Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Spektroskopia bliskiej podczerwieni podczas przekrwienia reaktywnego w celu oceny funkcji naczyniowej kończyn dolnych

2.1K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/66511

⸱

22 marca 2024

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1VasoActive Research Group, School of Health, University of the Sunshine Coast, 2Centre for Trials Research, College of Biomedical and Life Sciences, Cardiff University, 3Sunshine Coast Health Institute, Sunshine Coast Hospital and Health Service

W tym artykule

Podsumowanie

Tutaj opisujemy nieinwazyjne podejście wykorzystujące spektroskopię bliskiej podczerwieni do oceny reaktywnego przekrwienia kończyny dolnej. Protokół ten zapewnia standaryzowaną ocenę reakcji naczyniowej i mikronaczyniowej, która może być wykorzystana do określenia obecności dysfunkcji naczyniowej, a także skuteczności interwencji terapeutycznych.

Streszczenie

Choroby naczyniowe kończyny dolnej znacząco przyczyniają się do globalnego obciążenia chorobami sercowo-naczyniowymi i chorobami współistniejącymi, takimi jak cukrzyca. Co ważne, dysfunkcja mikronaczyniowa może wystąpić przed lub obok patologii makronaczyniowej i obie potencjalnie przyczyniają się do objawów pacjenta i obciążenia chorobą. W tym miejscu opisano nieinwazyjne podejście wykorzystujące spektroskopię w bliskiej podczerwieni (NIRS) podczas reaktywnego przekrwienia, które zapewnia standaryzowaną ocenę funkcji naczyniowej (dys)funkcji kończyn dolnych oraz potencjalną metodę oceny skuteczności interwencji terapeutycznych. W przeciwieństwie do metod alternatywnych, takich jak ultrasonografia ze wzmocnieniem kontrastowym, podejście to nie wymaga dostępu żylnego ani zaawansowanej analizy obrazu, a także jest niedrogie i mniej zależne od operatora. Niniejszy opis metody NIRS zawiera reprezentatywne wyniki i standardową terminologię, a także omówienie zagadnień związanych z pomiarami, ograniczeń i metod alternatywnych. Przyszłe zastosowanie tej pracy poprawi standaryzację projektowania badań naczyniowych, procedur gromadzenia danych i zharmonizowanego raportowania, zwiększając w ten sposób wyniki badań translacyjnych w obszarach (dys)funkcji, chorób i leczenia naczyń kończyn dolnych.

Wprowadzenie

Choroby układu krążenia (CVD) są głównym czynnikiem przyczyniającym się do globalnej śmiertelności1. Podczas gdy zawał mięśnia sercowego i udar mózgu są najczęstszymi objawami CVD, choroby naczyniowe kończyn dolnych, takie jak choroba tętnic obwodowych (PAD) i choroba stopy cukrzycowej, w znacznym stopniu przyczyniają się do osobistego, społecznego i zdrowotnego obciążenia CVD2,3,4. Co ważne, te stany chorobowe charakteryzują się dysfunkcją mikro- i makronaczyniową5, które przyczyniają się do wystąpienia objawów (np. chromania przestankowego), upośledzenia funkcjonalnego, słabej mobilności, a także izolacji społecznej i obniżonej jakości życia6. Historycznie rzecz biorąc, techniki oceny naczyń krwionośnych kończyn górnych były stosowane jako miara ogólnoustrojowej funkcji naczyń krwionośnych i związanego z nią ryzyka sercowo-naczyniowego; Jednak metody te potencjalnie nie są wrażliwe na miejscowe upośledzenie funkcji naczyniowej kończyn dolnych7,8. Chociaż obecnie istnieje szereg technik stosowanych do oceny funkcji naczyń krwionośnych kończyny dolnej, takich jak poszerzenie zależne od przepływu (FMD) i ultradźwięki ze wzmocnieniem kontrastowym, każda metoda ma wady i ograniczenia, takie jak koszt sprzętu, umiejętności operatora lub potrzeba inwazyjnego dostępu żylnego. Z tych powodów istnieje zapotrzebowanie na ustandaryzowane i skuteczne techniki oceny funkcji naczyniowej (dys)funkcji kończyn dolnych, które można łatwiej wdrożyć w warunkach badawczych i klinicznych.

Spektroskopia bliskiej podczerwieni (CW-NIRS) to nieinwazyjna, tania i przenośna metoda, która określa ilościowo względne zmiany w natlenieniu hemoglobiny in vivo. Ponieważ sygnały hemoglobiny natlenionej i odtlenionej przez NIRS pochodzą z małych (<1 mm średnicy) naczyń, można ocenić lokalny metabolizm mięśni szkieletowych i funkcję mikrokrążenia9. W szczególności wskaźnik nasycenia tkanek (TSI) [TSI = hemoglobina utleniona/ (hemoglobina utleniona + hemoglobina odtleniona) x 100], zapewnia ilościową miarę natlenienia tkanek9. Mierzone przed, w trakcie i po okluzji i reaktywnym przekrwieniu, zmiany w TSI wskazują na reakcję naczyniową "narządu końcowego" w stosunku do wartości wyjściowej sprzed okluzji. Co ważne, metoda ta jest wrażliwa na zmiany w reaktywności mikronaczyniowej mięśni i perfuzji związane ze starzeniem się10, progresja choroby11 oraz interwencje kliniczne (np. chirurgia rewaskularyzacyjna12,13 lub rehabilitacja ruchowa14,15,16,17) u osób z dysfunkcją mikrokrążenia lub zagrożoną jej dysfunkcją krążenia.

Dostępność systemów NIRS doprowadziła do szybkiego wzrostu liczby badań naukowych opisujących funkcje mikronaczyniowe18. Jednak różnice w protokołach badania przekrwienia reaktywnego, pominięcie szczegółowych, powtarzalnych metod NIRS, a także brak jednolitości w opisie, prezentacji i analizie parametrów odpowiedzi NIRS sprawiają, że porównania między poszczególnymi badaniami są trudne. Ogranicza to sortowanie danych do metaanalizy i formułowanie zaleceń dotyczących oceny klinicznej9,15.

Dlatego w tym artykule opisujemy ustandaryzowane protokoły NIRS i testów okluzji naczyniowej naszego laboratorium do oceny reaktywnego przekrwienia kończyn dolnych. Upowszechniając te metody, chcemy przyczynić się do poprawy standaryzacji i powtarzalności procedur gromadzenia danych oraz zharmonizowanej sprawozdawczości.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie opisane tutaj metody zostały zatwierdzone przez komisję etyki badań z udziałem ludzi Uniwersytetu Sunshine Coast. Ponadto wszyscy uczestnicy wyrazili pisemną świadomą zgodę na udział w pomiarach opisanych w niniejszym protokole. Należy pamiętać, że testy okluzji naczyniowej w kończynie dolnej są przeciwwskazane u osób, które przeszły wcześniej zabieg rewaskularyzacji z wykorzystaniem przeszczepu naczyniowego lub stentowania tętnic udowej lub podkolanowej. Po przygotowaniu sprzętu uczestnik zostaje poproszony o odpoczynek w pozycji łóżkowej przez 10 min. W tym momencie rozpoczyna się zbieranie danych NIRS, z początkowym 2-minutowym okresem pozwalającym na stabilizację sygnałów NIRS. Następnie przez 1 min zbierane są dane podstawowe, po czym mankiet znajdujący się na udzie zostaje szybko napompowany w celu uzyskania okluzji tętniczej. Okluzję utrzymuje się przez 5 min, po czym mankiet zostaje szybko spuszczony. Zbieranie danych trwa przez cały okres hiperemii reaktywnej, aż do momentu powrotu sygnałów do wartości podstawowych. Rycina 1 przedstawia przegląd protokołu reaktywnej hiperemii, a szczegółowe kroki opisano poniżej. Sprzęt wykorzystany w badaniu wymieniono w Tabela materiałów.

Oś czasu eksperymentu NIRS; odpoczynek w pozycji leżącej, okluzja mankietem, hiperemia reaktywna; schemat analizy.
Rysunek 1: Schemat przedstawiający protokół pomiarowy i ramy czasowe pomiaru hiperemii reaktywnej metodą NIRS. NIRS: spektroskopia bliskiej podczerwieni. Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tego rysunku.

1. Przygotowanie sprzętu

UWAGA: Do uzyskania reprezentatywnych wyników przedstawionych poniżej można wykorzystać różne systemy NIRS, mankiety do pompowania/okluzji oraz systemy zbierania danych. Istotne jest, aby badacze zapoznali się z odpowiednimi instrukcjami obsługi i wzięli pod uwagę specyfikę oprogramowania, kalibracji, światła otoczenia oraz uwarunkowania dotyczące uczestników lub kohort.

  1. Upewnij się, że wszystkie pomiary są wykonywane w cichym pomieszczeniu o kontrolowanej temperaturze (21-23 °C).
  2. Potwierdź dostępność całego sprzętu i materiałów (patrz: Tabela materiałów).
  3. Upewnij się, że urządzenie CW-NIRS oraz komputer, do którego urządzenie przesyła dane, są w pełni naładowane i włączone.
  4. Sprawdź, czy urządzenie NIRS jest sparowane poprzez Bluetooth z komputerem wyświetlającym dane NIRS oraz czy parametry pomiarowe jednostki NIRS zostały zdefiniowane zgodnie z miejscem eksperymentu i planem badania (przykład: zdefiniuj współczynnik różnicowej długości drogi (DPF) światła bliskiej podczerwieni).
    UWAGA: Większość kroków protokołu NIRS i ustawień systemu opiera się na kombinacji zaleceń producenta, doświadczenia badaczy oraz opinii ekspertów/konsensusu. Należy pamiętać, że wartości generowane podczas pomiaru zależą od konkretnego urządzenia i zastosowanych sond, a także od ustawień wybranych w oprogramowaniu urządzenia. Istnieje również możliwość wystąpienia wysokiego stopnia zmienności międzyosobniczej w zbieranych sygnałach. Ponadto, aby umożliwić lepsze porównanie między badaniami, podczas publikowania wyników tych pomiarów ważne jest raportowanie szczegółów instrumentacji NIRS (np. projektu sondy, odległości między źródłem a detektorem i użytych długości fal), ustawień systemu, pozycji/orientacji sondy w stosunku do geometrii mięśnia oraz parametrów analizy/obróbki danych.
  5. Wprowadź dane uczestnika zgodnie ze specyfikacją oprogramowania urządzenia NIRS.
  6. Podłącz szybki pompowacz mankietu do źródeł powietrza i zasilania.

2. Przygotowanie uczestnika

  1. Upewnij się, że uczestnik przeczytał informację dla uczestnika oraz formularz zgody i wyraził zgodę na udział w pomiarach przed ich rozpoczęciem.
  2. Wyjaśnij uczestnikowi przebieg pomiaru, podczas gdy ten zdejmuje buty i skarpetki oraz stoi nieruchomo w celu wykonania odpowiednich pomiarów antropometrycznych.
  3. Wykonaj pomiar fałdu skórnego (w trzech powtórzeniach) w planowanym miejscu pomiaru NIRS (np. na powierzchni przyśrodkowej w punkcie maksymalnego obwodu łydki).
    UWAGA: Pozwala to na potwierdzenie głębokości skóry i tkanki tłuszczowej (rutynowo określanej jako grubość tkanki tłuszczowej – ATT) w odniesieniu do głębokości penetracji sygnału NIRS. Alternatywnie do wyznaczenia grubości tkanki tłuszczowej można użyć badania ultrasonograficznego. Należy zawsze pamiętać, że głębokość sygnału/pomiaru NIRS wynosi około połowy odległości między nadajnikiem a odbiornikiem9.
  4. Aby zmaksymalizować jakość sygnału, sprawdź planowane miejsce umieszczenia sondy nadajnik/odbiornik NIRS pod kątem obecności owłosienia, które może pochłaniać światło, i w razie potrzeby usuń włosy poprzez golenie.
    UWAGA: Jeśli skóra jest uszkodzona, na przykład wskutek zapalenia tkanki podskórnej, lub występuje obrzęk, należy rozważyć zasadność pomiaru, ponieważ problemy te mogą prowadzić do potencjalnego obniżenia jakości sygnału, zmiany głębokości penetracji sygnału/tkanki, z której pobierany jest pomiar, a także wpływać na sterylność rany uczestnika.
  5. Wykonaj pomiary i/lub zaznacz pozycję planowanego umieszczenia sondy NIRS w odniesieniu do odpowiednich punktów anatomicznych (np. powierzchni górnej kłykcia przyśrodkowego), aby umożliwić dokładne rozmieszczenie sondy NIRS u różnych uczestników oraz u jednego uczestnika (zależnie od projektu badania oraz konstrukcji/kształtu sondy), ponieważ odpowiedzi utlenowania mogą wykazywać dużą heterogeniczność między różnymi mięśniami, a nawet w obrębie obszarów tego samego mięśnia.
  6. Poproś uczestnika o położenie się w pozycji tyłem na kozetce badawczej lub łóżku. Następnie uczestnik odpoczywa przez 10 min.
  7. Załóż mankiet wokół uda, proksymalnie w stosunku do kolana, upewniając się, że rurki nie stykają się z łydką ani urządzeniem NIRS (Rysunek 2).
  8. Unieś nogę (~10 cm), opierając stopę i kostkę na wsporniku piankowym, pozostawiając dolną część nogi stabilną i dostępną do pomiarów (Rysunek 3).
    UWAGA: Jeśli test musi zostać przeprowadzony na obu nogach w wielu sesjach, kolejność testów jest randomizowana (przed pierwszym badaniem), a ta sama kolejność jest zachowana podczas kolejnych oceny dla każdego uczestnika.
  9. Włącz moduł szybkiego pompowania mankietu.
    UWAGA: Upewnij się, że tryb i ustawienia ciśnienia szybkopompującego mankietu są zgodne z instrukcjami producenta i specyfikacją protokołu okluzji naczyniowej.
  10. Włącz źródło powietrza pompy mankietu, sprawdź, czy powietrze przepływa przez wąż i podłącz wąż do mankietu udowego.
  11. Upewnij się, że wąż pompy mankietu nadal nie styka się z łydką.
  12. Mocno przymocuj sondę nadajnik/odbiornik NIRS do skóry nad miejscem/miejscami pomiaru (rutynowo na powierzchni przyśrodkowej mięśnia brzuchatego łydki; jednak, w zależności od specyfiki badania i uczestnika, wykorzystuje się również inne miejsca, takie jak grzbiet stopy i mięsień piszczelowy przedni).
    UWAGA: Niektóre systemy NIRS umożliwiają jednoczesny pomiar w wielu miejscach.
  13. Zakryj sondę czarną taśmą kinezjologiczną lub podobnym materiałem, uważając, aby szczelnie zamknąć krawędzie i zapobiec wpływowi światła otoczenia na jakość/wartości sygnału NIRS (Rysunek 3).
    UWAGA: Podczas mocowania sondy i nakładania przylepnego zakrycia należy wyeliminować ruch sondy, unikając jednocześnie uciskania skóry/tkanki tłuszczowej/mięśnia.

Terapia kompresyjna z użyciem mankietu pneumatycznego na ramieniu, sprzęt do restrykcji przepływu krwi.
Rysunek 2: Przykład rozmieszczenia mankietu okluzyjnego na udzie. (A) Widok z góry. (B) Widok z boku. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.

Schemat rozmieszczenia czujników mięśniowych, elektrody przyklejone taśmą do przedramienia w celu rejestracji sygnału EMG.
Rycina 3: Przykład pozycji sondy do spektroskopii bliskiej podczerwieni. (A) Sonda przymocowana do ogolonej skóry w obszarze przyśrodkowej części mięśnia brzuchatego łydki. (B) Rozmieszczenie sondy przy kostce znajdującej się w wsporniku z pianki, aby umożliwić dostęp i zapewnić stabilność. (C) Zastosowane osłony przed światłem zewnętrznym. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

3. Gromadzenie danych bazowych

  1. Poproś uczestnika, aby pozostał zrelaksowany, nie mówił i nie poruszał nogą (nogami) przez cały czas trwania gromadzenia danych.
  2. Uruchom rejestrację w urządzeniu NIRS poprzez interfejs komputerowy.
    UWAGA: Jeśli preferowany jest i włączony tryb gromadzenia danych offline, uruchom urządzenie NIRS bezpośrednio.
  3. Przed rozpoczęciem pomiaru należy pozwolić na zarejestrowanie danych przez co najmniej 2 min. Zapewni to uzyskanie sygnałów w stanie stacjonarnym przed właściwym gromadzeniem danych.
  4. Monitoruj ekran komputera, aby upewnić się co do integralności sygnału danych oraz uzyskania fizjologicznie prawdopodobnych wartości. Na przykład wartości akwizycji danych (DAQ) dostarczają informacji o jakości sygnału i ilości światła otoczenia wykrytego przez urządzenie NIRS. Powinny one pozostawać w dopuszczalnym zakresie przez cały czas trwania pomiaru.
  5. Jeśli po 2 min nie odnotowano wahań sygnału NIRS (np. z powodu artefaktów ruchowych), ustaw linię bazową danych NIRS, naciskając odpowiedni przycisk na komputerze/urządzeniu/jednostce synchronizującej. Linia bazowa ta stanowi porównawczy punkt startowy pomiaru. Zmiany w poziomie hemoglobiny utlenowanej i odtlenowanej będą interpretowane w odniesieniu do tej linii bazowej.
    UWAGA: Podczas gromadzenia danych należy wprowadzić programowe znaczniki zdarzeń dla konkretnych etapów, mianowicie początku i końca linii bazowej, początku i końca okluzji mankietem itp., aby ułatwić analizę danych.
  6. Zebierz co najmniej 1 min danych bazowych, ponownie upewniając się, że w tym czasie nie występują żadne wahania ani artefakty ruchowe.
    UWAGA: Wahania w danych bazowych wpłyną na interpretację niektórych potencjalnych zmiennych, takich jak rezerwa hiperemiczna (patrz sekcja wyników reprezentatywnych).

4. Zator naczyniowy

  1. Przed przełączeniem na tryb mankietu (lub odpowiednie ustawienie w innych systemach), ustaw ciśnienie w mankiecie na 200 mmHg za pomocą szybkiego pompowania mankietu.
    UWAGA: Choć niektórzy autorzy zalecają pompowanie do 250 mmHg na udzie9,19, w naszym doświadczeniu nie jest to dobrze tolerowane przez niektórych uczestników, co prowadzi do przerwania pomiaru. Pompowanie do 200 mmHg jest w większości grup uczestników wystarczające, aby zamknąć dopływ tętniczy w spoczynku, będąc jednocześnie tolerowalne i nie powodując siniaków na skórze. Aby upewnić się, że przy 200 mmHg osiągnięto skuteczną okluzję, nasza grupa rutynowo stosuje plejtmografię tensometryczną jednocześnie z NIRS, aby potwierdzić brak przepływu krwi w dół strumienia podczas okresu pompowania mankietu.
  2. Poinformuj uczestnika, czego spodziewać się (dyskomfortu, uczucia mrowienia itp.) podczas procesu pompowania mankietu do 200 mmHg przez okres 5 min, a następnie całkowitego spuszczenia powietrza z mankietu. Przypomnij uczestnikowi, aby pozostał zrelaksowany, nie rozmawiał i nie poruszał nogą (nogami) przez cały czas zbierania danych.
    UWAGA: Z naszego doświadczenia wynika, że pierwsze 30-60 s okresu okluzji jest najmniej komfortowe dla uczestników. Gdy uczestnicy całkowicie rozluźnią nogi, okluzja staje się zazwyczaj bardziej tolerowalna.
  3. W momencie gotowości do rozpoczęcia pompowania mankietu, zaznacz koniec okresu bazowego w oprogramowaniu NIRS.
  4. Napompuj mankiet udowy do ciśnienia suprasystolicznego 200 mmHg lub alternatywnie do 220 mmHg w rzadkich przypadkach, gdy 200 mmHg okazało się nieskuteczne.
  5. Monitoruj komputer lub ekran, aby zapewnić integralność danych podczas okresu okluzji.
  6. Zbliżając się do końca 5 min okluzji mankietowej, przygotuj uczestnika, przypominając mu, aby trzymał nogę w bezruchu i nie rozmawiał przez około 3 min po spuszczeniu powietrza z mankietu (podczas zbierania danych dotyczących reakcji naczyniowych na hiperemię reaktywną).
    UWAGA: To przypomnienie o zachowaniu bezruchu jest ważne, ponieważ uczestnicy mogą odczuwać pokusę poruszenia kończyną, aby złagodzić dyskomfort w momencie przywracania krążenia.

5. Hiperemia reaktywna

  1. Po upływie 5 min okluzji szybko i całkowicie spuść powietrze z mankietu na udzie (do 0 mmHg). Jednocześnie zaznacz koniec okresu okluzji w oprogramowaniu NIRS. Odpowiedź hiperemii reaktywnej, wynikająca z przywrócenia przepływu krwi i czynników powiązanych, będzie widoczna na wyświetlaczu oprogramowania NIRS (Rysunek 4).
  2. Po upływie minimum 3 min od okluzji lub alternatywnie, gdy dane NIRS powrócą do wartości bazowej, zaznacz koniec okresu regeneracji w oprogramowaniu NIRS i zakończ pomiar.
    UWAGA: Czas regeneracji zależy częściowo od badanego pytania badawczego lub klinicznego, a tym samym od wybranych do analizy parametrów NIRS, a także od możliwości przeprowadzenia pomiarów towarzyszących (takich jak FMD), które mogą wymagać dłuższego czasu regeneracji.
  3. Rozpocznij zapisywanie i eksport wyników NIRS w celu przetwarzania i analizy danych.

6. Procedury kontrolne

  1. Zdejmij urządzenie(a) NIRS oraz mankiet z uczestnika.
  2. W razie potrzeby wyczyść urządzenie NIRS (oraz mankiet okluzyjny) zgodnie z instrukcjami producenta i odpowiednimi standardami higieny.
  3. Przejrzyj urządzenie NIRS, aby upewnić się co do sprawności nadajnika/odbiornika oraz wydajności baterii przed kolejnymi pomiarami.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Spektroskopia w bliskiej podczerwieni
Urządzenia do spektroskopii bliskiej podczerwieni z falą ciągłą mierzą względne zmiany w utlenowanej (O2)2Hb) i hemoglobinę oduksygenowaną (HHb), które odzwierciedlają miejscowe O2 dostarczanie i wykorzystanie poprzez źródła emitujące światło oraz fotodetektory, rozmieszczone w określonych odległościach. Emitowane są fale świetlne o długościach od ok. 700 nm do 850 nm, co odpowiada szczytowi absorpcji O22Hb i HHb. Po prze...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Niniejszy artykuł opisuje ustandaryzowane procedury oceny reaktywnej hiperemii kończyn dolnych z wykorzystaniem CW-NIRS TSI w celu oceny funkcji mikro naczyniowej. Protokół ten został dopracowany poprzez zbadanie wpływu czasu okluzji mankietem na wielkość odpowiedzi, niezawodności test-retest NIRS podczas reaktywnej hiperemii, a także stopnia zgodności między NIRS a innymi metodami oceny mikro naczyniowej, takimi jak ultrasonografia z kontrastem23,24. Dłuższy cza...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają żadnych ujawnień ani sprzecznych interesów.

Podziękowania

Autorzy chcieliby podziękować dr A. Menesesowi, którego poprzednia praca przyczyniła się do udoskonalenia opisanego tutaj protokołu. Ponadto autorzy chcieliby podziękować wszystkim uczestnikom badania, którzy poświęcili swój czas, aby umożliwić opracowanie takich protokołów w celu pogłębienia wiedzy klinicznej i naukowej.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Źródło powietrza inflatora mankietuHokanson AG101 ŹRÓDŁO
Elastyczny bandaż kohezyjnyMaxoWrap18228-BLDo blokowania światła otoczenia
OxySoftArtinis3.3.341 x64
PortaLite (NIRS)Artinis0302-00019-00
PortaSync MKII (zdalny)Artinis0702-00860-00Do oznaczania kamieni milowych podczas pomiaru
Szybki inflator mankietuHokanson Mankiet udowy E20 RAPID CUFF INFLATOR
Hokanson CC17
Transpore Taśma chirurgiczna3M1527-1Do mocowania sondy do skóry
POWIETRZA

Bibliografia

  1. Hasani, W. S. R., et al. The global estimate of premature cardiovascular mortality: A systematic review and meta-analysis of age-standardized mortality rate. BMC Public Health. 23 (1), 1561(2023).
  2. Horvath, L., et al. Epidemiology of peripheral artery disease: Narrative review. Life (Basel). 12 (7), 1041(2022).
  3. Jodheea-Jutton, A., Hindocha, S., Bhaw-Luximon, A. Health economics of diabetic foot ulcer and recent trends to accelerate treatment). Foot (Edinb). 52, 101909(2022).
  4. Rodrigues, B. T., Vangaveti, V. N., Urkude, R., Biros, E., Malabu, U. H. Prevalence and risk factors of lower limb amputations in patients with diabetic foot ulcers: A systematic review and meta-analysis. Diabetes Metab Syndr-Clinin Res Rev. 16 (2), 102397(2022).
  5. Jung, F., et al. Microcirculation in hypertensive patients. Biorheology. 50 (5-6), 241-255 (2013).
  6. Bethel, M., Annex, B. H. Peripheral arterial disease: A small and large vessel problem. AmHeart J Plus: Cardio Res Prac. 28, 133291(2023).
  7. Thijssen, D. H. J., et al. Expert consensus and evidence-based recommendations for the assessment of flow-mediated dilation in humans. Eur Heart J. 40 (30), 2534-2547 (2019).
  8. Sanada, H., et al. Vascular function in patients with lower extremity peripheral arterial disease: A comparison of functions in upper and lower extremities. Atherosclerosis. 178 (1), 179-185 (2005).
  9. Barstow, T. J. Understanding near-infrared spectroscopy and its application to skeletal muscle research. J App Phys. 126 (5), 1360-1376 (2019).
  10. Rogers, E. M., Banks, N. F., Jenkins, N. D. M. Metabolic and microvascular function assessed using near-infrared spectroscopy with vascular occlusion in women: Age differences and reliability. Exp Physiol. 108 (1), 123-134 (2023).
  11. Manfredini, F., et al. A toe flexion nirs assisted test for rapid assessment of foot perfusion in peripheral arterial disease: Feasibility, validity, and diagnostic accuracy. Eur J Vasc Endovasc Surg. 54 (2), 187-194 (2017).
  12. Boezeman, R. P., Moll, F. L., Unlu, C., De Vries, J. P. Systematic review of clinical applications of monitoring muscle tissue oxygenation with near-infrared spectroscopy in vascular disease. Microvasc Res. 104, 11-22 (2016).
  13. Baltrunas, T., et al. Measurement of revascularization effect using near-infrared spectroscopy in below the knee arteries. Rev Cardiovasc Med. 23 (9), 299(2022).
  14. Tuesta, M., Yanez-Sepulveda, R., Verdugo-Marchese, H., Mateluna, C., Alvear-Ordenes, I. Near-infrared spectroscopy used to assess physiological muscle adaptations in exercise clinical trials: A systematic review. Biology (Basel). 11 (7), 1073(2022).
  15. Cornelis, N., et al. The use of near-infrared spectroscopy to evaluate the effect of exercise on peripheral muscle oxygenation in patients with lower extremity artery disease: A systematic review. Eur J Vasc Endovasc Surg. 61 (5), 837-847 (2021).
  16. Whyte, E., Thomas, S., Marzolini, S. Muscle oxygenation of the paretic and nonparetic legs during and after exercise in chronic stroke: Implications for mobility. PM R. 15 (10), 1239-1248 (2023).
  17. Soares, R. N., George, M. A., Proctor, D. N., Murias, J. M. Differences in vascular function between trained and untrained limbs assessed by near-infrared spectroscopy. Eur J Appl Physiol. 118 (10), 2241-2248 (2018).
  18. Joseph, S., et al. Near infrared spectroscopy in peripheral artery disease and the diabetic foot: A systematic review. Diabetes Metab Res Rev. 38 (7), 3571(2022).
  19. Willingham, T. B., Southern, W. M., Mccully, K. K. Measuring reactive hyperemia in the lower limb using near-infrared spectroscopy. J Biomed Opt. 21 (9), 091302(2016).
  20. Jones, S., Chiesa, S. T., Chaturvedi, N., Hughes, A. D. Recent developments in near-infrared spectroscopy (nirs) for the assessment of local skeletal muscle microvascular function and capacity to utilise oxygen. Artery Res. 16, 25-33 (2016).
  21. Soares, R. N., et al. Effects of a rehabilitation program on microvascular function of CHD patients assessed by near-infrared spectroscopy. Physiol Rep. 7 (11), e14145(2019).
  22. Baltrunas, T., et al. The use of near-infrared spectroscopy in the diagnosis of peripheral artery disease: A systematic review. Vascular. 30 (4), 715-727 (2022).
  23. Young, G. M., et al. Influence of cuff-occlusion duration on contrast-enhanced ultrasound assessments of calf muscle microvascular blood flow responsiveness in older adults. Exp Physiol. 105 (12), 2238-2245 (2020).
  24. Young, G. M., et al. The association between contrast-enhanced ultrasound and near-infrared spectroscopy-derived measures of calf muscle microvascular responsiveness in older adults. Heart Lung Circ. 30 (11), 1726-1733 (2021).
  25. Rosenberry, R., Nelson, M. D. Reactive hyperemia: A review of methods, mechanisms, and considerations. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 318 (3), R605-R618 (2020).
  26. Iannetta, D., et al. Reliability of microvascular responsiveness measures derived from near-infrared spectroscopy across a variety of ischemic periods in young and older individuals. Microvasc Res. 122, 117-124 (2019).
  27. Celermajer, D. S., et al. Non-invasive detection of endothelial dysfunction in children and adults at risk of atherosclerosis. Lancet. 340 (8828), 1111-1115 (1992).
  28. Thijssen, D. H. J., et al. Assessment of flow-mediated dilation in humans: A methodological and physiological guideline. Am J Physiol-Heart Circ Physiol. 300 (1), H2-H12 (2011).
  29. Inaba, Y., Chen, J. A., Bergmann, S. R. Prediction of future cardiovascular outcomes by flow-mediated vasodilatation of brachial artery: A meta-analysis. Int J Cardiovasc Imaging. 26 (6), 631-640 (2010).
  30. Soares, R. N., De Oliveira, G. V., Alvares, T. S., Murias, J. M. The effects of the analysis strategy on the correlation between the NIRS reperfusion measures and the FMD response. Microvasc Res. 127, 103922(2020).
  31. Tucker, W. J., et al. Studies into the determinants of skeletal muscle oxygen consumption: Novel insight from near-infrared diffuse correlation spectroscopy. J Physiol-London. 597 (11), 2887-2901 (2019).
  32. Tucker, W. J., et al. Near-infrared diffuse correlation spectroscopy tracks changes in oxygen delivery and utilization during exercise with and without isolated arterial compression. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 318 (1), R81-R88 (2020).
  33. Wassenaar, E. B., Van Den Brand, J. G. Reliability of near-infrared spectroscopy in people with dark skin pigmentation. J Clinic Monit Comput. 19 (3), 195-199 (2005).
  34. Soares, R. N., Murias, J. M. Near-infrared spectroscopy assessment of microvasculature detects difference in lower limb vascular responsiveness in obese compared to lean individuals. Microvasc Res. 118, 31-35 (2018).
  35. Boezeman, R. P., et al. Monitoring of foot oxygenation with near-infrared spectroscopy in patients with critical limb ischemia undergoing percutaneous transluminal angioplasty: A pilot study. Eur J Vasc Endovasc Surg. 52 (5), 650-656 (2016).
  36. Lin, B. S., et al. Using wireless near-infrared spectroscopy to predict wound prognosis in diabetic foot ulcers. Adv Skin Wound Care. 33 (1), 1-12 (2020).
  37. Weingarten, M. S., et al. Diffuse near-infrared spectroscopy prediction of healing in diabetic foot ulcers: A human study and cost analysis. Wound Repair. 20 (2), A44-A44 (2012).
  38. Murrow, J. R., et al. Near-infrared spectroscopy-guided exercise training for claudication in peripheral arterial disease. Eur J Prev Cardiol. 26 (5), 471-480 (2018).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Dysfunkcja mikrokrążeniachoroba tętnic obwodowychrestrykcja przepływu krwiprekondycjonowanie niedokrwiennemikrokrążenie mięśni szkieletowychokluzja mankietem
Spektroskopia bliskiej podczerwieni podczas przekrwienia reaktywnego w celu oceny funkcji naczyniowej kończyn dolnych
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.