Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Interwencja Tuina w króliczym modelu choroby zwyrodnieniowej stawu kolanowego

2.6K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/65763

⸱

25 sierpnia 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Shandong University of Traditional Chinese Medicine, 2Liaoning University of Traditional Chinese Medicine, 3Shandong University of Traditional Chinese Medicine Affiliated Hospital

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

Protokół opisuje metodę interwencji Tuina w króliczym modelu choroby zwyrodnieniowej stawu kolanowego.

Streszczenie

Choroba zwyrodnieniowa stawu kolanowego (KOA) charakteryzuje się głównie zmianami zwyrodnieniowymi w chrząstce stawu kolanowego i otaczających tkankach miękkich. Skuteczność leku Tuina w leczeniu KOA została potwierdzona, ale należy zbadać mechanizm leżący u jego podstaw. Badanie to ma na celu ustanowienie naukowo wykonalnego modelu królika KOA leczonego Tuiną, aby ujawnić mechanizmy leżące u podstaw tego zjawiska. W tym celu 18, 6-miesięcznych samców królików nowozelandzkich normalnej klasy zostało losowo podzielonych na grupy pozorowane, modelowe i Tuina, po 6 królików w każdej grupie. Model KOA powstał poprzez wstrzyknięcie 4% roztworu papainy do jamy stawu kolanowego. Grupie Tuina podawano lek Tuina w połączeniu z metodą korekcji rotacji stawu kolanowego przez 4 tygodnie. Tylko standardowe chwytanie i fiksacja były wykonywane w grupach pozorowanych i modelowych. Pod koniec 1-tygodniowej interwencji zaobserwowano zakres ruchomości stawu kolanowego (ROM) i wykonano barwienie chrząstki hematoksyliną-eozyną (HE). Badanie pokazuje, że Tuina może hamować apoptozę chondrocytów, naprawiać tkankę chrzęstną i przywracać ROM stawu kolanowego. Podsumowując, badanie to pokazuje naukową wykonalność leczenia Tuina u królików modelowych KOA, podkreślając jego potencjalne zastosowanie w badaniach nad KOA i podobnymi schorzeniami związanymi ze stawem kolanowym.

Wprowadzenie

Choroba zwyrodnieniowa stawu kolanowego (KOA) jest chorobą zwyrodnieniową stawu kolanowego, objawiającą się głównie bólem kolana, obrzękiem, deformacją i ograniczonym ruchem, z wysokim wskaźnikiem niepełnosprawności i częstszym występowaniem u kobiet, z 527,81 milionami pacjentów z chorobą zwyrodnieniową stawów na całym świecie w 2019 roku, a jej globalne rozpowszechnienie stanowi 60,6% całkowitego globalnego rozpowszechnienia OA1. Klinicznie leczenie KOA jest zwykle podzielone na terapie niechirurgiczne i chirurgiczne. Terapie niechirurgiczne obejmują fizjoterapię, farmakoterapię i terapię iniekcjami osocza bogatopłytkowego2,3. Tuina jest powszechną, bezpieczną, niezawodną i skuteczną metodą leczenia w medycynie chińskiej. W tym badaniu wykorzystano Tuina w połączeniu z metodą korekcji rotacji stawu kolanowego w leczeniu KOA. Techniki Tuina, takie jak metoda rotacyjnego ugniatania i prasowania, mogą zrównoważyć tkankę mięśniową, zmniejszyć ból, dostosować poziom czynników zapalnych, poprawić metabolizm tkanek i zahamować zwyrodnienie chrząstki stawowej4,5. Metoda korekcji obrotowej stawu kolanowego może dostosować wyrównanie kości i stawów kończyn dolnych, poprawić odstęp między stawami kolanowymi, przywrócić normalną linię siły i zrównoważyć biomechanikę kończyny dolnej6,7,8,9. Ćwiczenia oporowe mogą zwiększyć masę mięśniową i siłę oraz wspomagać odnowę tkanki chrzęstnej10,11. Wstępne badanie wykazało, że ten protokół Tuina jest znacznie bardziej skuteczny niż doustne kapsułki siarczanu glukozaminy w leczeniu KOA, z szybszym początkiem działania i znacznym zahamowaniem degeneracji chondrocytów i naprawy uszkodzonej tkanki chrzęstnej12. W leczeniu KOA, w porównaniu z terapią Tuina, niesteroidowe leki przeciwzapalne mają działania niepożądane i niezadowalającą długoterminową skuteczność, stosunkowo wysokie ryzyko i koszty chirurgiczne oraz wymagają pewnych wskazań do leczenia chirurgicznego, z problemami pooperacyjnymi i powikłaniami okołoprotetycznymi13,14,15. W porównaniu z terapią lekową i chirurgią, leczenie KOA metodą Tuina oferuje kilka zalet, w tym zmniejszenie skutków ubocznych, mniejsze ryzyko, zwiększone bezpieczeństwo, opłacalność i długotrwałą skuteczność. Dodatkowo może skutecznie łagodzić bóle stawów kolanowych, obrzęki, trzaski i ograniczenia ruchów6,13,16,17.

Jednakże, mechanizm leczenia KOA przez Tuinę wymaga wyjaśnienia, co ogranicza poprawę i doskonałość protokołu leczenia KOA. Dlatego badanie mechanizmu interwencji Tuina w KOA poprzez eksperymenty na zwierzętach jest skuteczną metodą. Króliki, w porównaniu ze szczurami, mają łagodny temperament i większe stawy kolanowe. Struktura anatomiczna i indeksy biochemiczne chrząstki są podobne do ludzkich, więc jest to odpowiedni temat do badania mechanizmu choroby stawu kolanowego przez Tuina18. Model KOA stworzony przez wstrzyknięcie papainy do jamy stawu kolanowego królików ma zalety krótkiego czasu modelowania, zmniejszonego urazu, wysokiego wskaźnika sukcesu, wysokiego wskaźnika przeżycia i podobnego patologicznego mechanizmu do KOA19. Badanie to ma na celu ustanowienie naukowo wykonalnego protokołu eksperymentalnego na zwierzętach dla interwencji Tuina w KOA i zbadanie mechanizmu Tuina.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Badanie zostało zatwierdzone przez komisję etyczną Szpitala Stowarzyszonego Uniwersytetu Tradycyjnej Medycyny Chińskiej w Shandong (numer zatwierdzenia: 2020-29).

1. Zwierzęta doświadczalne

  1. Wychowuj 18, 6-miesięcznych samców królików nowozelandzkich normalnej klasy (2,75 ± 0,25 kg) w standardowych pojedynczych klatkach (12 godzin cykl jasny/ciemny, temperatura 20-24 °C, wilgotność powietrza 40%-60%).

2. Metoda grupowania

  1. Wybierz 6 z 18 królików nowozelandzkich jako grupę pozorną za pomocą metody liczb losowych i przypisz pozostałe 12 królików do grupy modelowania.
  2. Po udanym modelowaniu podziel grupę modelowania króliki na grupy modelu i Tuina zgodnie z metodą liczb losowych, z 6 królikami w każdej grupie.
  3. Przeprowadź interwencję Tuina w grupie Tuina. Wykonaj to samo chwytanie i fiksację w grupie pozornej i modelowej bez Tuiny. Działaj co drugi dzień przez 4 tygodnie (Rysunek 1).

3. Ustanowienie modelu KOA

  1. Wykonaj adaptacyjne karmienie królików w standardowych warunkach w 1 tygodniu. Ad libitum dostęp do wody i pożywienia. Umieść króliki na prawym boku w pudełkach do mocowania królików, aby je uspokoić przez 15 minut dziennie. Przymocuj ich głowy do płyt mocujących głowę. Zamocuj płytki mocujące i, aby króliki nie mogły się poruszać. Nosić rękawice ochronne podczas chwytania i mocowania królików (Rysunek 1).
  2. W dniach 1, 4 i 7 tygodnia 2 umieść wszystkie 18 królików na prawym boku w pudełkach do mocowania królików (Rysunek 1). Wykonaj poniższe czynności.
  3. Wstrzyknąć 3% pentobarbitalu sodu (1 ml/kg) do żyły brzeżnej ucha królika. Ogol lewy staw kolanowy królika golarką dla zwierząt, dzięki czemu na odsłoniętej skórze nie pojawią się włosy.
  4. Zdezynfekuj lewy staw kolanowy królika od wewnątrz za pomocą medycznego jodoforu i 75% alkoholu (Rysunek 2A).
  5. Zegnij lewy staw kolanowy królika pod kątem 60°. Włóż igłę (22G, 0,7 mm x 30 mm) firmy Waixiyan. Wstrzyknąć 4% roztwór papainy (0,1 ml/kg, średnio 0,275 ml na zwierzę o wadze 2,5 kg) do jamy stawu kolanowego grupy modelującej. Wstrzyknąć równą ilość 0,9% roztworu chlorku sodu do grupy pozorowanej. Ta dawka iniekcyjna jest dobrze tolerowana przez zwierzę, nie powodując objawów bólu lub niepokoju (Rysunek 2B).
    UWAGA: Waixiyan (EX-LE5) znajduje się w bocznym zagłębieniu więzadła rzepki, a Neixiyan (EX-LE4) znajduje się w zagłębieniu przyśrodkowym więzadła rzepki20,21,22.
  6. Naciśnij otwór na szpilkę przez 2 minuty, aby uniknąć rozlania roztworu.
  7. Połóż ręce powyżej i poniżej lewego stawu kolanowego królika. Delikatnie i biernie zegnij staw kolanowy królika i rozciągnij go 10 razy w fizjologicznym zakresie ruchu (ROM), aby równomiernie naciekazić roztwór do jamy stawu kolanowego15. Obserwuj królika co 8 godzin przez cały czas trwania modelowania. Buprenorfinę SR (0,18 mg/kg) należy podawać, gdy króliki wykazują oznaki ukrywania się, drżenia kończyn, płytkiego i szybkiego oddechu, a nawet gryzienia i drapania.
  8. W 7 tygodniu obserwuj lewe kolano królika w zgiętej pozycji jako spuchnięte, ze zwiększonym napięciem mięśniowym wokół kolana z guzkami i rozstępami, zwiększoną miejscową bolesną reakcją podrażnieniową, zmniejszoną ROM kolana, kulawy chód i przesunięcie środka ciężkości na zdrową stronę. To decyduje o sukcesie modelu KOA (Rysunek 1, Rysunek 2C)23,24.

4. Manipulacja Tuina

  1. Wykonaj trening za pomocą przyrządu do określania parametrów techniki Tuina przed manipulacją Tuina. Trenuj przez 1 godzinę dziennie przez 1 miesiąc przez tego samego profesjonalistę.
    1. Metodę rotacyjnego ugniatania i wyciskania kciukiem na platformie symulacji manipulacji Tuina należy wykonać z siłą 5 N i częstotliwością 60 razy/min (Rysunek 3A,C).
    2. Przeanalizuj siłę w trzech kierunkach osi X, Y i Z za pomocą oprogramowania do przetwarzania parametrów manipulacyjnych Tuina i sprawdź wielkość, częstotliwość i czas działania siły wyświetlany na ekranie (Rysunek 3B, D).
    3. Oceń parametry mechaniczne manipulacji Tuina i ustandaryzuj manipulację Tuina za pomocą oprogramowania podczas treningu. Utrzymuj znormalizowaną metodę rotacyjnego ugniatania i prasowania kciukiem z siłą 5 N, częstotliwością 60 razy/min i ciągłym czasem pracy 10 minut. Zobacz ustandaryzowany przebieg ilościowy manipulacji w Rysunek 3B,D25,26,27.
  2. Umieść królika na prawym boku w pudełku mocującym królika. Delikatnie głaskaj królika przez 10 sekund, aby go uspokoić i zrelaksować21. Następnie wykonaj interwencję Tuina.
  3. Wykonaj metodę ugniatania rotacyjnego z kciukiem na sztywności lewych mięśni okołokolanowych królika, węzłach ścięgien i rzepce, z manipulacją w obie strony w górę iw dół z siłą 5 N i częstotliwością 60 razy/min przez 5 minut.
  4. Użyj kciuka, aby nacisnąć Yanglingquan (GB 34), Yinlingquan (SP 9), Waixiyan (EX-LE5), Neixiyan (EX-LE4), Heding (EX-LE2), Xuehai (SP 10), Liangqiu (ST 34) i Weizhong (BL 40)20,21,22, z siłą 5 N i częstotliwością 60 razy/min, i działaj w każdym punkcie przez 30 s.
  5. Wykonaj metodę korekcji rotacyjnej na stawie kolanowym królika i wykonaj ją 3x osobno dla każdego zwierzęcia w grupie.
    1. Napraw kość udową jedną ręką. Najpierw umieść drugą rękę za stawem kolanowym, a następnie przymocuj boczne i przyśrodkowe kłykcie piszczelowe odpowiednio kciukiem i palcem serdecznym. Napraw dół podkolanowy palcami wskazującym i środkowym. Zastosuj siłę pociągową i skręcającą.
    2. Napraw kość udową jedną ręką. Przyśrodkowe i boczne krawędzie rzepki zamocuj kciukiem i małymi palcami drugiej ręki. Zamocuj podstawę rzepki palcami wskazującym, środkowym i serdecznym. Zastosuj siłę skręcającą.
    3. Utrzymuj kierunek siły pociągowej równoległy do długiej osi kości piszczelowej, a kierunek siły skręcającej zgodnie z kierunkiem dolnego Xiyan. Użyj palców, aby przytrzymać skórę na miejscu, aby uniknąć tarcia między skórą a palcami.

5. Pomiar ROM stawu kolanowego

UWAGA: Przed pomiarem uspokój królika. Statystyk pomiarowy i operator różnią się od siebie.

  1. Zmierz ruchomość lewego stawu kolanowego królików z każdej grupy na początku eksperymentu i na końcu każdego tygodnia.
  2. Umieść królika na prawym boku w pudełku mocującym królika i przymocuj jego lewą kość udową jedną ręką.
  3. Wyrównaj środek okręgu artroskopu medycznego z bocznym środkiem lewego stawu kolanowego królika. Wysuń ramię mocujące tak, aby było równoległe do przedłużenia linii łączącej środek okręgu z krętarzem większym. Wyprostuj ruchome ramię tak, aby było równoległe do osi podłużnej kości piszczelowej.
  4. Połóż drugą rękę na osi podłużnej kości piszczelowej, około 9 cm od stawu kolanowego. Ręcznie przyłóż około 750-850 g momentu obrotowego przy prędkości kątowej 3°/s28.
  5. Wykonuj to, aż staw kolanowy królika przestanie się poruszać . Zapisz liczbę stopni wyświetlanych przez goniometr, gdy staw przestaje się poruszać; to jest ROM stawu kolanowego. Podczas czytania upewnij się, że linia wzroku jest prostopadła do powierzchni linijki.
  6. Zmierz ROM dla każdego kolana 3x i weź średnią wartość28.

6. Barwienie hematoksyliną-eozyną (HE)

  1. Pobieranie próbek
    1. Po 1 tygodniu od zakończenia interwencji (Rysunek 1) umieść królika na prawym boku w pudełku do fiksacji królika (króliki są bardziej skłonne do pozostania zrelaksowanym, gdy leżą na prawym boku). Wstrzyknąć pentobarbiton (100 mg/kg) do żyły brzeżnej ucha królika w celu humanitarnej eutanazji29,30.
    2. Szybko otwórz lewą jamę kolana za pomocą skalpela, nożyczek i kleszczy hemostatycznych, aby usunąć tkankę miękką przyczepioną wokół chrząstki dystalnej kości udowej.
    3. Pobrać próbkę chrząstki i kości dystalnej kości udowej o wymiarach około 1 cm x 1 cm za pomocą kleszczy do gryzienia i umieścić ją w soli fizjologicznej w celu oczyszczenia.
  2. Utrwalanie i odwapnianie
    1. Umieść chrząstkę w 4% roztworze paraformaldehydu i utrwal ją przez 72 godziny.
    2. Płukać pod bieżącą wodą przez 12 godzin. Odkamieniać w roztworze odwapniającym kwasu etylenodiaminotetraoctowego (EDTA) przez 6 tygodni. Zmieniaj roztwór odwapniający EDTA co 3 dni. Określ punkt końcowy odwapnienia, gdy tkanka kostna staje się miękka i elastyczna, może być łatwo zgięta i płynnie przekłuwana igłą31.
  3. Odwodnienie osadzonych sekcji
    1. Umieść próbkę w automatycznej suszarce w celu odwodnienia.
    2. Nawoskowaną i przyciętą chusteczkę ułożyć na dnie kwadratowego pojemnika z rozpuszczonym woskiem parafinowym na 1 godzinę. Umieść je w piecu chłodzącym, aż ostygną i zestalą się w twarde bloki. Blok tkanki zatopiony w parafinie należy pokroić w krajalnicę na grubość 4 μm.
    3. Rozłóż sekcje w wybielaczu, a następnie umieść je na szkiełkach samoprzylepnych, ponumeruj je i wysusz za pomocą maszyny do pieczenia plastrów i piekarnika.
  4. Dewoskowanie i nawilżanie
    1. Piecz kawałki w temperaturze 65 °C przez 60 minut.
    2. Namocz skrawki w ksylenie przez 7 minut, a następnie w kolejnych 2 rundach moczenia w świeżym ksylenie przez 7 minut każda.
    3. Namocz plaster w bezwodnym etanolu przez 5 minut, a następnie moczyć przez 2 minuty w 95% etanolu, 85% etanolu i 75% etanolu.
    4. Moczyć skrawki w wodzie destylowanej przez 2 min.
  5. Barwienie hematoksyliną: Skrawki barwić hematoksyliną przez 20 s. Spłucz skrawki pod bieżącą wodą. Moczyć skrawki w frakcjonowaniu etanolu w kwasie solnym przez 3 s. Opłucz skrawki w wodzie z kranu przez 5 minut.
  6. Ponowne barwienie eozyny: Skrawki bejcowania eozyną przez 30 s. Spłucz sekcje wodą z kranu.
  7. Dehydratacja w celu zapewnienia przezroczystości próbki
    1. Umieść sekcje w 95% etanolu dwukrotnie na 3 s każda, a następnie umieść w bezwodnym etanolu na 3 s.
    2. Ponownie umieść plastry w bezwodnym etanolu na 1 minutę, a następnie 2 rundy mycia ksylenem przez 1 minutę każda.
  8. Uszczelnianie plastrów: Wyjmij plastry, upuść neutralny uszczelniacz do gumy, przykryj szkiełkiem nakrywkowym i pozostaw plastry do wyschnięcia w dygestorium, aż będą bezwonne.
  9. Fotografowanie próbki: Obserwować i fotografować w polu widzenia mikroskopu świetlnego pod kątem 100x.
  10. Ocena: Oceń tkankę chrzęstną za pomocą wyniku Mankina dla każdej grupy32.

7. Analiza danych

  1. Analizuj statystycznie dane eksperymentalne za pomocą oprogramowania analitycznego. Gdy dane poddano rozkładowi normalnemu, porównaj dwie grupy próbek za pomocą testu t i wiele grup za pomocą jednoczynnikowej analizy ANOVA.
  2. Wyraź wyniki jako średnią ± odchylenie standardowe (SD). Przedstawianie wyników w postaci wykresów statystycznych przy użyciu komercyjnego oprogramowania. Różnice były istotne statystycznie przy p < 0,05.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Stopień ograniczenia ruchomości kolana oraz uszkodzenia tkanki chrzęstnej odzwierciedlają stopień zaawansowania KOA. Zakres ruchu (ROM) stawu kolanowego obrazuje stopień ograniczenia jego ruchomości. Im mniejszy ROM stawu kolanowego, tym poważniejsze jest ograniczenie ruchu w stawie. I odwrotnie, im większy ROM stawu kolanowego, tym bardziej prawidłowy jest zakres ruchu w kolanie. Barwienie HE w celu obserwacji morfologii i struktury tkanki chrzęstnej odzwierciedla stopień uszkodzenia tej tkanki. Im bardziej nieregularna...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Projekt protokołu eksperymentalnego jest szczególnie ważny dla zbadania mechanizmu działania leku Tuina w leczeniu KOA. Modelowanie KOA przeprowadzono na królikach poprzez wstrzyknięcie papainy w Waixiyan. Waixiyan znajduje się w bocznej krypcie więzadła rzepki, które jest łatwe do zlokalizowania, a przestrzeń stawowa między kością udową a piszczelową jest tutaj duża podczas zgięcia kolana, co ułatwia wstrzyknięcie do jamy stawu kolanowego i zapobiega uszkodzeniom otaczających tkanek, dzięki czemu łatwo jest ustalić mode...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy deklarują brak potencjalnych konfliktów interesów.

Podziękowania

Ta praca była wspierana przez Projekt Nauki i Technologii Tradycyjnej Medycyny Chińskiej Prowincji Shandong (2021Q080) oraz Projekt Dziedziczenia Akademickiej Szkoły Tradycyjnej Medycyny Chińskiej Qilu [Lu-Wei-Letter (2022) 93].

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
0,9 % chlorek sodu do wstrzykiwańSichuan Keren Pharmaceutical Co.Z22121903-20
° C lodówkaHaierBD-328WL
4 % roztwór utrwalającySolarbioP1110
4° C lodówkaHaierSC-315DS
Bezwodny etanolSinopharm
Automatyczna maszyna do odwadniania tkanekDakowei (Shenzhen) Medical Equipment Co.HP30
Shanghai Yiheng Scientific Instruments Co.DHG-9070A Szkiełko
nakrywkoweBiyuntianFCGF50
Termostat elektryczny łaźnia wodnaShanghai Yiheng Scientific Instruments Co.HWS-26
Stół do zamrażaniaChangzhou Paishijie Medical Equipment Co.BM450
Maszyna do zatapianiaChangzhou Paishijie Medical Equipment Co.BM450A
Roztwór odwapniający kwas etylenodiaminotetraoctowyServicebioG1105-500ML
Fluorescencyjny mikroskop odwróconyLeicaLeica DM IL LED
Zestaw do barwienia hematoksyliny-eozynyCisco JetEE0012
Kwas solnyLaiyang Strefa Rozwoju Gospodarczego i Technologicznego Zakład
Goniometr medycznystawów KOSLO
Neutralna gumaCisco JetEE0013
Normalnej jakości samiec królika nowozelandzkiegoJinan Xilingjiao Centrum Hodowli i HodowliSCXK (Lu) 2020 0004
Papaina (3000 U / mg)BiossD10366
Patologiczny instrument do wybielania i suszenia tkanekChangzhou Paishijie Medical Equipment Co. PH60
Elektryczne maszynki do strzyżenia zwierzątCodosCP-3180
Skrzynka mocująca królikadowolnej marki
Krajalnica obrotowaLeica531CM-Y43
Przyrząd do określania parametrów techniki TuinaShanghai DuKang Instrument Equipment Co., Ltd.ZTC-figure-materials-1
WentylatorTALY ELECTRICC32
KsylenFuyu Odczynnik
Piec do suszenia strumieniowego Chemiczny Fine

Bibliografia

  1. Long, H. B., et al. Prevalence trends of site-specific osteoarthritis from 1990 to 2019: findings from the global burden of disease study 2019. Arthritis & Rheumatology. 74 (7), 1172-1183 (2022).
  2. Tschopp, M., et al. A randomized trial of intra-articular injection therapy for knee osteoarthritis. Investigative Radiology. 58 (5), 355-362 (2023).
  3. Buchanan, W. W., Kean, C. A., Kean, W. F., Rainsford, K. D. Osteoarthritis. Inflammopharmacology. , (2023).
  4. Wang, W. Y., et al. A randomized, parallel control and multicenter clinical trial of evidence-based traditional Chinese medicine massage treatment VS External Diclofenac Diethylamine Emulgel for the treatment of knee osteoarthritis. Trials. 23 (1), 555(2022).
  5. Wang, M. N., et al. Mechanism of traditional Chinese medicine in treating knee osteoarthritis. Journal of Pain Research. 13, 1421-1429 (2020).
  6. Katz, J. N., Arant, K. R., Loeser, R. F. Diagnosis and treatment of hip and knee osteoarthritis: A review. The Journal of the American Medical Association. 325 (6), 568-578 (2021).
  7. Chang, A., et al. The relationship between toe-out angle during gait and progression of medial tibiofemoral osteoarthritis. Annals of the Rheumatic Diseases. 66, 1271-1275 (2007).
  8. Jenkyn, T. R., Hunt, M. A., Jones, I. C., Giffin, J. R., Birmingham, T. B. Toe-out gait in patients with knee osteoarthritis partially transforms external knee adduction moment into flexion moment during early stance phase of gait: a tri-planar kinetic mechanism. Journal of Biomechanics. 41 (2), 276-283 (2008).
  9. Brouwer, G. M., et al. Association between valgus and varus alignment and the development and progression of radiographic osteoarthritis of the knee. Arthritis & Rheumatism. 56 (4), 1204-1211 (2007).
  10. Liao, C. D., et al. Effects of protein supplementation combined with resistance exercise training on walking speed recovery in older adults with knee osteoarthritis and sarcopenia. Nutrients. 15 (7), 1552(2023).
  11. Thudium, C. S., et al. Cartilage tissue turnover increases with high-compared to low-intensity resistance training in patients with knee OA. Arthritis Research & Therapy. 25 (1), 22(2023).
  12. Zheng, L. J., et al. Shutiao Jingjin massage can stabilize intracellular environment of rabbit chondrocytes following knee osteoarthritis-induced cartilage injury. Zhongguo Zuzhi Gongcheng Yanjiu. 27, (2023).
  13. Liu, K. Q., et al. Efficacy and safety of Tuina (Chinese therapeutic massage) for knee osteoarthritis: A randomized, controlled, and crossover design clinical trial. Frontiers in Medicine. 10, 997116(2023).
  14. Wang, Z., et al. Systematic Review and Network Meta-analysis of Acupuncture Combined with Massage in Treating Knee Osteoarthritis. BioMed Research International. 2022, 4048550(2022).
  15. Li, Y. Y., et al. Therapeutic effect of acupotomy at Sanheyang for cartilage collagen damage in moderate knee osteoarthritis: a rabbit model. Journal of Inflammation Research. 16, 2241-2254 (2023).
  16. Guo, G. X., et al. Cerebral mechanism of Tuina analgesia in management of knee osteoarthritis using multimodal MRI: study protocol for a randomised controlled trial. Trials. 23 (1), 694(2022).
  17. Perlman, A., et al. Efficacy and safety of massage for osteoarthritis of the knee: a randomized clinical trial. Journal of General Internal Medicine. 34 (3), 379-386 (2019).
  18. Chen, B. J., et al. Aerobic exercise combined with glucosamine hydrochloride capsules inhibited the apoptosis of chondrocytes in rabbit knee osteoarthritis by affecting TRPV5 expression. Gene. 830, 146465(2022).
  19. Rasheed, M. S., Ansari, S. F., Shahzadi, I. Formulation, characterization of glucosamine loaded transfersomes and in vivo evaluation using papain induced arthritis model. Scientific Reports. 12 (1), 19813(2002).
  20. Li, Z. R. Experimental acupuncturology. Beijing: China Press of Traditional Chinese Medicine. 2003, 314-319 (2003).
  21. Hu, Y. L. Manual of practical animal acupuncture. Beijing: China Press of Agriculture. 2003, 286-298 (2014).
  22. Liu, J., et al. Effects of "knot-loosing" of acupotomy on motor function and morphological changes of knee joint in knee osteoarthritis rabbits. Zhen Ci Yan Jiu. 46 (2), 129-135 (2021).
  23. Li, Q., et al. The protective effects and mechanism of Ruyi Zhenbao Pill, a Tibetan medicinal compound, in a rat model of osteoarthritis. Journal of Ethnopharmacology. 308, 116255(2023).
  24. Kwon, M., Nam, D., Kim, J. Pathological characteristics of monosodium iodoacetate-induced osteoarthritis in rats. Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 20 (3), 435-446 (2023).
  25. Wang, J. G., Tang, C. L. Experimental Tuina science. Beijing: China Press of Traditional Chinese Medicine. Chinese. , (2017).
  26. Fang, M., Song, B. L. Tuina science. Beijing: China Press of Traditional Chinese Medicine. , (2016).
  27. Jin, X. Y., Yu, Y. Y., Lin, Y. Y., Yang, J. P., Chen, Z. H. Tendon-regulating and bone-setting manipulation promotes the recovery of synovial inflammation in rabbits with knee osteoarthritis via the TLR4-MyD88-NF-κB signaling pathway. Annals of Translational Medicine. 11 (6), 245(2023).
  28. Wang, M., Liu, C., Xiao, W. Intra-articular injection of hyaluronic acid for the reduction in joint adhesion formation in a rabbit model of knee injury. Knee Surgery, Sports Traumatology, Arthroscopy: Official Journal of the ESSKA. 22 (7), 1536-1540 (2014).
  29. Xu, C., et al. Bacterial cellulose membranes used as artificial substitutes for dural defection in rabbits. International Journal of Molecular Sciences. 15 (6), 10855-10867 (2014).
  30. Leary, S., et al. AVMA guidelines for the euthanasia of animals: 2020 edition. Schaumburg: American Veterinary Medical Association. 2020, (2020).
  31. Amirtham, S. M., Ozbey, O., Kachroo, U., Ramasamy, B., Vinod, E. Optimization of immunohistochemical detection of collagen type II in osteochondral sections by comparing decalcification and antigen retrieval agent combinations. Clinical Anatomy. 33 (3), 343-349 (2020).
  32. Niazvand, F., et al. Curcumin-loaded poly lactic-co-glycolic acid nanoparticles effects on mono-iodoacetate-induced osteoarthritis in rats. Veterinary Research Forum: An International Quarterly Journal. 8 (2), 155-161 (2017).
  33. Liu, A., et al. Intra-articular injection of umbilical cord mesenchymal stem cells loaded with graphene oxide granular lubrication ameliorates inflammatory responses and osteoporosis of the subchondral bone in rabbits of modified papain-induced osteoarthritis. Frontiers in Endocrinology. 12, 822294(2022).
  34. Hall, M. M. The accuracy and efficacy of palpation versus image-guided peripheral injections in sports medicine. Current Sports Medicine Reports. 12 (5), 296-303 (2013).
  35. Xing, L., et al. Traditional Chinese medicine ointment combined with Tuina therapy in treatment of pain and swelling after total knee arthroplasty. World Journal of Orthopedics. 13 (10), 932-939 (2022).
  36. Xu, H., et al. The effectiveness of Tuina in relieving pain, negative emotions, and disability in knee osteoarthritis: a randomized controlled trial. Pain Medicine. 24 (3), 244-257 (2023).
  37. Ding, N., et al. Mast cells are important regulator of acupoint sensitization via the secretion of tryptase, 5-hydroxytryptamine, and histamine. The Public Library of Science One. 13 (3), e0194022(2018).
  38. Cai, F. H., Li, F. L., Zhang, Y. C., Li, P. Q., Xiao, B. Research on electroacupuncture parameters for knee osteoarthritis based on data mining. European Journal of Medical Research. 27 (1), 162(2022).
  39. Mei, Z. G., Cheng, C. G., Zheng, J. F. Observations on curative effect of high-frequency electric sparkle and point-injection therapy on knee osteoarthritis. Journal of Traditional Chinese Medicine. 31 (4), 311-315 (2011).
  40. Xiao, G., et al. Effect of manipulation on cartilage in rats with knee osteoarthritis based on the Rho-associated protein kinase/LIM kinase 1/Cofilin signaling pathways. Journal of Traditional Chinese Medicine. 42 (2), 194-199 (2022).
  41. Wu, M. X., et al. Clinical study on the treatment of knee osteoarthritis of Shen-Sui insufficiency syndrome type by electroacupuncture. Chinese Journal of Integrative Medicine. 16 (4), 291-297 (2010).
  42. Richards, R. E., Andersen, M. S., Harlaar, J., van den Noort, J. C. Relationship between knee joint contact forces and external knee joint moments in patients with medial knee osteoarthritis: effects of gait modifications. Osteoarthritis Cartilage. 26 (9), 1203-1214 (2018).
  43. Shull, P. B., et al. Toe-in gait reduces the first peak knee adduction moment in patients with medial compartment knee osteoarthritis. Journal of Biomechanics. 46 (1), 122-128 (2013).
  44. Adouni, M., Shirazi-Adl, A. Partitioning of knee joint internal forces in gait is dictated by the knee adduction angle and not by the knee adduction moment. Journal of Biomechanics. 47 (7), 1696-1703 (2014).
  45. Kutzner, I., Trepczynski, A., Heller, M. O., Bergmann, G. Knee adduction moment and medial contact force--facts about their correlation during gait. The Public Library of Science One. 8 (12), e81036(2013).
  46. Camacho-Cardenosa, A., et al. Resistance circuit training combined with hypoxia stimulates bone system of older adults: a randomized trial. Experimental Gerontology. 169, 111983(2022).
  47. Babur, M. N., Siddiqi, F. A., Tassadaq, N., Arshad Tareen, M. A., Osama, M. Effects of glucosamine and chondroitin sulfate supplementation in addition to resistance exercise training and manual therapy in patients with knee osteoarthritis: A randomized controlled trial. The Journal of the Pakistan Medical Association. 72 (7), 1272-1277 (2022).
  48. Wang, H. N., et al. Effect of low-load resistance training with different degrees of blood flow restriction in patients with knee osteoarthritis: study protocol for a randomized trial. Trials. 23 (1), 6(2022).
  49. Cheon, Y. H., et al. Relationship between decreased lower extremity muscle mass and knee pain severity in both the general population and patients with knee osteoarthritis: Findings from the KNHANES V 1-2. The Public Library of Science One. 12 (3), e0173036(2017).
  50. Murton, A. J., Greenhaff, P. L. Resistance exercise and the mechanisms of muscle mass regulation in humans: acute effects on muscle protein turnover and the gaps in our understanding of chronic resistance exercise training adaptation. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 45 (10), 2209-2214 (2013).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Regeneracja chrząstkiapoptoza chondrocytówugniatanie rotacyjneruchomość stawu kolanowegoiniekcja papainystymulacja punktów akupunkturyzakres ruchu w stawie
Interwencja Tuina w króliczym modelu choroby zwyrodnieniowej stawu kolanowego
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.