Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Protokół ćwiczeń pływackich i metody pielęgnacji ciężarnych szczurów

1.9K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/66577

⸱

5 kwietnia 2024

 ,  ,  ,  , 

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

Tutaj prezentujemy protokół opisujący metody hodowli szczurów, procedury treningu pływackiego oraz protokoły opieki nad ciężarnymi szczurami po treningu. Protokół ten zapewnia model zwierzęcy do badania wpływu ćwiczeń matki w czasie ciąży na potomstwo i ich podstawowe mechanizmy.

Streszczenie

Koncepcja rozwojowego pochodzenia zdrowia i choroby podkreśla wpływ wczesnych środowisk na przewlekłe choroby niezakaźne, takie jak cukrzyca, choroby układu krążenia i nowotwory. Badania z wykorzystaniem modeli zwierzęcych sprawdzały, w jaki sposób czynniki matczyne, takie jak niedożywienie, przeżywienie, otyłość i narażenie na chemikalia lub niedotlenienie, wpływają na rozwój płodu i zdrowie potomstwa, prowadząc do problemów, takich jak niska masa urodzeniowa, wysokie ciśnienie krwi, dyslipidemia i insulinooporność. Biorąc pod uwagę rosnące rozpowszechnienie nadwagi i otyłości wśród kobiet w wieku rozrodczym, kluczowe znaczenie mają skuteczne interwencje. Ćwiczenia matki w czasie ciąży stały się kluczową interwencją, przynoszącą korzyści zarówno matce, jak i potomstwu oraz zmniejszającą ryzyko choroby. W tym badaniu porównano różnice między trzema modelami ćwiczeń na ciężarnych szczurach: dobrowolnym bieganiem na kołach, zmotoryzowanymi bieżniami i pływaniem. Pływanie jest najkorzystniejszą opcją ze względu na bezpieczny i kontrolowany poziom intensywności. Protokół ten szczegółowo opisuje metody hodowli szczurów, trening pływacki w czasie ciąży i protokoły pielęgniarskie po rozrodze. Ten model, odpowiedni dla różnych gatunków szczurów i myszy, jest przydatny do badania korzyści płynących z ćwiczeń matki dla zdrowia potomstwa i dobrego samopoczucia międzypokoleniowego.

Wprowadzenie

Koncepcja Rozwojowych Początków Zdrowia i Chorób (DOHaD) pojawiła się w ciągu ostatnich dwóch dekad, co pokazało, że wpływy środowiskowe we wczesnym okresie rozwoju wpływają na ryzyko późniejszych procesów patofizjologicznych związanych z przewlekłą chorobą niezakaźną (NCD), zwłaszcza cukrzycą, chorobami układu krążenia i niektórymi rodzajami raka1. Podczas najbardziej plastycznej fazy rozwoju płodu, gdy potomstwo jest narażone na działanie środowiska wewnątrzmacicznego, interakcja genu i środowiska oraz perfuzja maciczno-łożyskowa są kluczowymi czynnikami przeprogramowania płodu2. Wcześniejsze badania wykorzystywały głównie modele zwierzęce do zbadania szkodliwego wpływu, takiego jak niedożywienie matki, przeżywienie lub otyłość w czasie ciąży oraz prenatalne narażenie na chemikalia lub niedotlenienie, na rozwój płodu i długoterminowe skutki fenotypowe u potomstwa3. Spowodowało to niską masę urodzeniową i późniejszy wzrost oraz miało niekorzystny wpływ na potomstwo, w tym podwyższone ciśnienie krwi, dyslipidemię i insulinooporność4. Ponieważ wskaźnik nadwagi i otyłości gwałtownie rośnie wśród kobiet w wieku rozrodczym, pilnie potrzebne jest ustanowienie skutecznych interwencji zapobiegających międzypokoleniowemu przenoszeniu tych szkodliwych zaburzeń matczynych, co ma istotny wpływ na zdrowie populacji5,6.

Ćwiczenia od dawna są uznawane za ważny środek zapobiegawczy w leczeniu cukrzycy typu 2, nadciśnienia i kilku innych chorób7. Ćwiczenia w czasie ciąży mają korzystny wpływ na matkę i mają korzystny wpływ na potomstwo, zmniejszając w ten sposób przenoszenie chorób przez matkę na potomstwo8. Kilkuletnie badania wykazały bezpieczeństwo ćwiczeń i głębokie korzyści, w tym znaczne zmniejszenie częstych schorzeń ciążowych, takich jak cukrzyca ciążowa9,10. Jeśli chodzi o bezpieczeństwo matki i płodu, przeprowadzenie treningu fizycznego i protokołów po karmieniu piersią jest wyzwaniem.

David11 et al. opisali modele ćwiczeń na zwierzętach mające zastosowanie w badaniach nad zdrowiem układu krążenia. Trzy powszechnie używane modele ćwiczeń, dobrowolne bieganie na kołach, zmotoryzowane bieżnie i pływanie, mają zalety i wady. Dobrowolnie poruszające się koło ściśle naśladuje zachowanie lokomotoryczne szczurów, umożliwiając im poruszanie się zgodnie z ich rytmem okołodobowym. Jednak ten rodzaj ćwiczeń wymaga bardziej precyzyjnej regulacji intensywności i czasu trwania. Zmotoryzowana bieżnia może kontrolować intensywność, objętość i czas trwania ćwiczeń, ale czasami wymaga stymulacji elektrycznej, co może wywołać stres fizyczny i psychiczny u zwierząt. Pływanie jest szeroko stosowane w badaniach na gryzoniach ze względu na wrodzoną zdolność pływania szczurów, które mogą również uniknąć stymulacji elektrycznej lub mechanicznego uszkodzenia stóp i ogonów12. W badaniach nad modelami ćwiczeń prenatalnych13,14, pływanie jest powszechnie stosowaną metodą ćwiczeń. W miarę postępu ciąży i obrzęku brzucha szczura, ćwiczenia na bieżni i bieganiu na kółkach mogą powodować powtarzający się kontakt brzucha z twardymi powierzchniami. Natomiast środowisko wodne podczas pływania zapewnia wyporność, zmniejszając ryzyko urazów związanych z wysiłkiem fizycznym u ciężarnych zwierząt.

Ten protokół przedstawia metody hodowli szczurów, jak przeprowadzić trening pływacki podczas ciąży, oraz protokoły opieki nad ciężarnymi szczurami po treningu. Ten model treningu pływackiego w ciąży może być stosowany do szerokiej gamy gatunków szczurów i myszy, co może stanowić użyteczny model gryzoni do przyszłych badań z wykorzystaniem modeli zwierzęcych do badania mechanizmów regulujących korzystny wpływ ćwiczeń matki na zdrowie potomstwa i korzyści płynące z ćwiczeń w różnych pokoleniach.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie opisane tutaj metody zostały zatwierdzone przez komisję etyki zwierząt na Uniwersytecie Sportowym w Pekinie i przeprowadzone zgodnie z wytycznymi Narodowych Instytutów Zdrowia (NIH) oraz chińskimi przepisami o ochronie zwierząt i wytycznymi instytucjonalnymi.

1. Krycie i karmienie szczurów

  1. Kup 10-tygodniowe samice szczurów Wistar z oceną SPF i 11-tygodniowe samce szczurów Wistar.
  2. Wdrożenie żywienia adaptacyjnego: Karm szczury Wistar ad libitum standardową dietą dla gryzoni i zapewnij dostęp do wody z kranu przez tydzień w wyznaczonym ośrodku karmienia. Upewnij się, że wszystkie szczury są trzymane w 12-godzinnym cyklu jasno-ciemnym w stałej temperaturze 22 °C i wilgotności 45-55%.
  3. Zbadaj ruję samicy szczura.
    1. Przygotuj sprzęt i materiały, w tym czyste szklane szkiełka mikroskopowe, waciki o średnicy 2 mm, roztwór soli fizjologicznej (0,9% NaCl) i mikroskop.
    2. Oznacz każde szkiełko mikroskopowe datą i identyfikacją szczura.
    3. Między godziną 18 a 19, aby zminimalizować stres, delikatnie krępuj samicę szczura. Chwyć podstawę ogona kciukiem i palcem wskazującym, jednocześnie wywierając nacisk innymi palcami na kręg lędźwiowy szczura.
    4. Podnieś czubek ogona i odsłoń pochwę. Zwilż bawełniany wacik roztworem soli fizjologicznej, a następnie włóż końcówkę do pochwy i delikatnie zwiń końcówkę, aby zebrać wydzielinę z pochwy.
    5. Przetocz końcówkę wacika po szkiełku, unikając ponownego nałożenia na ten sam obszar.
    6. Zbadaj rozmaz pod mikroskopem i użyj obiektywu o małym powiększeniu (10x), aby zlokalizować i obserwować komórki.
      UWAGA: Podczas rui wydzieliny z pochwy mają większe jądra nabłonka, które zniknęły, zastąpione przez płaskonabłonkowe złuszczone zrogowaciałe komórki nabłonka, które zgromadziły się w kopcu.
    7. Zapisz etap cyklu rujowego dla każdego szczura.
  4. Między godziną 19 a 20 umieść samca i samicę szczura w klatce godowej.
    UWAGA: Samice szczurów muszą znajdować się w rui lub rui do krycia.
  5. Drugiego dnia, między 7 a 8 rano, sprawdź klatkę współpracującą pod kątem zatyczek kopulacyjnych. Jeśli u podstawy klatki kryjącej zostanie znaleziony czop kopulacyjny, przystąp do tworzenia rozmazu z pochwy dla samicy szczura, postępując tą samą metodą, jak opisano w krokach 1.3.4-1.3.6.
    UWAGA: Korki kopulacyjne to mlecznobiałe lub żółtawe galaretowate materiały zbudowane z pęcherzyków nasiennych samców szczurów i wydzielin prostaty w połączeniu z wydzieliną z pochwy.
  6. Potwierdź ciążę u samicy szczura: po znalezieniu czopów kopulacyjnych w klatce godowej obserwuj plemniki na rozmazie wydzieliny z pochwy. Oznacz ten dzień jako 1 dzień ciąży (GD1).
  7. Odizoluj ciężarną szczurkę w osobnej klatce.
    UWAGA: W początkowych stadiach ciąży konieczne jest zapobieganie napotkaniu przez ciężarną szczur nieznanych męskich sygnałów chemicznych w swoim otoczeniu lub współżyciu z nieznanym samcem szczura.
  8. Okres ciąży szczurów trwa zwykle 21-23 dni. Zmierz i zapisz masę ciała szczurów od GD1 do GD20.
  9. Na GD20 zastąp klatkę ciężarnej szczura czystą i umieść w niej medyczną bawełnę chłonną (podobną wielkością do szczura). Zapewnij wystarczającą ilość wody i pożywienia na przetrwanie przez siedem dni i umieść klatkę w cichym miejscu.
    UWAGA: Nie zmieniaj klatki przez co najmniej 1 tydzień po porodzie szczura. Przechodząc na czystą klatkę, przenieś zużytą chłonną bawełnę z brudnej klatki do nowej, aby szczury mogły rozpoznać zapach swojego potomstwa.
  10. W 21 dniu po porodzie oddziel potomstwo według płci i umieść je w dwóch klatkach.
    UWAGA: Ze względu na mniejszy rozmiar 21-dniowego potomstwa, granulki twardej paszy należy umieścić w szklanej szalce Petriego wewnątrz klatki.

2. Prenatalny program treningu pływackiego

  1. Przeprowadź szkolenie adaptacyjne dla wszystkich doświadczalnych samic szczurów przez 5 dni.
    1. Przygotuj przezroczysty plastikowy pojemnik o wysokości co najmniej 20 cm i napełnij go 10 cm wodą o temperaturze 34 ± 1°C.
    2. Chwyć czubek ogona szczura i podnieś go, a następnie umieść szczura w wodzie.
    3. Podczas 15-minutowego treningu adaptacyjnego uważnie monitoruj temperaturę wody co 5 minut, dodając ciepłą wodę, aby utrzymać temperaturę.
    4. Po treningu przenieś szczura do czystej wody o temperaturze 34 ± 1°C, aby umyć jego sierść. Następnie przenieś szczura do klatki z ręcznikami i użyj suszarki do włosów, aby wysuszyć jego futro.
      UWAGA: Hałas i gorące środowisko mogą powodować stres u szczurów. Dlatego zaleca się używanie cichej suszarki do włosów o regulowanej temperaturze.
    5. Uprzejmie prosimy o powrót szczura do odpowiednich klatek.
  2. Kojarzenie szczurów (wykonaj kroki 1.3-1.6).
  3. Po kroku 1.7 losowo przypisz ciężarne szczury do grupy prowadzącej siedzący tryb życia (SED) i grupy ćwiczącej (EX).
  4. Waż szczura codziennie przed każdą sesją treningową.
    UWAGA: Podczas treningu adaptacyjnego utrata masy ciała szczurów nie powinna przekraczać 3 g/dzień. Podczas treningu prenatalnego waga szczurów powinna stopniowo zwiększać. Jeśli szczury tracą więcej niż 3 g dziennie, skróć dzienny czas treningu o 50%, aby umożliwić regenerację.
  5. Prowadź prenatalny trening pływacki dla EX od GD1 do GD20, 6 dni w tygodniu, od 8:00 do 9:00 rano.
    1. Przygotuj okrągłe wiadro na wodę o średnicy 50 cm i minimalnej wysokości 50 cm i napełnij je 40 cm wodą o temperaturze 34 ± 1°C.
    2. Od GD1 do GD5 początkowo wykonuj trening pływacki przez 20 minut dziennie i stopniowo zwiększaj do 60 minut dziennie.
    3. Od GD6 do GD20 kontynuuj trening fizyczny przez 60 minut dziennie przez 6 dni w tygodniu.
    4. Aby uzyskać informacje o opiece pooperacyjnej, zapoznaj się z krokami 2.1.4-2.1.5.
    5. Po wysiłku podaj szczurowi EX 5 g nasion słonecznika gryzoni, aby zapewnić wsparcie żywieniowe.
  6. Podczas codziennego treningu EX należy umieścić szczura SED w tym samym środowisku wodnym, w którym odbywa się trening adaptacyjny (krok 2.1.1). Niech szczur SED spędza tyle samo czasu w środowisku wodnym, co szczur EX. Po wysiłku fizycznym podaj szczurowi SED 5 g nasion słonecznika dla gryzoni, aby zapewnić mu wsparcie odżywcze i kojące emocje.
  7. Po każdym treningu pływackim wyczyść i zdezynfekuj cały sprzęt światłem ultrafioletowym, w tym wiadra z wodą i ręczniki.

3. Cechy fizyczne płodów

  1. Rankiem GD20.5 znieczulij samicę szczura 3% izofluranem i poddaj ją eutanazji w komorze CO2 .
  2. Użyj noża chirurgicznego, aby wykonać nacięcie w dolnej części brzucha szczura. Upewnij się, że nacięcie jest nachylone w obie strony brzucha, zapewniając całkowite odsłonięcie macicy.
  3. Ostrożnie otwórz macicę za pomocą kleszczy i nożyczek, aby odsłonić płody i łożyska. Delikatnie oddziel cienką owodnię otaczającą płody za pomocą kleszczy, aby uniknąć uszkodzenia płodów i łożysk spowodowanych nożyczkami.
  4. Oczyść ciała płodów za pomocą sterylnej gazy, aby usunąć krew i śluz. Kolejno oddziel płody i łożyska według ich anatomicznych pozycji, a następnie zważ je.
  5. Obserwuj odległość między odbytem a genitaliami, aby określić płeć płodów. Płody męskie mają większą odległość niż samice. Zapisz płeć i liczbę płodów do wykorzystania w przyszłości.
  6. Zmierz długość płodu za pomocą suwmiarki, leżąc płasko. Ponieważ płody są nadal żywe, mogą zwinąć się w kłębek po sekcji, więc rozłóż ich ciała, aby dokonać pomiarów.
    UWAGA: Aby zapewnić spójność wyników eksperymentalnych i metod pomiaru, ten sam eksperymentator utrzymuje te same standardy przez cały czas. Płody zostały poddane eutanazji zgodnie z wytycznymi zaleconymi przez instytucję, a próbki tkanek pobrano do dalszej analizy w razie potrzeby.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

W sekcji dotyczącej metod hodowli szczurów (Rysunek 1) określamy cykl rujowy samic szczurów poprzez przygotowanie preparatów wydzieliny pochwowej w celu zwiększenia skuteczności rozrodu. Cykl rujowy szczurów trwa 4–5 dni i obejmuje proestrus, estrus, metestrus oraz diestrus. Samice szczurów w fazie metestrusu lub diestrusu wykazują takie zachowania jak dystansowanie się od samców. Jednocześnie samice w fazie estrusu są chętne do kopulacji, a owulacja u samic szczurów następuje najczęściej po...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Badanie to ma na celu ustalenie wykonalnego programu ćwiczeń dla ciężarnych szczurów, w tym szczegółowych metod kojarzenia szczurów, protokołów treningu pływackiego oraz metod badawczych do oceny wskaźników fizjologicznych u płodów. Opracowaliśmy prenatalny model treningu pływackiego poprzez praktykę, z odpowiednimi rozwiązaniami potencjalnych problemów, które mogą pojawić się w protokole (Tabela 1). Protokół ten sprawi, że będzie on bardziej praktyczny i pomoże naukowcom w tworzeniu modeli ćwiczeń prena...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Podziękowania

Ta praca była wspierana przez Narodową Fundację Nauk Przyrodniczych Chin (32071174, 32200941, 32371183 i 31771312).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
SuwmiarkaMitutoyo Przyrządy pomiarowe (Shanghai) Co., Ltd530-101 N15Sekcja płodu
Okrągłe wiadro na wodęNaliyaN/A Szczurpływający
Eksperymentalny instrument chirurgiczny Shenzhen RWD Life Technology Co., LTDSP0001-GSzklane
preparaty mikroskopoweJiangsu Shitai sprzęt eksperymentalny Co., LTD80312-3161Wymaz z pochwy
Szklana szalka PetriegoMerck Life TechnologiesBR455751-10EASuszarka do włosów do hodowli potomstwa
PanasonicEH-WNE5Hdo pielęgnacji po pływaniu
Zhongke Nauki przyrodniczeSS3Kojarzenie szczurów
IzofluranShenzhen RWD Life Technology Co., LTDR510-22-10Sekcja płodu
Mikroskop świetlnyOlympusIX71-F22PHWymaz z pochwy
Klatka godowaZhongke Life ScienceSS3Krycie szczurów
Medyczna chłonna bawełnaHongxiang Sanitary Materials Co., LtdN/ACiężarne szczury są przewidywanie porodu
Maszyna do znieczulenia gryzoni, znieczulenie gazoweShenzhen RWD Life Technology Co., LTDR500IESekcja płodu
Pasza hodowlana dla gryzoniBeijing Huafukang Biotechnology Co., LTD1032Karmienie ciężarnych szczurów
Karma dla gryzoniBeijing Huafukang Biotechnology Co., LTD1022Hodowla potomstwa Nasiona
słonecznika dla gryzoniJollyJP241Suplement diety
Dźwiękoszczelny bawełnianyinstrument medyczny KufuNie dotyczyCiężarne szczury oczekują porodu
Sterylny wacik bawełniany (średnica 2 mm)Instrument medyczny KufuNie dotyczyWymaz z pochwy
Sterylna gazaInstrument medyczny KufuNie dotyczysekcji płodu
Udar fizjologiczny roztwór soli fizjologicznej (0,9% NaCl)Shandong Hualu Pharmaceutical Co., LTDN/AWymaz z pochwy
TermometrOrganizm BeekmanaN/AMonitorowanie pływania szczurów
RęcznikiGraceN/APielęgnacja po pływaniu
Przezroczysty plastikowy pojemnikNaliyaN/APływanie Trening adaptacyjny
Światło ultrafioletoweMerck Life TechnologiesZ169633-1EAPielęgnacja po pływaniu
Podgrzewacz wodyHaierEC6001-Q6SWaga do pływania dla szczurów
Electronlc AcaleJM. A10001Pomiar masy ciała
Wistar RatsVital River Laboratory Animal Technology Co., LtdEksperyment N/A
do badania płodu Karta informacyjna

Bibliografia

  1. Hanson, M. A., Gluckman, P. D. Early developmental conditioning of later health and disease: Physiology or pathophysiology. Physiol Rev. 94 (4), 1027-1076 (2014).
  2. Calkins, K., Devaskar, S. U. Fetal origins of adult disease. Curr Probl Pediatr Adolesc Health Care. 41 (6), 158-176 (2011).
  3. Chavatte-Palmer, P., Tarrade, A., Rousseau-Ralliard, D. Diet before and during pregnancy and offspring health: The importance of animal models and what can be learned from them. Int J Environ Res Public Health. 13 (6), 586(2016).
  4. Lapehn, S., Paquette, A. G. The placental epigenome as a molecular link between prenatal exposures and fetal health outcomes through the dohad hypothesis. Curr Environ Health Rep. 9 (3), 490-501 (2022).
  5. Shrestha, A., Prowak, M., Berlandi-Short, V. M., Garay, J., Ramalingam, L. Maternal obesity: A focus on maternal interventions to improve health of offspring. Front Cardiovasc Med. 8, 696812(2021).
  6. Haire-Joshu, D., Tabak, R. Preventing obesity across generations: Evidence for early life intervention. Annu Rev Public Health. 37, 253-271 (2016).
  7. Kusuyama, J., Alves-Wagner, A. B., Makarewicz, N. S., Goodyear, L. J. Effects of maternal and paternal exercise on offspring metabolism. Nat Metab. 2 (9), 858-872 (2020).
  8. Blaize, A. N., Pearson, K. J., Newcomer, S. C. Impact of maternal exercise during pregnancy on offspring chronic disease susceptibility. Exerc Sport Sci Rev. 43 (4), 198-203 (2015).
  9. Hinman, S. K., Smith, K. B., Quillen, D. M., Smith, M. S. Exercise in pregnancy: A clinical review. Sports Health. 7 (6), 527-531 (2015).
  10. Acog committee. Physical activity and exercise during pregnancy and the postpartum period: Acog committee opinion, number 804. Obstet Gynecol. 135 (4), e178-e188 (2020).
  11. Poole, D. C., et al. Guidelines for animal exercise and training protocols for cardiovascular studies. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 318 (5), H1100-H1138 (2020).
  12. Beleza, J., et al. Self-paced free-running wheel mimics high-intensity interval training impact on rats' functional, physiological, biochemical, and morphological features. Front Physiol. 10, 593(2019).
  13. August, P. M., Rodrigues, K. D. S., Klein, C. P., Dos Santos, B. G., Matté, C. Influence of gestational exercise practice and litter size reduction on maternal care. Neurosci Lett. 741, 135454(2021).
  14. Li, S., et al. Prenatal exercise reprograms the development of hypertension progress and improves vascular health in shr offspring. Vascul Pharmacol. 139, 106885(2021).
  15. Li, S., et al. Exercise during pregnancy enhances vascular function via epigenetic repression of ca(v)1.2 channel in offspring of hypertensive rats. Life Sci. 231, 116576(2019).
  16. Musial, B., et al. Exercise alters the molecular pathways of insulin signaling and lipid handling in maternal tissues of obese pregnant mice. Physiol Rep. 7 (16), e14202(2019).
  17. Dos Santos, A. S., et al. Resistance exercise was safe for the pregnancy and offspring's development and partially protected rats against early life stress-induced effects. Behav Brain Res. 445, 114362(2023).
  18. Barnes, M. D., Heaton, T. L., Goates, M. C., Packer, J. M. Intersystem implications of the developmental origins of health and disease: Advancing health promotion in the 21st century. Healthcare. 4 (3), 45(2016).
  19. Bakrania, B. A., George, E. M., Granger, J. P. Animal models of preeclampsia: Investigating pathophysiology and therapeutic targets. Am J Obstet Gynecol. 226, S973-S987 (2022).
  20. Ferrari, N., et al. Exercise during pregnancy and its impact on mothers and offspring in humans and mice. J Dev Orig Health Dis. 9 (1), 63-76 (2018).
  21. Lerman, L. O., et al. Animal models of hypertension: A scientific statement from the american heart association. Hypertension. 73 (6), e87-e120 (2019).
  22. Mangwiro, Y. T. M., et al. Exercise initiated during pregnancy in rats born growth restricted alters placental mtor and nutrient transporter expression. J Physiol. 597 (7), 1905-1918 (2019).
  23. Kim, H., Lee, S. H., Kim, S. S., Yoo, J. H., Kim, C. J. The influence of maternal treadmill running during pregnancy on short-term memory and hippocampal cell survival in rat pups. Int J Dev Neurosci. 25 (4), 243-249 (2007).
  24. Harris, J. E., et al. Exercise-induced 3'-sialyllactose in breast milk is a critical mediator to improve metabolic health and cardiac function in mouse offspring. Nat Metab. 2 (8), 678-687 (2020).
  25. Zhang, Y., et al. Maternal exercise represses nox4 via sirt1 to prevent vascular oxidative stress and endothelial dysfunction in shr offspring. Front Endocrinol. 14, 1219194(2023).
  26. Shan, M., et al. Maternal exercise upregulates the DNA methylation of agtr1a to enhance vascular function in offspring of hypertensive rats. Hypertens Res. 46 (3), 654-666 (2023).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Ćwiczenia matczynemetody hodowli szczurówprenatalny trening pływackizdrowie potomstwaopieka w okresie ciążydieta wysokotłuszczowamechanizm epigenetycznyrozwój płodu