. W tym celu Wypych i wsp.12 opracowali internetowe narzędzie do zarządzania informacjami, które pozwala użytkownikom organizować przepływ pracy i śledzić wszystkie szczegóły potrzebne do przyszłych publikacji. Jest to szczególnie ważne, ponieważ automatyzacja staje się coraz bardziej powszechna w krio-EM, szczególnie w warunkach przemysłowych.

W ciągu ostatniej dekady technologia Cryo-EM rozwijała się w znakomitym tempie, zarówno na froncie sprzętu, jak i oprogramowania. Aby zapewnić szerokie rozpowszechnienie najlepszych praktyk i szerokie przyjęcie nowych metod, niezbędny jest przejrzysty zestaw protokołów. Niniejsze wydanie specjalne przyczyni się do tych wysiłków.

Podziękowania

JB dziękuje za finansowanie z BBSRC (BB/R009759/2) i HFSP (RGY0080/2021).

Bibliografia

  1. Kühlbrandt, W. The resolution revolution. Science. 343 (6178), 1443-1444 (2014).
  2. Smith, M. T. J., Rubinstein, J. L. Beyond blob-ology. Science. 345 (6197), 617-619 (2014).
  3. Chua, E. Y. D., et al. cheaper: Recent advances in cryo-electron microscopy. Annual Review of Biochemistry. 91, 1-32 (2022).
  4. Wigge, C., Stefanovic, A., Radjainia, M. The rapidly evolving role of cryo-EM in drug design. Drug Discovery Today. Technologies. 38, 91-102 (2020).
  5. Tachibana, C. Democratizing cryo-EM: Broadening access to an expanding field. Science. 367 (6484), 1394(2020).
  6. de Martin Garrido, N., Ramlaul, K., Aylett, C. H. S. Preparation of sample support films in transmission electron microscopy using a support floatation block. Journal of Visualized Experiments. (170), e62321(2021).
  7. Klebl, D. P., Sobott, F., White, H. D., Muench, S. P. Fast grid preparation for time-resolved cryo-electron microscopy. Journal of Visualized Experiments. (177), e62199(2021).
  8. Budell, W. C., Allegri, L., Dandey, V., Potter, C. S., Carragher, B. Cryo-Electron microscopic grid preparation for time-resolved studies using a novel robotic system, Spotiton. Journal of Visualized Experiments. (168), e62271(2021).
  9. Nguyen, H. P. M., McGuire, K. L., Cook, B. D., Herzik, M. A. Manual blot-and-plunge freezing of biological specimens for single-particle cryogenic electron microscopy. Journal of Visualized Experiments. (180), e62765(2022).
  10. Martynowycz, M. W., Gonen, T. Microcrystal electron diffraction of small molecules. Journal of Visualized Experiments. (169), e62313(2021).
  11. Bisson, C., Hecksel, C. W., Gilchrist, J. B., Fleck, R. A. Preparing lamellae from vitreous biological samples using a dual-beam scanning electron microscope for cryo-electron tomography. Journal of Visualized Experiments. (174), e62350(2021).
  12. Wypych, D., Kierecki, D., Golebiowski, F. M., Rohou, A. gP2S, an information management system for CryoEM experiments. Journal of Visualized Experiments. (172), e62377(2021).

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Cryogenic Electron MicroscopySample Support FilmsGrid PreparationTime-resolved Cryo-electron MicroscopyRobotic SystemManual Blot-and-plunge FreezingMicrocrystal Electron DiffractionCryo-electron TomographyInformation Management SystemBiological Specimens