Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Mysi model eksplantatu kończyn tylnych do badania mechanobiologii uderzenia ścięgna Achillesa

2K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/65801

⸱

8 grudnia 2023

 ,  ,  , 

W tym artykule

Podsumowanie

Prezentujemy niestandardową platformę eksperymentalną i protokół hodowli tkankowej, który odtwarza zmiany włóknisto-chrzęstne wywołane uderzeniem przyczepu ścięgna Achillesa w eksplantatach mysich kończyn tylnych o trwałej żywotności komórek, dostarczając model odpowiedni do badania mechanobiologii uderzeń ścięgien.

Streszczenie

Uderzenie ścięgna w kość generuje wieloosiowe środowisko mechanicznego obciążenia z wyraźnie podwyższonym poprzecznym napięciem ściskającym, które wywołuje zlokalizowany fenotyp chrząstki włóknistej charakteryzujący się akumulacją matrycy bogatej w glikozaminoglikany (GAG) i przebudową sieci kolagenowej. Podczas gdy chrząstka włóknista jest normalną cechą w dotkniętych obszarach zdrowych ścięgien, nadmierne odkładanie się GAG i dezorganizacja sieci kolagenowej są charakterystycznymi cechami tendinopatii. W związku z tym uderzenie jest klinicznie uznawane za ważny czynnik zewnętrzny w inicjacji i progresji tendinopatii. Niemniej jednak mechanobiologia leżąca u podstaw uderzeń ścięgien pozostaje niedostatecznie zbadana. Wcześniejsze wysiłki mające na celu wyjaśnienie odpowiedzi komórkowej na uderzenie ścięgna polegały na zastosowaniu jednoosiowej kompresji na komórki i wycięciu eksplantatów ścięgien in vitro. Jednak izolowane komórki nie mają trójwymiarowego środowiska zewnątrzkomórkowego kluczowego dla mechanoodpowiedzi, a zarówno badania in vitro, jak i wycięte eksplantaty nie są w stanie odtworzyć wieloosiowego środowiska napięcia generowanego przez uderzenie ścięgna in vivo, które zależy od cech anatomicznych obszaru uderzenia. Co więcej, modele uderzeń ścięgien in vivo nie mają kontroli nad środowiskiem odkształceń mechanicznych. Aby przezwyciężyć te ograniczenia, przedstawiamy nowatorski model eksplantatu mysich kończyn tylnych, odpowiedni do badania mechanobiologii uderzenia ścięgna Achillesa. Model ten utrzymuje ścięgno Achillesa in situ, aby zachować lokalną anatomię i odtwarza środowisko wieloosiowego obciążenia generowanego przez uderzenie przyczepu ścięgna Achillesa w kość piętową podczas biernie stosowanego zgięcia grzbietowego kostki, zachowując komórki w ich naturalnym środowisku. Opisujemy protokół hodowli tkankowej integralnie związany z tym modelem i przedstawiamy dane potwierdzające trwałą żywotność eksplantacji przez 7 dni. Reprezentatywne wyniki wskazują na zwiększone histologiczne barwienie GAG i zmniejszone wyrównanie włókien kolagenowych wtórne do uderzenia, co sugeruje zwiększone tworzenie chrząstki włóknistej. Model ten można łatwo dostosować do badania różnych schematów obciążenia mechanicznego i pozwala na manipulowanie interesującymi szlakami molekularnymi w celu identyfikacji mechanizmów pośredniczących w zmianie fenotypowej ścięgna Achillesa w odpowiedzi na uderzenie.

Wprowadzenie

Wiele ścięgien, w tym ścięgno Achillesa i ścięgna stożka rotatorów, doświadcza uszkodzenia kości z powodu normalnego ułożenia anatomicznego1,2,3,4. Uderzenie ścięgna generuje odkształcenie ściskające skierowane poprzecznie do osi włókna podłużnego5,6,7. Regiony uderzenia ścięgna wykazują unikalny fenotyp chrząstki włóknistej, w którym skurczone, okrągłe komórki (fibrochondrocyty) są osadzone w zdezorganizowanej sieci kolagenowej ze znacznie zwiększo....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie prace z udziałem zwierząt zostały zatwierdzone przez Komitet ds. Zasobów Zwierzęcych Uniwersytetu w Rochester.

1. Przygotowanie pożywek do hodowli tkankowych

  1. Wszystkie eksplanty należy hodować w podłożu Dulbecco's Modified Eagle Medium (1x DMEM) z dodatkiem 1% v/v penicyliny-streptomycyny i 200 µM kwasu L-askorbinowego w inkubatorze w temperaturze 37 °C i 5% CO2. Podczas wstępnej obróbki trwającej 48 h, każdy eksplant należy hodować w 70 mL pożywki uzupełnionej o 100 nM deksametazonu74. Po obróbce wstępnej kończyny należy hodować przez kolejne 7 dni bez deksametazonu,....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Reprezentatywne obrazy przekrojów tkanek barwionych metodą TUNEL wykazują minimalną liczbę apoptotycznych jąder w obrębie ścięgna Achillesa po 7 dniach hodowli eksplantu we wszystkich grupach eksperymentalnych (Rycina 2A). Ilościowa analiza tych obrazów dostarcza dowodów, że protokół hodowli tkankowej utrzymuje średnio do 78% żywotności w obrębie ścięgna Achillesa po 7 dniach hodowli eksplantu przy różnych warunkach obciążenia (Rycina 2B).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Eksperymentalna platforma eksplantacyjna mysiej kończyny tylnej w połączeniu z protokołem hodowli tkankowej opisanym w tym badaniu stanowi odpowiedni model do badania mechanobiologii powstawania chrząstki włóknistej napędzanej uderzeniem w przyczepie ścięgna Achillesa. Użyteczność tego modelu eksplantacji jest wykazana przez reprezentatywne wyniki, które wskazują na utrzymanie żywotności komórek przy jednoczesnej znaczącej i niejednorodnej przestrzennie zmianie zabarwienia błękitem toluidyny po 7 dniach uderzenia statycz.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Autorzy są wdzięczni za wsparcie i pomoc udzieloną przez Jeffa Foxa i Vidyę Venkatramani z University of Rochester Center for Musculoskeletal Research's Histology, Biochemistry, and Molecular Imaging (HBMI) Core, finansowane częściowo przez P30AR06965. Dodatkowo autorzy chcieliby podziękować Centrum Mikroskopii Świetlnej i Nanoskopii (CALMN) w Centrum Medycznym Uniwersytetu w Rochester za pomoc w mikroskopii wielofotonowej. Badanie to zostało sfinansowane przez R01 AR070765 i R01 AR070765-04S1, a także 1R35GM147054 i 1R01AR082349.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Podkłady chłonneVWR82020-845Do preparacji stołowej
Wanna akrylowaŹródło JedenX001G46CB1Zawiera platformę eksplantacyjną zanurzoną w pożywce hodowlanej
Pojemnik na autoklawThermo Scientific13-361-20Używany jako wtórne zabezpieczenie, mieści dwie platformy
Baza-wydrukowana w 3D z plików CAD dostarczonych jako pliki uzupełniające
Plecionkatestowa KastKing30lbSłuży do owijania wokół łapy i nakładania zgięcia grzbietowego kostki
Klips-wydrukowany w 3D z plików CAD dostarczonych jako pliki uzupełniające
Szkło osłonoweFisherbrand12-541-034Prostokątne, nr 2, 50 mm x 24 mm
Cytoseal XYLVWR8312-4Nośniki montażowe na bazie ksylenu do szkiełek nakrywkowych Niebieska tkanka barwiona toluidyną Sekcje
DeksametazonMP Biomedical LLC194561CAS#50-02-2
Dimetylosulfotlenek (DMSO), bezwodnyInvitrogen firmy ThermoFisherD12345CAS#67-68-5, służy do rozpuszczania deksametazonu w stężonych roztworach podstawowych
Taśma dwustronnaScotch Brand34-8724-5195-9Do mocowania papieru ściernego do płyt dociskowych
Dulbecco's Modified Eagle Medium (1X DMEM)Gibco firmy ThermoFisher11965092wysoka zawartość glukozy, (-) pirogronian, (+) glutamina
EDTA sól tetrasodowa dwuwodnaThermo Scientific ChemicalsJ15700. A1CAS # 10378-23-1, służy do wytwarzania 14% roztworu EDTA do odkamieniania próbek
Etanol, 200 proofThermo ScientificT038181000CAS#64-17-5, 1 L zapas
Piankowe podkładki do biopsjiLeica3801000Używany z kasetami do obróbki, pomaga utrzymać stawy skokowe w pożądanej pozycji podczas mocowania i odwapniania
Kleszcze, #SS Standard InoxDumont11203-23Prosty, gładki, drobny końcówki
Kleszcze, Micro-Adson 4,75"Fisherbrand13-820-073Proste, cienkie końcówki z ząbkowanymi zębami
Papier ścierny granat, ziarnistość 50-DNortonM600060 01518Lub inny papier ścierny o grubej ziarnistości
Lodowaty kwas octowyFisher ChemicalA38S-500CAS # 64-19-7, do regulacji pH buforu octanu sodu stosowanego do histologii błękitu toluidyny, a także 14% roztworu odwapniającego EDTA
UchwytyADMETGV-100NT-A4Imadło ze stali nierdzewnej Uchwyty, i sprężyny opisane w protokole są dołączone
Szkiełka mikroskopowe samoprzylepne HistobondVWR16005-108Strzałkowe sekcje kończyn tylnych niezawodnie przylegają do tych szkiełek we wszystkich protokołach barwienia
Zestaw do wykrywania śmierci komórek in situ, test TMR RedRoche12156792910TUNEL
Taśma do etykietowaniaFisherbrand15-959Lub dowolna inna preferowana taśma do etykietowania
Kwas L-askorbinowySigma-AldrichA4544-100GCAS#50-81-7, do formułowania pożywek Neutralna
buforowana formalina, 10%Leica3800600Do utrwalania próbki, zapas 5 galonów
Szalki Petriego NuncSigma-AldrichP7741-1CSŚrednica 100 mm x wysokość 25 mm, utrzymuj eksplantaty zanurzone w 70 ml pożywki hodowlanej, jak opisano w protokole
Penicylina-streptomycyna (100X)Gibco firmy ThermoFisher15140122Dodaj 5 ml do 500 ml 1X DMEM dla 1% v/v (1X) stężenia roboczego
Kwas polimlekowy (PLA) 1,75 mmHatchbox-Wybierzśrednicę filamentu kompatybilną z Twoją wytłaczarką do drukarki 3D, w kolorze do wyboru.
Kasety obróbczeLeica3802631Do utrwalania, odwapniania i zatapiania parafiny
Odczynnik Prolong Gold Antifade z DAPIInvitrogen firmy ThermoFisherP36931Podłoże montażowe do nakrywki skrawków tkanek po TUNEL
Proteinaza KFisher BioReagentsBP1700-50CAS#39450-01-6, używany do pobierania antygenu w protokole TUNEL
Nożyczki, drobneFST14094-11Prosty, ostry
zestaw do barwienia szkiełek, 12-miejscowyMercedes Scientific MER 1011Stojak z 12 naczyniami do barwienia i suwakami do histologii błękitu toluidyny
Octan sodu, bezwodnyThermo Scientific ChemicalsA1318430CAS#127-09-3, używany do wytwarzania bufora do histologii błękitu toluidyny
Tissue-Tek Accu-Edge Niskoprofilowe ostrza mikrotomuVWR25608-964Do cięcia parafiny
Błękit toluidynowy OThermo Scientific Chemicals348601000CAS#92-31-9
Wkładka zmniejszająca objętość-wydrukowana w 3D z plików CAD dostarczonych jako pliki uzupełniające
KsylenyLeica38036654 galony do barwienia histologicznego

Bibliografia

  1. Cook, J. L., Purdam, C. Is compressive load a factor in the development of tendinopathy. Br J Sports Med. 46 (3), 163-168 (2012).
  2. Benjamin, M., Qin, S., Ralphs, J. R. Fibrocartilage associated with human tendons and their pulleys. J Anat. 187 (Pt 3), 625-633 (1995)....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Model impingementu ścięgnaodkształcenie wieloosiowetworzenie chrząstki włóknistejakumulacja glikozaminoglikanówprzebudowa kolagenustatyczny impingementhodowle tkankowe